Studying medullary thymic epithelial cells in vitro has been largely unsuccessful, as current 2D culture systems do not mimic the in vivo scenario. The 3D culture system described herein – a modified skin organotypic culture model – has proven superior in recapitulating mTEC proliferation, differentiation and maintenance of promiscuous gene expression.
Intra-thymic T-celle utvikling krever en intrikat tredimensjonale meshwork sammensatt av ulike stromaceller, dvs. ikke-T-celler. Thymocyttene traversere dette stillaset i en svært samordnet tidsmessig og romlig orden mens sekvensielt bestått obligatoriske sjekkpunktene, dvs. T-celle avstamning engasjement, etterfulgt av T-celle reseptor repertoar generasjon og valg før deres eksport til periferien. De to store bosatt celletyper danner dette stillaset er kortikale (cTECs) og marg tymiske epitelceller (mTECs). Et viktig trekk ved mTECs er den såkalte promiskuøse uttrykk for mange vev-restricted antigener. Disse vev-restricted antigener blir presentert for umodne tymocytter direkte eller indirekte av mTECs eller thymic dendrittiske celler, henholdsvis resulterer i selv toleranse.
Egnede in vitro modeller som emulerer de utviklingsveier og funksjoner av cTECs og mTECs er for tiden lackonge. Denne mangelen på tilstrekkelige eksperimentelle modeller har for eksempel hemmet analyse av promiskuøse genuttrykk, som fortsatt er dårlig forstått på cellulært og molekylært nivå. Vi tilpasset en 3D organotypiske co-kultur modell til kultur ex vivo isolerte mTECs. Denne modellen ble opprinnelig utviklet for å dyrke keratinocytter på en slik måte at det genereres et tilsvarende hud in vitro. 3D-modellen bevart viktige funksjonelle egenskaper av Mtec biologi: (i) spredning og terminal differensiering av CD80 lo, Aire-negative til CD80 hi, Aire-positive mTECs, (ii) respons til RANKL, og (iii) vedvarende uttrykk for FoxN1, Aire og vev-begrenset gener i CD80- hi mTECs.
Utviklings thymocytter utgjør omtrent 98% av thymus, mens de resterende 2% består av en rekke celler som kollektivt komponere thymisk stroma (dvs. epitelceller, dendrittiske celler, makrofager, B-celler, fibroblaster, endotelceller). De ytre kortikale epitelceller (cTECs) anskaffe innvandring av pro-T-celler fra benmargen, T-celle avstamning induksjon i multipotente pre-T-celler og positiv utvelgelse av selv MHC begrenset umodne thymocyttene. De indre medullære tymiske epitel-celler (mTECs) er involvert i induksjon av toleranse disse thymocyttene med en høy affinitet for TCR selv-peptid / MHC-komplekser ved enten å indusere negativ seleksjon eller deres avvik i T-celle regulatoriske avstamning. I forbindelse med sentraltoleranseinduksjon, mTECs er unike ved at de uttrykker et bredt spekter av vev-begrenset selvantigener (tras) således speiler den perifere selv. Dette fenomenet kalles promiskuøse genuttrykk (PGE)1,2.
De fleste aktuelle studier på denne fascinerende celletype er avhengige av ex vivo isolerte celler, som ulike kortsiktige 2D kultursystemer alltid resulterte i tap av PGE og nøkkel regulator molekyler som MHC klasse II, FoxN1 og Aire løpet av de første to dagene 3-6 . Det forble imidlertid uklart, hvilke spesielle komponenter og funksjoner intakt 3D meshwork av thymus manglet i 2D-modeller. Den re-aggregering tymisk organkultur (RTOC) har vært så langt det eneste 3D-system som tillater studiet av T-celle utviklingen, på den ene side, og stromal cellebiologi, på den annen side, i et intakt thymus mikromiljø 7. Likevel, RTOCs har visse begrensninger, det vil si, at de allerede inneholder en kompleks blanding av celler, innebærer bruk av føtale stromale celler og tåle en maksimal dyrkningsperiode på 5 til 10 dager.
Mangelen på reductionist in vitro kultursystemer har hemmet studiet avflere aspekter av T-celle utvikling og thymic organogenesen ikke minst den molekylære regulering av PGE og dets forhold til utviklingsbiologi hos mTECs.
På grunn av den nære relatert av strukturert organisering av epitelceller i huden og thymus, vi har valgt en 3D organotypic kultur (OTC) system som hadde blitt opprinnelig utviklet for å etterligne differensiering av keratinocytter in vitro og dermed skape en dermal tilsvarende. OTC-systemet består av en inert matriks stillas belagt med dermale fibroblaster som er fanget i en fibringel, hvorpå keratinocytter utsåes 8,9. Her, erstattet vi keratinocytter med rensede mTECs. Samtidig som de grunnleggende funksjonene i denne modellen, vi optimalisert visse parametre.
