Summary

إجراءات زرع نخاع العظم في الفئران لدراسة الهيماتوبويز الكلونية

Published: May 26, 2021
doi:

Summary

نحن نصف ثلاث طرق لزرع نخاع العظم (BMT): BMT مع تشعيع الجسم الكلي ، BMT مع التشعيع المحمية ، وطريقة BMT مع عدم وجود تكييف مسبق (BMT بالتبني) لدراسة التجويف الدموي الكلو في نماذج الماوس.

Abstract

الورم الدموي المكلور هو حالة سائدة مرتبطة بالعمر تنتج عن تراكم الطفرات الجسدية في الخلايا الجذعية والذرية الدموية (HSPCs). الطفرات في جينات السائق، التي تمنح اللياقة الخلوية، يمكن أن تؤدي إلى تطوير استنساخ HSPC الآخذة في التوسع التي تؤدي بشكل متزايد إلى الكريات البيض ذرية تؤوي الطفرة الجسدية. ولأن الهيماتوبويزات الكلونية ارتبطت بأمراض القلب والسكتة الدماغية والوفيات، فإن تطوير أنظمة تجريبية تقوم بنمذجة هذه العمليات هو المفتاح لفهم الآليات التي تؤدي إلى الحد من عامل الخطر الجديد هذا. عادة ما تستخدم إجراءات زرع نخاع العظم التي تنطوي على تكييف النقوي في الفئران ، مثل تشعيع الجسم الكلي (TBI) ، لدراسة دور الخلايا المناعية في أمراض القلب والأوعية الدموية. ومع ذلك ، لا مفر من الضرر المتزامن لمتخصصة نخاع العظم وغيرها من المواقع ذات الاهتمام ، مثل القلب والدماغ ، مع هذه الإجراءات. وهكذا، طور مختبرنا طريقتين بديلتين لتقليل أو تجنب الآثار الجانبية المحتملة الناجمة عن TBI: 1) زرع نخاع العظم مع التدريع التشعيع و 2) BMT بالتبني للفئران غير مشروطة. في الأعضاء المحمية ، يتم الحفاظ على البيئة المحلية مما يسمح بتحليل الهيماتوبويز الكلومي في حين أن وظيفة الخلايا المناعية المقيمة غير مضطربة. في المقابل ، فإن BMT بالتبني للفئران غير المكيفة له ميزة إضافية تتمثل في الحفاظ على كل من البيئات المحلية للأعضاء ومكانة الهيماتوبوتي. هنا، نقارن ثلاثة نهج مختلفة لإعادة تشكيل الخلايا الدموية ونناقش نقاط قوتها وحدودها لدراسات الهيماتوبويزات الكلوية في أمراض القلب والأوعية الدموية.

Introduction

الهيماتوبويز الكلوي (CH) هو شرط الذي لوحظ في كثير من الأحيان في الأفراد المسنين ويحدث نتيجة لتوسيع الجذعية الدموية وخلية السلف (HSPC) استنساخ تحمل طفرة جينية1. وقد اقترح أنه بحلول سن 50, معظم الأفراد سوف تكون قد اكتسبت في المتوسط خمس طفرات إكسونية في كل HSPC2, ولكن معظم هذه الطفرات سوف يؤدي إلى عواقب ضئيلة أو معدومة phenotypic للفرد. ومع ذلك ، إذا كانت إحدى هذه الطفرات تمنح عن طريق الصدفة ميزة تنافسية ل HSPC – مثل تعزيز انتشارها أو تجديدها الذاتي أو بقائها أو مزيجا من هذه – فقد يؤدي ذلك إلى التوسع التفضيلي للاستنساخ المتحول بالنسبة إلى مركبات الكربون الهيدروفلورية الأخرى. ونتيجة لذلك، فإن الطفرة ستنتشر بشكل متزايد من خلال نظام الهيماتوبوتيستيك حيث يؤدي HSPC المتحول إلى خلايا دم ناضجة، مما يؤدي إلى مجموعة متميزة من الخلايا المتحولة داخل الدم المحيطي. في حين ارتبطت الطفرات في العشرات من الجينات سائق مرشح مختلفة مع الأحداث التخفي داخل نظام الهيماتوبويات، من بين هذه، والطفرات في ميثيل ترانسفيراز الحمض النووي 3 ألفا(DNMT3A)وعشرة أحد عشر نقل 2 (TET2) هي الأكثر انتشارا3. وقد وجدت العديد من الدراسات الوبائية أن الأفراد الذين يحملون هذه الطفرات الوراثية لديهم خطر أعلى بكثير من أمراض القلب والأوعية الدموية (CVD), السكتة الدماغية, والوفيات سببية جميع3,4,5,6,7. في حين أن هذه الدراسات قد حددت أن هناك علاقة بين CH وزيادة الإصابة بالأمراض القلبية الوعائية والسكتة الدماغية، ونحن لا نعرف ما إذا كانت هذه العلاقة سببية أو ظاهرة مشتركة مع عملية الشيخوخة. للحصول على فهم أفضل لهذا الارتباط ، مطلوب نماذج حيوانية مناسبة تلخص بشكل صحيح الحالة البشرية ل CH.

