Summary

Enregistrement électrophysiologique de<em> Drosophila</em> Sensilla Trichoid en Réponse aux Odorants de Faible Volatilité

Published: July 27, 2017
doi:

Summary

L'objectif global de ce protocole est de démontrer comment présenter des odorants de faible volatilité pour l'enregistrement à sens unique des neurones récepteurs olfactifs de Drosophila qui répondent aux phéromones cuticulaires à longue chaîne.

Abstract

Les insectes dépendent de leur odorat pour guider un large éventail de comportements essentiels à leur survie, tels que la recherche d'aliments, l'évitement des prédateurs, l'oviposition et l'accouplement. Une myriade de produits chimiques de volatilité variable ont été identifiés comme des odeurs naturelles qui activent les neurones des récepteurs olfactifs d'insectes (ORN). Cependant, l'étude des réponses olfactives aux odorants à faible volatilité a été entravée par une incapacité à présenter efficacement ces stimuli en utilisant des méthodes classiques d'administration d'odeurs. Ici, nous décrivons une procédure qui permet de présenter efficacement des odorants à faible volatilité pour l'enregistrement in vivo solo-sensillum (SSR). En minimisant la distance entre la source d'odeurs et le tissu cible, cette méthode permet l'application d'odorants biologiquement salants mais inaccessibles jusqu'à présent, y compris l'acide palmitoléique, une phéromone stimulante ayant un effet démontré sur les ORN impliqués dans la parade et le comportement d'accouplement 1 .Notre procédure offre ainsi une nouvelle voie pour tester une foule d'odorants à faible volatilité pour l'étude de l'olfaction des insectes et de la communication de la phéromone.

Introduction

Les ORN de Drosophila répondent à un grand nombre d'odorants, avec des longueurs de chaîne de carbone très variées et une variété de groupes fonctionnels, y compris les esters, les alcools, les cétones, les lactones, les aldéhydes, les terpènes, les acides organiques, les amines, les composés soufrés, les hétérocycliques et les aromatiques 2 , 3 . Les odeurs variées dans leurs caractéristiques physicochimiques peuvent avoir des volatilités nettement différentes, indiquées par la pression de vapeur du composé. Notamment, les odeurs biologiquement pertinentes pour Drosophila melanogaster diffèrent énormément de leur volatilité. Par exemple, les ORN Ir92a répondent à l'ammoniac 4 , très volatil, avec une pression de vapeur de 6,432 mmHg à 20 ° C. En revanche, les ORN Or67d répondent à une phéromone masculine, l'acétate de cis -acétate de vaccin ( c VA) 5 , 6 , dont la pression de vapeur est de 43 mmHg à 20 ° C.

Ove_content "> L'étude de la réponse olfactive aux odorants de faible volatilité est particulièrement difficile avec les méthodes classiques d'administration d'odeurs, dans lesquelles des odorants sont délivrés par un flux d'air porteur sur une distance relativement longue ( c.-à-d. Plusieurs centimètres). En tant que tel, les réponses olfactives rapportées À un odorant donné à faible volatilité peut varier considérablement selon la conception du système de distribution d'odeurs. Par exemple, la réponse signalée des ORN Or67d à une dose élevée de c VA varie de ~ 40 7 -> 200 pointes / s 6 . de plus, la fourniture inefficace des c VA avec les méthodes classiques d'administration est probablement attribuable à des résultats faussement négatifs, ce qui conduit à l'interprétation que c VA par elle – même pas suffisante pour activer Or67d Orns 8. Cette interprétation a été contestée plus tard par une autre étude utilisant un Méthode de livraison de l'odeur proche de la gamme 9. Il est donc imperaAfin de développer un système robuste d'administration d'odeurs pour la présentation efficace d'odorants de faible volatilité.

Récemment, nous avons identifié plusieurs acides gras cuticulaires à longue chaîne comme ligands pour Or47b ORN. Ils sont logés dans le Sensillum Trichoid Antenal de type 4 (at4). Parmi les odorants d'acides gras à longue chaîne, nous avons constaté que l'acide palmitoleique fonctionne comme une phéromone aphrodisiaque qui favorise la parade masculine en activant Or47b ORN 1 . Cependant, dans une autre étude utilisant une méthode classique d'administration d'odeur, le laurate de méthyle a montré des réponses des ORN Or47b, alors que l'acide palmitoleique n'a suscité aucune réponse lorsqu'on a été présenté à la même distance 10 . Par rapport à c VA, les acides gras à longue chaîne sont encore moins volatils, avec des pressions de vapeur inférieures à 0,001 mmHg à 25 ° C 11 . La faible volatilité inhérente aux odeurs d'acides gras à longue chaîne, qui empêche une présentation efficace à l'antenne viaLes systèmes conventionnels d'odeur-livraison, ont probablement représenté les résultats faussement négatifs 10 . Cette incohérence souligne l'insuffisance des systèmes classiques d'administration d'odeurs dans la présentation d'odorants à faible volatilité. On a précédemment montré que la livraison efficace des odeurs cuticulaires à la mouche nécessite une étroite proximité entre la source d'odeurs et le tissu cible 6 . Ainsi, pour caractériser pleinement les effets des phéromones biologiquement actives tout en imitant la distance dont elles sont probablement rencontrées par les mouches des fruits dans la nature 12 , 13 , nous avons convenu que la distance minimale doit être hautement prioritaire dans notre procédure.

