Summary

Разделение эпидермиса и дермы крыс термолизином для обнаружения сайт-специфической воспалительной мРНК и белка

Published: September 29, 2021
doi:

Summary

Здесь представлен протокол отделения эпидермиса от дермы для оценки выработки медиатора воспалительного средства. После воспаления эпидермис задней лапы крыс отделяется от дермы термолизином при 4 °C. Затем эпидермис используется для анализа мРНК методом ОТ-ПЦР и оценки белка с помощью вестерн-блотт и иммуногистохимии.

Abstract

Простые в использовании и недорогие методы необходимы для определения специфического для участка производства воспалительных медиаторов и нейротрофиных препаратов во время повреждения кожи, воспаления и / или сенсибилизации. Целью этого исследования является описание протокола разделения эпидермиса и дермы с использованием термолизина, протеиназы, которая активна при 4 ° C. Чтобы проиллюстрировать эту процедуру, крыс Sprague Dawley анестезируют, а правым задним лапам вводят каррагинан. Через шесть и двенадцать часов после инъекции крыс с воспалением и наивных крыс усыпляют, а кусок задней лапы, гламурной кожи помещают в холодную модифицированную орлиную среду Дульбекко. Затем эпидермис отделяется на базальной мембране от дермы термолизином в PBS с хлоридом кальция. Далее дерму закрепляется микродиссекционными щипцами, а эпидермис аккуратно дразнят. Толуидиновым синим окрашиванием участков тканей показывают, что эпидермис отделяется чисто от дермы у базальной мембраны. Все клеточные слои кератиноцитов остаются нетронутыми, а эпидермальные гребни рете вместе с вмятинами от кожных сосочков отчетливо наблюдаются. Качественная и в режиме реального времени ОТ-ПЦР используется для определения фактора роста нервов и уровней экспрессии интерлейкина-6. Вестерн-блоттинг и иммуногистохимия, наконец, выполняются для обнаружения количества фактора роста нервов. Этот отчет иллюстрирует, что переваривание холодного термолизина является эффективным методом отделения эпидермиса от дермы для оценки изменений мРНК и белка во время воспаления.

Introduction

Оценка медиаторов воспаления и нейротрофических факторов со стороны кожи может быть ограничена из-за неоднородности типов клеток, обнаруженных в воспаленной дерме и эпидермисе1,2,3. Недавно было рассмотрено несколько ферментов, химических, термических или механических методов, включающих разделение двух слоев или для выполнения диссоциации клеток для оценки4. Кислота, щелочь, нейтральная соль и тепло могут быстро отделить эпидермис от дермы, но клеточный и внеклеточный отек часто возникает5,6. Трипсин, панкреатин, эластаза, кератиназа, коллагеназа, проназа, диспаза и термолизин являются ферментами, которые использовались для эпидермально-дермального разделения4,7. Трипсин и другие широкомасштабные протеолитические ферменты активны при 37-40 °C, но должны тщательно контролироваться, чтобы предотвратить диссоциацию эпидермальных слоев. Рассеивание расщепляет эпидермис на пластинке денса, но требует 24 ч для отделения в холодных4,8 или более коротких временных точках при 37 °C4,9. Ограничивающей особенностью всех этих методик является потенциальное нарушение морфологии тканей и потеря целостности мРНК и белка.

Для поддержания целостности мРНК и белка метод отделения кожи следует проводить на холоде в течение короткого периода времени. При оценке методов разделения кожи для исследований воспаления термолизин является эффективным ферментом для отделения эпидермиса от дермы при низких температурах4. Термолизин активен при 4 °C, расщепляет эпидермальные гемидемосомы от lamina lucida и отделяет эпидермис от дермы в течение 1–3 ч4,8,10. Целью данного отчета является оптимизация использования термолизина для отделения воспаленного эпидермиса крыс от дермы для выявления уровней мРНК и белка для медиаторов воспаления и нейротрофических факторов. Было представлено несколько предварительных докладов11,12,13,14,15. Целью данной рукописи является описание оптимальной методики разделения кожи с использованием термолизина и демонстрация обнаружения 1) маркеров воспаления, 2) мРНК интерлейкина-6 (IL-6) и 3) мРНК и белка фактора роста нервов (NGF) в эпидермисе крыс с каррагинаном-индуцированным воспалением (C-II)16,17. Предварительный отчет с использованием полной адъювантной модели Фройнда показывает, что уровни мРНК и белка NGF увеличиваются на ранней стадии во время воспаления15. У мышей сенсибилизация кожи при местном применении оксазолона вызывает ранний подъем мРНК IL-6 с использованием гибридизации in situ36. Как IL-6, так и NGF были замешаны в C-II18,19,но не было сообщений, описывающих уровни мРНК или белка для IL-6 или NGF конкретно из эпидермиса во время острых стадий C-II.