وقد تم إنشاء العديد من نماذج الحيوانات CH من قبل مجموعتنا وغيرها باستخدام حمار وحشي، والفئران، والرئيسيات غير البشرية8،9،10،11،12،13،14. وغالبا ما تستخدم هذه النماذج أساليب إعادة تشكيل الدم عن طريق زرع الخلايا المعدلة وراثيا، وأحيانا باستخدام إعادة دمج Cre-lox أو نظام CRISPR. يسمح هذا النهج بتحليل طفرة جينية محددة في الخلايا الدموية لتقييم كيفية مساهمتها في تطور المرض. وبالإضافة إلى ذلك، فإن هذه النماذج غالبا ما تستخدم خلايا con أو مراسل للتمييز بين آثار الخلايا المتحولة من الخلايا العادية أو البرية. في كثير من الحالات، مطلوب نظام ما قبل تكييف لإغراق الخلايا الجذعية الدموية المانحة بنجاح.

حاليا، زرع نخاع العظم إلى الفئران المتلقية يمكن تقسيمها إلى فئتين رئيسيتين: 1) تكييف النقوي و 2) زرع غير مشروطة. يمكن تحقيق تكييف النقوي بإحدى طريقتين، وهما التشعيع الكلي للجسم (TBI) أو العلاج الكيميائي15. يتم تنفيذ TBI عن طريق إخضاع المتلقي لجرعة قاتلة من أشعة غاما أو الأشعة السينية ، وتوليد فواصل الحمض النووي أو الروابط المتقاطعة داخل الخلايا المقسمة بسرعة ، مما يجعلها لا يمكن إصلاحها16. Busulfan وسيكلوفوسفاميد هما أدوية العلاج الكيميائي شائعة الاستخدام التي تعطل مكانة الهيماتوبويات وبالمثل تسبب تلف الحمض النووي للخلايا الانقسام بسرعة. والنتيجة الصافية للشرط المسبق النقوي هي موت الخلايا الدموية، الذي يدمر نظام الهيماتوبويتيك لدى المتلقي. هذه الاستراتيجية لا تسمح فقط لengraftment ناجحة من HSPCs المانحة، ولكن يمكن أيضا منع رفض الكسب غير المشروع عن طريق قمع الجهاز المناعي المتلقي. ومع ذلك ، فإن الشروط المسبقة النقوي لها آثار جانبية شديدة مثل تلف الأنسجة والأعضاء وخلاياها المناعية المقيمة بالإضافة إلى تدمير مكانة نخاع العظمالأصلية 17. ولذلك، اقترحت أساليب بديلة للتغلب على هذه الآثار الجانبية غير المرغوب فيها، ولا سيما فيما يتعلق بالضرر الذي يلحق بالأجهزة ذات الاهتمام. وتشمل هذه الأساليب التشعيع المحمية من الفئران المتلقية وBMT بالتبني للفئران غيرمشروطة 9،17. حماية الصدر، تجويف البطن، الرأس أو المناطق الأخرى من التشعيع عن طريق وضع حواجز الرصاص يحافظ على الأنسجة ذات الأهمية المحمية من الآثار الضارة للإشعاع ويحافظ على سكان الخلايا المناعية المقيمين. من ناحية أخرى ، فإن BMT بالتبني من HSPCs للفئران غير المكيفة له ميزة إضافية لأنه يحافظ على مكانة الهيماتوبوتية الأصلية. في هذه المخطوطة، نقوم بوصف بروتوكولات ونتائج زراعة الخلايا الهيدروجرافية بعد عدة نظم زرع في الفئران، وتحديدا تسليم HSPC إلى فئران TBI، إلى الفئران المحمية جزئيا من الإشعاع، وإلى الفئران غير المكيفة. الهدف العام هو مساعدة الباحثين على فهم الآثار الفسيولوجية المختلفة لكل طريقة وكذلك كيفية تأثيرها على النتائج التجريبية في وضع CH وأمراض القلب والأوعية الدموية.