Notre méthode présente d'autres avantages, y compris la compatibilité avec les plates-formes et les techniques d'électrophysiologie standard. Les configurations de plates-formes préexistantes nécessitent une modification minimale pour tenir compte de ce protocole, et la plupart des étapes de SSR ne nécessitent que des ajustements mineurs. CeRend notre technique facilement accessible aux chercheurs expérimentés en SSR. En outre, notre technique permet la présentation d'odorants à faible volatilité avec un déclenchement et un décalage brusques, en corrélant la délivrance de stimulus avec la réponse neuronale. Enfin, la disposition du matériel facilite les échanges rapides entre les cartouches odorantes, accélère la collecte des données sur une gamme de dosage souhaitée.

Nous commençons par examiner la préparation des électrodes de référence et d'enregistrement, la solution de l'hémolymphe pour adultes (AHL), les cartouches d'administration d'odorant et l'olfactomètre correspondant. Nous discutons ensuite de la préparation des solutions d'odorant d'acide palmitoleique, suivies de la préparation de la mouche pour l'enregistrement. Nous examinons les critères de sélection d'un sensillum trichoïde pour enregistrer et examinons de plus près le positionnement de la cartouche odorante avant de présenter les données représentatives obtenues selon cette méthode. Enfin, nous concluons en explorant des applications utiles de cette techniqueCertains problèmes rencontrés et leurs solutions.

Protocol

1. Préparation du matériel pour l'enregistrement at4 Utilisez un appareil extracteur à pipette pour préparer des électrodes avec des capillaires en verre aluminosilicaté (OD 1,0 mm, ID 0,64 mm). Enlevez légèrement la pointe de l'électrode de référence avec une paire de pinces fines pour faciliter l'insertion dans le clypeus de la mouche ( c'est -à- dire une plaque arrondie à l'avant de la tête de mouche, au-dessus des embouchures). NOTE: Les hommes WT…

Representative Results

Notre technique a été appliquée avec succès pour déterminer l'efficacité relative des isomères trans ( Figure 5A ) versus cis ( Figure 5B ) de l'acide palmitoleique. Nos données représentatives démontrent que l'acide trans- palmititoleique est un ligand plus efficace pour les ORN Or47b par rapport à l'isoforme cis ( figure 5C ). Un seul …

Discussion

Ici, nous avons décrit une procédure par laquelle les réponses des ORS Or47b à l'acide palmitoleique peuvent être induites et enregistrées de manière robuste. Nous avons modifié une méthode conventionnelle de traitement des odeurs longue distance 2 , 7 , 10 pour dépanner le problème de l'apport insuffisant d'odorant à la phéromone. Nous avons abordé la question de la volatilité à faible teneur en ode…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous remercions Ye Zhang pour l'aide avec les traces d'échantillons et Tin Ki Tsang pour l'aide avec les images. Ce travail a été soutenu par un prix de carrière précoce de la Fondation Ray Thomas Edwards et une subvention NIH (R01DC015519) aux subventions de C.-YS et NIH (R01DC009597 et R01DK092640) à JWW

