Summary

3D organotypiske Co-kultur Modell Støtte Medullary Thymus- epitelcelleproliferasjon, Differensiering og Promiscuous Gene Expression

Published: July 30, 2015
doi:

Summary

Studying medullary thymic epithelial cells in vitro has been largely unsuccessful, as current 2D culture systems do not mimic the in vivo scenario. The 3D culture system described herein – a modified skin organotypic culture model – has proven superior in recapitulating mTEC proliferation, differentiation and maintenance of promiscuous gene expression.

Abstract

Intra-thymic T-celle utvikling krever en intrikat tredimensjonale meshwork sammensatt av ulike stromaceller, dvs. ikke-T-celler. Thymocyttene traversere dette stillaset i en svært samordnet tidsmessig og romlig orden mens sekvensielt bestått obligatoriske sjekkpunktene, dvs. T-celle avstamning engasjement, etterfulgt av T-celle reseptor repertoar generasjon og valg før deres eksport til periferien. De to store bosatt celletyper danner dette stillaset er kortikale (cTECs) og marg tymiske epitelceller (mTECs). Et viktig trekk ved mTECs er den såkalte promiskuøse uttrykk for mange vev-restricted antigener. Disse vev-restricted antigener blir presentert for umodne tymocytter direkte eller indirekte av mTECs eller thymic dendrittiske celler, henholdsvis resulterer i selv toleranse.

Egnede in vitro modeller som emulerer de utviklingsveier og funksjoner av cTECs og mTECs er for tiden lackonge. Denne mangelen på tilstrekkelige eksperimentelle modeller har for eksempel hemmet analyse av promiskuøse genuttrykk, som fortsatt er dårlig forstått på cellulært og molekylært nivå. Vi tilpasset en 3D organotypiske co-kultur modell til kultur ex vivo isolerte mTECs. Denne modellen ble opprinnelig utviklet for å dyrke keratinocytter på en slik måte at det genereres et tilsvarende hud in vitro. 3D-modellen bevart viktige funksjonelle egenskaper av Mtec biologi: (i) spredning og terminal differensiering av CD80 lo, Aire-negative til CD80 hi, Aire-positive mTECs, (ii) respons til RANKL, og (iii) vedvarende uttrykk for FoxN1, Aire og vev-begrenset gener i CD80- hi mTECs.

Introduction

Utviklings thymocytter utgjør omtrent 98% av thymus, mens de resterende 2% består av en rekke celler som kollektivt komponere thymisk stroma (dvs. epitelceller, dendrittiske celler, makrofager, B-celler, fibroblaster, endotelceller). De ytre kortikale epitelceller (cTECs) anskaffe innvandring av pro-T-celler fra benmargen, T-celle avstamning induksjon i multipotente pre-T-celler og positiv utvelgelse av selv MHC begrenset umodne thymocyttene. De indre medullære tymiske epitel-celler (mTECs) er involvert i induksjon av toleranse disse thymocyttene med en høy affinitet for TCR selv-peptid / MHC-komplekser ved enten å indusere negativ seleksjon eller deres avvik i T-celle regulatoriske avstamning. I forbindelse med sentraltoleranseinduksjon, mTECs er unike ved at de uttrykker et bredt spekter av vev-begrenset selvantigener (tras) således speiler den perifere selv. Dette fenomenet kalles promiskuøse genuttrykk (PGE)1,2.

De fleste aktuelle studier på denne fascinerende celletype er avhengige av ex vivo isolerte celler, som ulike kortsiktige 2D kultursystemer alltid resulterte i tap av PGE og nøkkel regulator molekyler som MHC klasse II, FoxN1 og Aire løpet av de første to dagene 3-6 . Det forble imidlertid uklart, hvilke spesielle komponenter og funksjoner intakt 3D meshwork av thymus manglet i 2D-modeller. Den re-aggregering tymisk organkultur (RTOC) har vært så langt det eneste 3D-system som tillater studiet av T-celle utviklingen, på den ene side, og stromal cellebiologi, på den annen side, i et intakt thymus mikromiljø 7. Likevel, RTOCs har visse begrensninger, det vil si, at de allerede inneholder en kompleks blanding av celler, innebærer bruk av føtale stromale celler og tåle en maksimal dyrkningsperiode på 5 til 10 dager.

Mangelen på reductionist in vitro kultursystemer har hemmet studiet avflere aspekter av T-celle utvikling og thymic organogenesen ikke minst den molekylære regulering av PGE og dets forhold til utviklingsbiologi hos mTECs.

