Summary

生体内 再現性を促進するためのマウス網膜における血管損傷の読み出し

Published: April 21, 2022
doi:

Summary

ここでは、網膜静脈閉塞(RVO)の研究におけるフルオレセイン血管造影(FA)および光干渉断層撮影(OCT)画像の3つのデータ解析プロトコルを紹介します。

Abstract

眼科イメージングツールの進歩は、神経血管損傷の動物モデルを扱う研究者に前例のないレベルのアクセスを提供します。この優れた翻訳可能性を適切に活用するためには、これらの画像から定量的なデータを引き出す再現性のある方法を考案する必要があります。光干渉断層撮影(OCT)イメージングは、マイクロメートルの分解能で網膜組織像を解決し、血管血流の機能的差異を明らかにすることができます。ここでは、網膜静脈閉塞(RVO)の最適化されたマウスモデルにおける血管傷害後の病理学的損傷を特徴付けるために使用する非侵襲的血管読み出しについて説明します。これらの読み出しには、網膜形態のライブイメージング分析、毛細血管虚血の網膜内層の混乱(DRIL)測定、および網膜浮腫と血管密度のフルオレセイン血管造影測定が含まれます。これらの技術は、診療所で網膜疾患の患者を検査するために使用される技術に直接対応しています。これらの方法を標準化することで、動物モデルと眼科疾患の臨床表現型との直接かつ再現性のある比較が可能になり、血管損傷モデルの翻訳力が向上します。

Introduction

神経血管疾患は、死亡率と罹患率の主な原因である虚血性脳卒中、および視力喪失につながる網膜血管疾患の原因となる主要な医療問題です1,2。神経血管疾患をモデル化するために、網膜静脈閉塞(RVO)のマウスモデルを採用しています。このモデルは非侵襲的であり、臨床現場で網膜血管疾患のある人を検査するために使用されるものと同様のin vivoイメージング技術を利用しています。したがって、このモデルを使用すると、このモデルを利用した研究の翻訳の可能性が高まります。すべてのマウスモデルと同様に、モデルの再現性を最大化することが重要です。

網膜血管疾患は、70歳未満の人々の視力喪失の主な原因です。RVOは、糖尿病性網膜症に次いで2番目に多い網膜血管疾患です3。RVOに特徴的な臨床的特徴には、虚血性損傷、網膜浮腫、およびニューロン喪失の結果としての視力喪失が含まれる3,4。主要血管のレーザー光凝固を用いたRVOのマウスモデルが開発され、ヒトRVO 5,6,7で観察される主要な臨床病理を再現するために改良されています。眼科イメージングの進歩により、ヒトで使用される非侵襲的診断ツール、すなわちフルオレセイン血管造影(FA)および光干渉断層撮影(OCT)の複製も可能になりました6。フルオレセイン血管造影は、小さな蛍光色素であるフルオレセインの注射を使用して、血液網膜関門(BRB)の破壊による漏出、および閉塞部位を含む網膜の血流動態の観察を可能にします8,9。OCTイメージングは、網膜の高解像度断面画像の取得および網膜層の厚さおよび組織の研究を可能にする10。FA画像の分析は歴史的に主に定性的であり、研究間の直接的で再現性のある比較の可能性を制限しています。最近、OCTイメージングにおける層の厚さを定量化するための多くの方法が開発されましたが、現在標準化された分析プロトコルはなく、OCT画像取得のサイトはさまざまです11。これらのツールを適切に活用するためには、標準化された定量的で複製可能なデータ分析方法論が必要です。本論文では、RVO-フルオレセイン漏出、OCT層の厚さ、および網膜層の混乱のマウスモデルにおける病理学的損傷を評価するために使用される3つの血管読み出しを紹介します。

Protocol

このプロトコルは、眼科および視覚研究における動物の使用に関する視覚眼科研究協会(ARVO)の声明に従います。げっ歯類の実験は、コロンビア大学の施設動物管理使用委員会(IACUC)によって承認および監視されました。 注:イメージングは、体重約23gの生後2か月のC57BL / 6J雄マウスで行われました。 1. 網膜イメージング用試薬の調製 <l…