Техника термолизина недорогая и простая в исполнении. Кроме того, отделение термолизинов эпидермиса от дермы позволяет проводить мРНК, вестерн-блот и иммуногистохимический анализ медиаторов воспаления и нейротрофических факторов в процессе воспаления15. Исследователи должны быть в состоянии легко использовать эту технику как в доклинических, так и в клинических исследованиях воспаления кожи.

Protocol

Этот протокол следует рекомендациям по уходу за животными Центра медицинских наук Университета штата Оклахома IACUC (#2016-03). 1. Каррагинан-индуцированное воспаление (C-II) Обезболить самцов и/или самок крыс Sprague Dawley (200–250 г; 8–9 недель) изофлураном (или инъекционным анесте?…

Representative Results

Инъекция каррагинана в заднюю лапу крысы вызывала классические симптомы воспаления, такие как покраснение и отек16,17. Набухание задней лапы измеряли механическими суппортами20. Исходное значение толщины лапы было получено для каждой крысы п?…

Discussion

Исследование определило, что эпидермис глазчатой кожи задней лапы крысы легко отделялся от дермы с помощью термолизина (0,5 мГ/мл) в PBS с 1 мМ хлорида кальция при 4 °C в течение 2,5 ч. Гистологическая оценка показала, что эпидермис был отделен от дермы на базальной мембране и что эпидермальные…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Финансирование этого исследования было предоставлено Национальными институтами здравоохранения NIH-AR047410 (KEM)

Materials

λ-carrageenan Millipore Sigma 22049 Subcutaneous injection of carrageenan induces inflammation
7500 Fast Real-Time PCR System Thermo Fisher Scientific 4351107 For RT-PCR analysis
Calcium chloride (CaCl2), anhydrous Millipore Sigma 499609 Prevents autolysis of thermolysin
Crystal Mount Aqueous Mounting Medium Millipore Sigma C0612 Aqueous mounting medium after toluidine blue staining
Donkey anti-Mouse Alexa Fluor 555 Thermo Fisher Scientific A-31570 Secondary antibody for immunohistochemistry
Donkey anti-Rabbit IgG, Alexa Fluor 488 Thermo Fisher Scientific A-21206 Secondary antibody for immunohistochemistry
Dulbecco's Modified Eagle Medium Thermo Fisher Scientific 11966-025 To maintain tissue integrity
Ethylenediaminetetraacetic acid Millipore Sigma E6758 Stops thermolysin reaction
Moloney Murine Leukemia Virus (M-MLV) Reverse transcriptase Promega M1701 For complementary DNA synthesis
Mouse anti-NGF Antibody (E-12) Santa Cruz Biotechnology sc-365944 For neurotrophin immunohistochemistry
ProLong Gold Antifade Mountant Thermo Fisher Scientific P36930 To retard immunofluorescence quenching
Rabbit anti-PGP 9.5 Cedarlane Labs CL7756AP For intraepidermal nerve staining
SAS Sprague Dawley Rat Charles River Strain Code 400 Animal used for inflammation studies
Shandon M-1 Embedding Matrix Thermo Fisher Scientific 1310TS Tissue embedding matrix for tinctorial- and immuno-histochemistry
SimpliAmp Thermal Cycler Thermo Fisher Scientific A24811 For RT-PCR analysis
SYBR Select Master Mix Thermo Fisher Scientific 4472908 For RT-PCR analysis
Thermolysin Millipore Sigma T7902 From Geobacillus stearothermophilus
Toluidine Blue Millipore Sigma 89640 For tinctorial staining for brightfield microscopy
TRIzol Reagent Thermo Fisher Scientific 15596026 For total RNA extraction for RTPCR