Protocol

وقد وافقت اللجنة المؤسسية لرعاية الحيوانات واستخدامها في جامعة فرجينيا على جميع الإجراءات المتعلقة بمواضيع الحيوانات. 1. قبل الشروط المسبقة ضع الفئران المتلقية على الماء المكمل بالمضادات الحيوية (5 mM sulfamethoxazole، 0.86 m m trimethoprim) ~ 24 ساعة قبل التشعيع. وهذا ضروري لمنع العدوى، …

Representative Results

لمقارنة تأثير ثلاث طرق BMT /ما قبل التكييف على زراعة الخلايا المانحة ، تم تحليل كسور الخلايا المانحة في الدم المحيطي وأنسجة القلب عن طريق قياس التدفق الخلوي في 1 شهر بعد BMT. كانت الخلايا المعزولة ملطخة بعلامات الكريات البيض المحددة لتحديد المجموعات الفرعية المختلفة من الكريات البيض. في هذه ا…

Discussion

لدراسات الهيماتوبويز الكلوة، وصفنا ثلاث طرق لBMT: BMT مع تشعيع الجسم الكلي، BMT مع التشعيع مع التدريع الجزئي، وطريقة BMT أقل استخداما التي لا تنطوي على تكييف مسبق (BMT بالتبني). وقد استخدمت هذه الأساليب لتقييم تأثير الهيماتوبويزات اللاستنساخية على أمراض القلب والأوعية الدموية. يمكن للباحثين تعد?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

تم دعم هذا العمل من قبل المعاهد الوطنية الأمريكية للصحة المنح إلى ك. والش (HL131006، HL138014، وHL132564)، إلى سانو (HL152174)، منحة جمعية القلب الأمريكية إلى م. أ. إيفانز (20POST35210098)، ومنحة مؤسسة القلب اليابانية إلى H. Ogawa.

Materials

0.5ml microcentrifuge Fisher Scientific 05-408-121 general supply
1.5ml microcentrifuge Fisher Scientific 05-408-129 general supply
1/2 cc LO-DOSE INSULIN SYRINGE EXELINT 26028 general supply
Absolute Ethanol (200 prfof) Fisher chemical 200559 general supply
BD 1mL Tuberculin Syringes 25G 5/8 Inch Needle Becton Dickinson 309626 general supply
BD PrecisionGlide Needle 18G (1.22mm X 25mm) Becton Dickinson 395195 general supply
Cesium-137 Irradiator J. L. Shepherd  Mark IV equipment
DietGel 76A Clear H2O 70-01-5022 general supply
Falcon 100 mm TC-Treated Cell Culture Dish Life Sciences 353003 general supply
Falcon 50 mL Conical Centrifuge Tubes Fisher Scientific 352098 general supply
Fisherbrand sterile cell strainers, 70 μm Fisher Scientific 22363548 general supply
Graefe Forceps Fine Science Tools 11051-10 general supply
Hardened Fine Scissors Fine Science Tools 14090-09 general supply
Isothesia (Isoflurane) solution Henry Schein 29404 Solution
Ketamine Zoetis 043-304 injection
Kimwipes Delicate Task Wipers Kimtech Science KCC34155 general supply
PBS pH7.4 (1X) Gibco 10010023 Solution
RadDisk – Rodent Irradiator Disk Braintree Scientific IRD-P M general supply
RPMI Medium 1640 (1X) Gibco 11875-093 Medium
Sulfamethoxazole and Trimethoprim TEVA 0703-9526-01 injection
Xylazine Akorn 139-236 injection
X-ray irradiator Rad source RS-2000 equipment