Representative Results

これらの分析方法により、FAおよびOCTイメージングによってキャプチャされた網膜病理の定量化が可能になります。代表的なデータが抽出される実験では、無傷の対照として機能するか、RVO手順を受け、Pen1-XBir3治療点眼薬またはPen1-生理食塩水ビヒクル点眼薬のいずれかを投与されたC57BL / 6J雄マウスを使用しました。RVO損傷モデルでは、光活性化色素12であるローズベンガ?…

Discussion

非侵襲的なげっ歯類網膜イメージングは、病理学を研究し、介入を開発するための道を提示します。以前の研究では、RVOのマウスモデルが開発および最適化されており、変動性を制限し、マウス網膜の一般的な臨床病理の信頼性の高い翻訳を可能にしています5,7,13。眼科イメージング技術の開発により、実験動物における…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究は、国立科学財団大学院研究フェローシッププログラム(NSF-GRFP)助成金DGE – 1644869(CKCOへ)、国立眼研究所(NEI)5T32EY013933(AMPへ)、国立神経障害・脳卒中研究所(RO1 NS081333、R03 NS099920からCMT)、および国防総省陸軍/空軍(DURIPからCMT)の支援を受けました。

Materials

AK-Fluor 10% Akorn NDC: 17478-253-10 light-sensitive
Carprofen Rimadyl NADA #141-199 keep at 4 °C
GenTeal Alcon 00658 06401
Image J NIH
InSight 2D Phoenix Technology Group OCT analysis software
Ketamine Hydrochloride Henry Schein NDC: 11695-0702-1
Phenylephrine Akorn NDCL174478-201-15
Phoenix Micron IV Phoenix Technology Group Retinal imaging microscope
Phoenix Micron Meridian Module Phoenix Technology Group Laser photocoagulator software
Phoenix Micron Optical Coherence Tomography Module Phoenix Technology Group OCT imaging software
Phoenix Micron StreamPix Module Phoenix Technology Group Fundus imaging and acquisition targeting
Photoshop Adobe
Refresh Allergan 94170
Tropicamide Akorn NDC: 174478-102-12
Xylazine Akorn NDCL 59399-110-20