Materials

Prep Setup & Miscellaneous Materials
Pipette Puller Instrument  Sutter Instruments
Novato CA USA
P97 Pipette Puller
Borosilicate Glass Capillaries World Precision Instruments
Sarasota FL USA
1B100F-4 to make holding rods
Aluminosilicate Glass Capillaries  Sutter Instruments
Novato CA USA
AF100-64-10 to make electrodes
Superfrost Microscope Slides Fisher Scientific
Pittsburgh PA USA
12-550-143 for fly-prep station
Permanent Double Sided Tape Scotch
St. Paul MN USA
NA for fly-prep station
Upright microscope Olympus
Shinjuku Tokyo Japan
BX51 for recording rig
Plastalina modeling clay Van Aken
North Charleston SC USA
B0019QZMQQ for prep station and to stablize the holding rod
Rapid-Flow Sterile Disposable Filter Unit with SFCA Membrane, 0.45 mm Nalgene
Rochester NY USA
#156-4045 to sterilize AHL solution
Name Company    Catalog Number Comments
Cartridge Materials    
200 µL pipette tip  VWR
Radnor PA USA
53508-810 to make odor cartridges and fly prep
Filter Paper Whatman
Maidstone Kent UK
740-E to make odor cartridges 
Vacuum Desiccator  Cole-Parmer
Vernon Hills IL USA
VX-06514-30 to vaporize ethanol solvent
Name Company    Catalog Number Comments
Odorant Materials    
cis-palmitoleic acid Cayman Chemical
Ann Arbor MI USA
#10009871 (CAS # 373-49-9) Or47b odorant
trans-palmitoleic acid Cayman Chemical
Ann Arbor MI USA
#9001798 (CAS # 10030-73-6) Or47b odorant
Ethanol Spectrum Chemical MFG. 
New Brunswick NJ USA
E1028-500MLGL to dilute palmitoleic acid 
Name Company    Catalog Number Comments
Rig Setup Materials    
Odorant Cartridge Micromanipulator Siskiyou
Grants Pass OR USA
MX130R to position the olfactometer
Flow Vision software  Alicat
Tuscon AZ USA
FLOWVISIONSC software to control flow rate
Mass Controller Alicat
Tuscon AZ USA
MC-2SLPM-D to control the flow rate for humidified air
Mass Controller Alicat
Tuscon AZ USA
MC-500SCCM-D to control the flow rate for odor stimulation
Clampex Molecular Devices
Sunnyvale CA USA
Ver. 10.4 Data acquisition software
Air delivery tube Ace Glass
Vineland NJ USA
8802-936  to deliver humidified air
50x objective lens  Olympus
Shinjuku Tokyo Japan
LMPLFL50X recording rig
Clampfit 10 Molecular Devices
Sunnyvale CA USA
Ver. 10.4 software for spike analysis 
Igor Pro 6 WaveMetrics
Lake Oswego OR USA
Ver. 6.37 software for data analysis 
Audio Monitor ALA Scientific Instruments
Farmingdale NY USA
NPIEXB-AUDIS-08B Aurally reports individual spikes
Extracellular Amplifier ALA Scientific Instruments
Farmingdale NY USA
NPIEXT-02F to increase the amplitude of electrical signals
Valve Controller Warner Instruments    VC-8 to control the opening of the valve for odor stimulation
Recording Electrode Micromanipulator Sutter Instruments
Novato CA USA
MP-285 to position recording electrode
Headstage Amplifier ALA Scientific Instruments
Farmingdale NY USA
EQ-16.0008 to increase the amplitude of electrical signals
Oscilloscope Tektronix
Beaverton OR USA
TDS2000C Visual report of individual spikes

Referenzen

  1. Lin, H. -. H., et al. Hormonal modulation of pheromone detection enhances male courtship success. Neuron. 90 (6), 1272-1285 (2016).
  2. Hallem, E. A., Carlson, J. R. Coding of odors by a receptor repertoire. Cell. 125 (1), 143-160 (2006).
  3. Silbering, A. F., et al. Complementary function and integrated wiring of the evolutionarily distinct Drosophila olfactory subsystems. J Neurosci. 31 (38), 13357-13375 (2011).
  4. Min, S., Ai, M., Shin, S. A., Suh, G. S. B. Dedicated olfactory neurons mediating attraction behavior to ammonia and amines in Drosophila. Proc Nat Acad Sci USA. 110, 1321-1329 (2013).
  5. Kurtovic, A., Widmer, A., Dickson, B. J. A single class of olfactory neurons mediates behavioural responses to a Drosophila sex pheromone. Nature. 446 (7135), 542-546 (2007).
  6. Van der Goes van Naters, W., Carlson, J. R. Receptors and neurons for fly odors in Drosophila. Curr Biol. 17, 606-612 (2007).
  7. Schlief, M. L., Wilson, R. I. Olfactory processing and behavior downstream from highly selective receptor neurons. Nat Neurosci. 10 (5), 623-630 (2007).
  8. Laughlin, J. D., Ha, T. S., Jones, D. N. M., Smith, D. P. Activation of Pheromone-sensitive neurons is mediated by conformational activation of pheromone-binding protein. Cell. 133 (7), 1255-1265 (2008).
  9. Gomez-Diaz, C., Reina, J. H., Cambillau, C., Benton, R. Ligands for pheromone-sensing neurons are not conformationally activated odorant binding proteins. PLoS Biol. 11 (4), e1001546 (2013).
  10. Dweck, H. K. M., et al. Pheromones mediating copulation and attraction in Drosophila. Proc Nat Acad USA. 112, 2829-2835 (2015).
  11. Cappa, C. D., Lovejoy, E. R., Ravishankara, A. R. Evaporation rates and vapor pressures of the even-numbered C8-C18monocarboxylic acids. J Phys Chem A. 112 (17), 3959-3964 (2008).
  12. Kimura, K. -. I., Sato, C., Yamamoto, K., Yamamoto, D. From the back or front: the courtship position is a matter of smell and sight in Drosophila melanogaster males. J Neurogenet. 29 (1), 18-22 (2015).
  13. Grosjean, Y., et al. An olfactory receptor for food-derived odours promotes male courtship in Drosophila. Nature. 478 (7368), 236-240 (2011).
  14. Wang, J. W., Wong, A. M., Flores, J., Vosshall, L. B., Axel, R. Two-photon calcium imaging reveals an odor-evoked map of activity in the fly brain. Cell. 112 (2), 271-282 (2003).
  15. Pellegrino, M., Nakagawa, T., Vosshall, L. B. Single sensillum recordings in the insects Drosophila melanogaster and Anopheles gambiae. J Vis Exp. (36), e1-e5 (2010).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Ng, R., Lin, H., Wang, J. W., Su, C. Electrophysiological Recording from Drosophila Trichoid Sensilla in Response to Odorants of Low Volatility. J. Vis. Exp. (125), e56147, doi:10.3791/56147 (2017).

View Video