På grunn av den nære relatert av strukturert organisering av epitelceller i huden og thymus, vi har valgt en 3D organotypic kultur (OTC) system som hadde blitt opprinnelig utviklet for å etterligne differensiering av keratinocytter in vitro og dermed skape en dermal tilsvarende. OTC-systemet består av en inert matriks stillas belagt med dermale fibroblaster som er fanget i en fibringel, hvorpå keratinocytter utsåes 8,9. Her, erstattet vi keratinocytter med rensede mTECs. Samtidig som de grunnleggende funksjonene i denne modellen, vi optimalisert visse parametre.

I vedtatt OTC modell mTECs proliferated, gikk terminal differensiering og vedlikeholdes Mtec identitet og PGE, og dermed tett etterligne in vivo mTECs utvikling <sup> 10. Denne tekniske notatet gir en detaljert protokoll slik at den trinnvise oppsett av thymus OTC.

Protocol

Denne studien er godkjent av etikkomiteen av Regierungspräsidium Karlsruhe. Alle dyrene ble holdt under patogenfrie forholdene på den tyske Cancer Research Center (DKFZ). For alle kultur eksperimenter museunger som strekker seg fra 1 til 7 dager gamle ble brukt. 1. Isolering av mTECs fra Thymus MERK: Følgende fordøyelsen tiltak ble utført som tidligere beskrevet en under sterile forhold med noen endringer som følger. Halshogge museunge…

Representative Results

Vi har tatt i bruk en 3D organotypiske ko-kulturmodell (3D OTC) som var blitt opprinnelig utviklet for in vitro langvarig dyrking av keratinocytter 9. MACS-beriket mTECs (se MACS berikelse ordningen figur 1) ble sådd ut på et stillas som består av en fibringel og innesperrede fibroblaster. Fibroblastene gi vesentlig ekstracellulære matriks (ECM) som understøtter mTECs in vitro. MTECs ble dyrket i OTC i 4-14 dager i nærvær av RANKL i neddykkede kulturer i motsetning ti…

Discussion

Ved siden RTOCs, har 3D OTC vært langt overlegne når det gjelder TEC differensiering og PGE vedlikehold / induksjon (tabell 1) i forhold til andre (i) 'forenklede 3D ​​kulturer' med – fibroblaster alene uten stillas; (Ii) ved bruk av 2D-systemer – fibroblaster / feeder-celler ko-dyrket med TECS 10, (iii) 3T3-J2-celler, karakterisert ved at TEC-kloner som utvikles, men PGE er tapt, (iv) Matrigel eller (v) ECM komponenter (upubliserte data). PGE ble opprettholdt for opptil 7 dager…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work has been supported by the German Cancer Research Center (DKFZ), the EU-consortium “Tolerage”, the Deutsche Forschungsgemeinschaft (SFB 938) and the Landesstiftung Baden-Württemberg.

Materials

Pregnant C57BL/6 mice  Charles River WIGA
LS columns Miltenyi Biotec 130-042-401
MS columns Miltenyi Biotec 130-042-201
CD45 Microbeads, mouse Miltenyi Biotec 130-052-301
Anti-PE Microbeads Miltenyi Biotec 130-048-801
Streptavidin Microbeads Miltenyi Biotec 130-048-101
EpCAM (G8.8 -Alexa 647 and -biotin) Ref. 12
CD80-PE antibody BD Pharmingen 553769
CD45-PerCP antibody BD Pharmingen 557235
Ly51-FITC antibody BD Pharmingen 553160
CDR1-Pacific Blue Ref. 15
Keratin 14 antibody Covance PRB-155P
Vimentin antibody Progen GP58
Cy3-conjugated AffiniPure Goat anti-Rabbit IgG (H+L) Jackson ImmunoResearch  111-165-003
Alexa 488-conjugated AffiniPure F(ab')2 Fragment Goat anti-Guinea Pig IgG (H+L) Jackson ImmunoResearch  106-546-003
Goat anti-Rabbit IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 conjugate Molecular Probes (Invitrogen GmbH) A-11008
Click-iT EdU Alexa Fluor 594 Imaging Kit Invitrogen C10339
Click-iT EdU Alexa Fluor 488 Flow Cytometry Assay Kit Invitrogen C10425
12-well filter inserts (thincerts) Greiner bio-one 657631
12-well plate Greiner 665180-01
Jettex 2005/45 ORSA, Giorla Minore, Italy
Fibrinogen TISSUECOL-Kit Immuno Baxter
Thrombin TISSUECOL-Kit Immuno Baxter
PBS Serva 47302.03
DMEM Lonza BE12-604F
DMEM/F12 Lonza BE12-719F
HEPES Gibco 15630-049 
FBS Gold GE Healthcare A11-151
Aprotinin (Trasylol) Bayer 4032037
Cholera toxin Biomol G117
Hydrocortisone Seromed (Biochrom) K3520
L-ascorbic acid Sigma A4034
TGF-ß1 Invitrogen PHG9214
RANKL R&D systems 462-TR-010
Thermolysin Sigma Aldrich  T-7902
OCT Compound TissueTek 4583
Trizol (aka. Denaturing solution – Acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction) Invitrogen 10296028
FastPrep FP120 Thermo Scientific
Collagenase Type IV  CellSystems LS004189 0.2 mg/ml and 57U/ml final conc.
Neutrale Protease (Dispase) CellSystems LS002104 0.2 mg/ml and 1.2U/ml final conc.
DNase I  Roche 11 284 932 001 25 µg/ml final conc.