References

  1. Tong, X., et al. The burden of cerebrovascular disease in the united states. Preventing Chronic Disease. 16, 180411 (2019).
  2. Nakahara, T., Mori, A., Kurauchi, Y., Sakamoto, K., Ishii, K. Neurovascular interactions in the retina: physiological and pathological roles. Journal of Pharmacological Sciences. 123 (2), 79-84 (2013).
  3. Jaulim, A., Ahmed, B., Khanam, T., Chatziralli, I. Branch retinal vein occlusion: epidemiology, pathogenesis, risk factors, clinical features, diagnosis, and complications. An update of the literature. Retina. 33 (5), 901-910 (2013).
  4. Ho, M., Liu, D. T. L., Lam, D. S. C., Jonas, J. B. Retinal vein occlusions, from basics to the latest treatment. Retina. 36 (3), 432-448 (2016).
  5. Zhang, H., et al. Development of a new mouse model of branch retinal vein occlusion and retinal neovascularization. Japanese Journal of Ophthalmology. 51 (4), 251-257 (2007).
  6. Ebneter, A., Agca, C., Dysli, C., Zinkernagel, M. S. Investigation of retinal morphology alterations using spectral domain optical coherence tomography in a mouse model of retinal branch and central retinal vein occlusion. PLoS One. 10 (3), 0119046 (2015).
  7. Fuma, S., et al. A pharmacological approach in newly established retinal vein occlusion model. Scientific Reports. 7, 43509 (2017).
  8. Cavallerano, A. Ophthalmic fluorescein angiography. Clinical Optometry. 5 (1), 1-23 (1996).
  9. Laatikainen, L. The fluorescein angiography revolution: a breakthrough with sustained impact. Acta Ophthalmologica Scandinavica. 82 (4), 381-392 (2004).
  10. Huang, D., et al. Optical coherence tomography. Science. 254 (5035), 1178-1181 (1991).
  11. Oberwahrenbrock, T., et al. Reliability of intra-retinal layer thickness estimates. PLoS One. 10 (9), 0137316 (2015).
  12. Avrutsky, M. I., et al. Endothelial activation of caspase-9 promotes neurovascular injury in retinal vein occlusion. Nature Communications. 11 (1), 3173 (2020).
  13. Colón Ortiz, C., Potenski, A., Lawson, J., Smart, J., Troy, C. Optimization of the retinal vein occlusion mouse model to limit variability. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (174), e62980 (2021).
  14. Schmidt-Erfurth, U., et al. Guidelines for the management of retinal vein occlusion by the European society of retina specialists (EURETINA). Ophthalmologica. 242 (3), 123-162 (2019).
  15. Yoshimura, T., et al. Comprehensive analysis of inflammatory immune mediators in vitreoretinal diseases. PLoS One. 4 (12), 8158 (2009).
  16. Mezu-Ndubuisi, O. J. In vivo angiography quantifies oxygen-induced retinopathy vascular recovery. Optometry and Vision Science. 93 (10), 1268-1279 (2016).
  17. Hui, F., et al. Quantitative spatial and temporal analysis of fluorescein angiography dynamics in the eye. PLoS One. 9 (11), 111330 (2014).
  18. Berry, D., Thomas, A. S., Fekrat, S., Grewal, D. S. Association of disorganization of retinal inner layers with ischemic index and visual acuity in central retinal vein occlusion. Ophthalmology. Retina. 2 (11), 1125-1132 (2018).
  19. Nicholson, L., et al. Diagnostic accuracy of disorganization of the retinal inner layers in detecting macular capillary non-perfusion in diabetic retinopathy. Clinical & Experimental Ophthalmology. 43 (8), 735-741 (2015).
  20. Obrosova, I., Chung, S., Kador, P. Diabetic cataracts: mechanisms and management. Diabetes/Metabolism Research and Reviews. 26 (3), 172-180 (2010).
  21. Hegde, K., Henein, M., Varma, S. Establishment of the mouse as a model animal for the study of diabetic cataracts. Ophthalmic Research. 35 (1), 12-18 (2003).
  22. Takahashi, H., et al. Time course of collateral vessel formation after retinal vein occlusion visualized by OCTA and elucidation of factors in their formation. Heliyon. 7 (1), 05902 (2021).
  23. Haj Najeeb, B., et al. Fluorescein angiography in diabetic macular edema: A new approach to its etiology. Investigation Ophthalmology & Visual Science. 58 (10), 3986-3990 (2017).
  24. Alam, M., et al. Quantitative optical coherence tomography angiography features for objective classification and staging of diabetic retinopathy. Retina. 40 (2), 322-332 (2020).
  25. Uddin, M., Jayagopal, A., McCollum, G., Yang, R., Penn, J. In vivo imaging of retinal hypoxia using HYPOX-4-dependent fluorescence in a mouse model of laser-induced retinal vein occlusion (RVO). Investigation Ophthalmology & Visual Science. 58 (9), 3818-3824 (2017).
  26. Qiang, W., Wei, R., Chen, Y., Chen, D. Clinical pathological features and current animal models of type 3 macular neovascularization. Frontiers in Neuroscience. 15, 734860 (2021).
  27. Park, J., et al. Imaging laser-induced choroidal neovascularization in the rodent retina using optical coherence tomography angiography. Investigation Ophthalmology & Visual Science. 57 (9), 331 (2016).
  28. Chen, J., Qian, H., Horai, R., Chan, C., Caspi, R. Use of optical coherence tomography and electroretinography to evaluate retinal pathology in a mouse model of autoimmune uveitis. PLoS One. 8 (5), 63904 (2013).

Play Video

Cite This Article
Chen, C. W., Potenski, A. M., Colón Ortiz, C. K., Avrutsky, M. I., Troy, C. M. In Vivo Vascular Injury Readouts in Mouse Retina to Promote Reproducibility. J. Vis. Exp. (182), e63782, doi:10.3791/63782 (2022).

View Video