I vedtatt OTC modell mTECs proliferated, gikk terminal differensiering og vedlikeholdes Mtec identitet og PGE, og dermed tett etterligne in vivo mTECs utvikling <sup> 10. Denne tekniske notatet gir en detaljert protokoll slik at den trinnvise oppsett av thymus OTC.
Ved siden RTOCs, har 3D OTC vært langt overlegne når det gjelder TEC differensiering og PGE vedlikehold / induksjon (tabell 1) i forhold til andre (i) 'forenklede 3D kulturer' med – fibroblaster alene uten stillas; (Ii) ved bruk av 2D-systemer – fibroblaster / feeder-celler ko-dyrket med TECS 10, (iii) 3T3-J2-celler, karakterisert ved at TEC-kloner som utvikles, men PGE er tapt, (iv) Matrigel eller (v) ECM komponenter (upubliserte data). PGE ble opprettholdt for opptil 7 dager…
The authors have nothing to disclose.
This work has been supported by the German Cancer Research Center (DKFZ), the EU-consortium “Tolerage”, the Deutsche Forschungsgemeinschaft (SFB 938) and the Landesstiftung Baden-Württemberg.
Pregnant C57BL/6 mice | Charles River WIGA | ||
LS columns | Miltenyi Biotec | 130-042-401 | |
MS columns | Miltenyi Biotec | 130-042-201 | |
CD45 Microbeads, mouse | Miltenyi Biotec | 130-052-301 | |
Anti-PE Microbeads | Miltenyi Biotec | 130-048-801 | |
Streptavidin Microbeads | Miltenyi Biotec | 130-048-101 | |
EpCAM (G8.8 -Alexa 647 and -biotin) | Ref. 12 | ||
CD80-PE antibody | BD Pharmingen | 553769 | |
CD45-PerCP antibody | BD Pharmingen | 557235 | |
Ly51-FITC antibody | BD Pharmingen | 553160 | |
CDR1-Pacific Blue | Ref. 15 | ||
Keratin 14 antibody | Covance | PRB-155P | |
Vimentin antibody | Progen | GP58 | |
Cy3-conjugated AffiniPure Goat anti-Rabbit IgG (H+L) | Jackson ImmunoResearch | 111-165-003 | |
Alexa 488-conjugated AffiniPure F(ab')2 Fragment Goat anti-Guinea Pig IgG (H+L) | Jackson ImmunoResearch | 106-546-003 | |
Goat anti-Rabbit IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 conjugate | Molecular Probes (Invitrogen GmbH) | A-11008 | |
Click-iT EdU Alexa Fluor 594 Imaging Kit | Invitrogen | C10339 | |
Click-iT EdU Alexa Fluor 488 Flow Cytometry Assay Kit | Invitrogen | C10425 | |
12-well filter inserts (thincerts) | Greiner bio-one | 657631 | |
12-well plate | Greiner | 665180-01 | |
Jettex 2005/45 | ORSA, Giorla Minore, Italy | ||
Fibrinogen TISSUECOL-Kit Immuno | Baxter | ||
Thrombin TISSUECOL-Kit Immuno | Baxter | ||
PBS | Serva | 47302.03 | |
DMEM | Lonza | BE12-604F | |
DMEM/F12 | Lonza | BE12-719F | |
HEPES | Gibco | 15630-049 | |
FBS Gold | GE Healthcare | A11-151 | |
Aprotinin (Trasylol) | Bayer | 4032037 | |
Cholera toxin | Biomol | G117 | |
Hydrocortisone | Seromed (Biochrom) | K3520 | |
L-ascorbic acid | Sigma | A4034 | |
TGF-ß1 | Invitrogen | PHG9214 | |
RANKL | R&D systems | 462-TR-010 | |
Thermolysin | Sigma Aldrich | T-7902 | |
OCT Compound | TissueTek | 4583 | |
Trizol (aka. Denaturing solution – Acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction) | Invitrogen | 10296028 | |
FastPrep FP120 | Thermo Scientific | ||
Collagenase Type IV | CellSystems | LS004189 | 0.2 mg/ml and 57U/ml final conc. |
Neutrale Protease (Dispase) | CellSystems | LS002104 | 0.2 mg/ml and 1.2U/ml final conc. |
DNase I | Roche | 11 284 932 001 | 25 µg/ml final conc. |