Referencias

  1. Derbinski, J., Schulte, A., Kyewski, B., Klein, L. Promiscuous gene expression in medullary thymic epithelial cells mirrors the peripheral self. Nat Immunol. 2, 1032-1039 (2001).
  2. Kyewski, B., Klein, L. A central role for central tolerance. Annual review of immunology. 24, 571-606 (2006).
  3. Bonfanti, P., et al. Microenvironmental reprogramming of thymic epithelial cells to skin multipotent stem cells. Nature. 466, 978-982 (2010).
  4. Kont, V., et al. Modulation of Aire regulates the expression of tissue-restricted antigens. Molecular Immunology. 45, 25-33 (2008).
  5. Mohtashami, M., Zuniga-Pflucker, J. C. Three-dimensional architecture of the thymus is required to maintain delta-like expression necessary for inducing T cell development. J Immunol. 176, 730-734 (2006).
  6. Palumbo, M. O., Levi, D., Chentoufi, A. A., Polychronakos, C. Isolation and characterization of proinsulin-producing medullary thymic epithelial cell clones. Diabetes. 55, 2595-2601 (2006).
  7. White, A., Jenkinson, E., Anderson, G. Reaggregate thymus cultures. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2008).
  8. Stark, H. J., et al. Epidermal homeostasis in long-term scaffold-enforced skin equivalents. J Investig Dermatol Symp Proc. 11, 93-105 (2006).
  9. Boehnke, K., et al. Effects of fibroblasts and microenvironment on epidermal regeneration and tissue function in long-term skin equivalents. Eur J Cell Biol. 86, 731-746 (2007).
  10. Pinto, S., et al. An organotypic coculture model supporting proliferation and differentiation of medullary thymic epithelial cells and promiscuous gene expression. J Immunol. 190, 1085-1093 (2013).
  11. Gabler, J., Arnold, J., Kyewski, B. Promiscuous gene expression and the developmental dynamics of medullary thymic epithelial cells. Eur J Immunol. 37, 3363-3372 (2007).
  12. Farr, A., Nelson, A., Truex, J., Hosier, S. Epithelial heterogeneity in the murine thymus: a cell surface glycoprotein expressed by subcapsular and medullary epithelium. The journal of histochemistry and cytochemistry : official journal of the Histochemistry Society. 39, 645-653 (1991).
  13. Stark, H. J., et al. Authentic fibroblast matrix in dermal equivalents normalises epidermal histogenesis and dermoepidermal junction in organotypic co-culture. Eur J Cell Biol. 83, 631-645 (2004).
  14. Schoop, V. M., Mirancea, N., Fusenig, N. E. Epidermal organization and differentiation of HaCaT keratinocytes in organotypic coculture with human dermal fibroblasts. J Invest Dermatol. 112, 343-353 (1999).
  15. Rouse, R. V., Bolin, L. M., Bender, J. R., Kyewski, B. A. Monoclonal antibodies reactive with subsets of mouse and human thymic epithelial cells. The journal of histochemistry and cytochemistry : official journal of the Histochemistry Society. 36, 1511-1517 (1988).

Play Video

Citar este artículo
Pinto, S., Stark, H., Martin, I., Boukamp, P., Kyewski, B. 3D Organotypic Co-culture Model Supporting Medullary Thymic Epithelial Cell Proliferation, Differentiation and Promiscuous Gene Expression. J. Vis. Exp. (101), e52614, doi:10.3791/52614 (2015).

View Video