Referenzen

  1. Choi, J. E., Di Nardo, A. Skin neurogenic inflammation. Seminars in Immunopathology. 40 (3), 249-259 (2018).
  2. Manti, S., Brown, P., Perez, M. K., Piedimonte, G. The role of neurotrophins in inflammation and allergy. Vitamins and Hormones. 104, 313-341 (2017).
  3. Schäkel, K., Schön, M. P., Ghoreschi, K. Pathogenesis of psoriasis. Zeitschrift für Dermatologie, Venerologie, und verwandte Gebiete. 67 (6), 422-431 (2016).
  4. Zou, Y., Maibach, H. I. Dermal-epidermal separation methods: research implications. Archives of Dermatological Research. 310 (1), 1-9 (2018).
  5. Baumberger, J. Methods for the separation of epidermis from dermis and some physiologic and chemical properties of isolated epidermis. Journal of the National Cancer Institute. 2, 413-423 (1942).
  6. Felsher, Z. Studies on the adherence of the epidermis to the corium. Journal of Investigative Dermatology. 8, 35-47 (1947).
  7. Einbinder, J. M., Walzer, R. A., Mandl, I. Epidermal-dermal separation with proteolytic enzymes. Journal of Investigative Dermatology. 46, 492-504 (1966).
  8. Rakhorst, H. A., et al. Mucosal keratinocyte isolation: a short comparative study on thermolysin and dispase. International Association of Oral and Maxillofacial Surgeons. 35 (10), 935-940 (2006).
  9. Tschachler, E., et al. Sheet preparations expose the dermal nerve plexus of human skin and render the dermal nerve end organ accessible to extensive analysis. Journal of Investigative Dermatology. 122 (1), 177-182 (2004).
  10. Walzer, C., Benathan, M., Frenk, E. Thermolysin treatment-a new method for dermo-epidermal separation. Journal of Investigative Dermatology. 92, 78-81 (1989).
  11. Anderson, M. B., Miller, K. E., Schechter, R. Evaluation of rat epidermis and dermis following thermolysin separation: PGP 9.5 and Nav 1.8 localization. Society for Neuroscience Abstract. 584 (9), (2010).
  12. Ibitokun, B. O., Anderson, M. B., Miller, K. E. Separation of corneal epithelium from the stroma using thermolysin: evaluation of corneal afferents. Society for Neuroscience Abstract. , 584 (2010).
  13. Nawani, P., Anderson, M., Miller, K. E. Structure-property relationship of skin. Oklahoma Center for Neuroscience Symposium Abstract. , (2011).
  14. Anderson, M. B., Miller, K. E. Intra-epidermal nerve fiber reconstruction and quantification in three-dimensions. Society for Neuroscience Abstract. 220, 23 (2017).
  15. Gujar, V. K. E., Miller, K. E. Expression of nerve growth factor in adjuvant-induced arthritis (AIA): A temporal study. Society for Neuroscience Abstract. 220, 23 (2017).
  16. Vinegar, R., et al. to carrageenan-induced inflammation in the hind limb of the rat. Federation Proceedings. 46 (1), 118-126 (1987).
  17. Fehrenbacher, J. C., Vasko, M. R., Duarte, D. B. Models of inflammation: Carrageenan- or complete Freund’s Adjuvant (CFA)-induced edema and hypersensitivity in the rat. Current Protocols in Pharmacology. , (2012).
  18. Li, K. K., et al. exerts its anti-inflammatory effects associated with suppressing ERK/p38 MAPK and Heme Oxygenase-1 activation in lipopolysaccharide-stimulated RAW 264.7 macrophages and carrageenan-induced mice paw edema. International Immunopharmacology. 54, 366-374 (2018).
  19. Sammons, M. J., et al. Carrageenan-induced thermal hyperalgesia in the mouse: role of nerve growth factor and the mitogen-activated protein kinase pathway. Brain Research. 876 (1-2), 48-54 (2000).
  20. Hoffman, E. M., Miller, K. E. Peripheral inhibition of glutaminase reduces carrageenan induced Fos expression in the superficial dorsal horn of the rat. Neuroscience Letters. 472 (3), 157-160 (2010).
  21. Crosby, H. A., Ihnat, M., Spencer, D., Miller, K. E. Expression of glutaminase and vesicular glutamate transporter type 2 immunoreactivity in rat sacral dorsal root ganglia following a surgical tail incision. Pharmacy and Pharmacology International Journal. 2 (3), 00023 (2015).
  22. Hoffman, E. M., Schechter, R., Miller, K. E. Fixative composition alters distributions of immunoreactivity for glutaminase and two markers of nociceptive neurons Nav1.8 and TRPV1, in the rat dorsal ganglion. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 58 (4), 329-344 (2010).
  23. Hoffman, E. M., Zhang, Z., Schechter, R., Miller, K. E. Glutaminase increases in rat dorsal root ganglion neurons after unilateral adjuvant-induced hind paw inflammation. Biomolecules. 6 (1), 10 (2016).
  24. van den Burg, B., Eijsink, V. Thermolysin and related Bacillus metallopeptidases. Handbook of Proteolytic Enzymes. , 540-553 (2013).
  25. Matthews, B. W. Thermolysin. Encyclopedia of Inorganic and Bioinorganic Chemistry. , (2011).
  26. Hybbinette, S., Boström, M., Lindberg, K. Enzymatic dissociation of keratinocytes from human skin biopsies for in vitro cell propagation. Experimental Dermatology. 8 (1), 30-38 (1999).
  27. Glade, C. P., et al. Multiparameter flow cytometric characterization of epidermal cell suspensions prepared from normal and hyperproliferative human skin using an optimized thermolysin-trypsin protocol. Archives of Dermatological Research. 288 (4), 203-210 (1996).
  28. Sato, J. D., Kan, M. Media for culture of mammalian cells. Current Protocols in Cell Biology. , (2001).
  29. Gragnani, A., Sobral, C. S., Ferreira, L. M. Thermolysin in human cultured keratinocyte isolation. Brazilian Journal of Biology. 67 (1), 105-109 (2007).
  30. Germain, L., et al. Improvement of human keratinocyte isolation and culture using thermolysin. Burns. 19 (2), 99-104 (1993).
  31. Michel, M., et al. Characterization of a new tissue-engineered human skin equivalent with hair. In Vitro Cellular & Developmental Biology. Animal. 35 (6), 318-326 (1999).
  32. Fassina, G., et al. Autolysis of thermolysin. Isolation and characterization of a folded three-fragment complex. European Journal of Biochemistry. 156 (2), 221-228 (1986).
  33. Petho, G., Reeh, P. W. Sensory and signaling mechanisms of bradykinin, eicosanoids, platelet-activating factor, and nitric oxide in peripheral nociceptors. Physiological Reviews. 92 (4), 1699-1775 (2012).
  34. Djouhri, L., et al. Time course and nerve growth factor dependence of inflammation-induced alterations in electrophysiological membrane properties in nociceptive primary afferent neurons. Journal of Neuroscience. 21 (22), 8722-8733 (2001).
  35. Denk, F., Bennett, D. L., McMahon, S. B. Nerve growth factor and pain mechanisms. Annual Review of Neuroscience. 40, 307-325 (2017).
  36. Flint, M. S., Dearman, R. J., Kimber, I., Hotchkiss, S. A. Production and in situ localization of cutaneous tumour necrosis factor alpha (TNF-alpha) and interleukin 6 (IL-6) following skin sensitization. Cytokine. 10 (3), 213-219 (1998).
  37. Crosby, H. A., Ihnat, M., Miller, K. E. Evaluating the toxicity of the analgesic glutaminase inhibitor 6-diazo-5-oxo-L-norleucine in vitro and on rat dermal skin fibroblasts. MOJ Toxicology. 1 (1), 00005 (2015).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Gujar, V., Anderson, M. B., Miller, K. E., Pande, R. D., Nawani, P., Das, S. Separation of Rat Epidermis and Dermis with Thermolysin to Detect Site-Specific Inflammatory mRNA and Protein. J. Vis. Exp. (175), e59708, doi:10.3791/59708 (2021).

View Video