References

  1. Evans, M. A., Sano, S., Walsh, K. Cardiovascular disease, aging, and clonal hematopoiesis. Annual Review of Pathology: Mechanisms of Disease. 15 (1), 419-438 (2020).
  2. Welch, J. S., et al. The origin and evolution of mutations in acute myeloid leukemia. Cell. 150 (2), 264-278 (2012).
  3. Jaiswal, S., et al. Age-related clonal hematopoiesis associated with adverse outcomes. New England Journal of Medicine. 371 (26), 2488-2498 (2014).
  4. Dorsheimer, L., et al. Association of mutations contributing to conal hematopoiesis with prognosis in chronic ischemic heart failure. JAMA Cardiology. 4 (1), 25 (2019).
  5. Genovese, G., et al. Clonal hematopoiesis and blood-cancer risk inferred from blood DNA sequence. New England Journal of Medicine. 371 (26), 2477-2487 (2014).
  6. Jaiswal, S., et al. Clonal hematopoiesis and risk of atherosclerotic cardiovascular disease. New England Journal of Medicine. 377 (2), 111-121 (2017).
  7. Bick, A. G., et al. Genetic interleukin 6 signaling deficiency attenuates cardiovascular risk in clonal hematopoiesis. Circulation. 141 (2), 124-131 (2020).
  8. Fuster, J. J., et al. Clonal hematopoiesis associated with TET2 deficiency accelerates atherosclerosis development in mice. Science. 355 (6327), 842-847 (2017).
  9. Wang, Y., et al. Tet2-mediated clonal hematopoiesis in nonconditioned mice accelerates age-associated cardiac dysfunction. JCI Insight. 5 (6), 135204 (2020).
  10. Sano, S., et al. Tet2-mediated clonal hematopoiesis accelerates heart failure through a mechanism involving the IL-1β/NLRP3 inflammasome. Journal of the American College of Cardiology. 71 (8), 875-886 (2018).
  11. Sano, S., et al. JAK2-mediated clonal hematopoiesis accelerates pathological remodeling in murine heart failure. JACC: Basic to Translational Science. 4 (6), 684-697 (2019).
  12. Yu, K. R., et al. The impact of aging on primate hematopoiesis as interrogated by clonal tracking. Blood. 131 (11), 1195-1205 (2018).
  13. Sano, S., et al. CRISPR-mediated gene editing to assess the roles of Tet2 and Dnmt3a in clonal hematopoiesis and cardiovascular disease. Circulation Research. 123 (3), 335-341 (2018).
  14. Stachura, D. L., et al. Clonal analysis of hematopoietic progenitor cells in the zebrafish. Blood. 118 (5), 1274-1282 (2011).
  15. Gyurkocza, B., Sandmaier, B. M. Conditioning regimens for hematopoietic cell transplantation: one size does not fit all. Blood. 124 (3), 344-353 (2014).
  16. Bacigalupo, A., et al. Defining the intensity of conditioning regimens: working definitions. Biology of Blood and Marrow Transplantation. 15 (12), 1628-1633 (2009).
  17. Abbuehl, J. P., Tatarova, Z., Held, W., Huelsken, J. Long-term engraftment of primary bone marrow stromal cells repairs niche damage and improves hematopoietic stem cell transplantation. Cell Stem Cell. 21 (2), 241-255 (2017).
  18. Shao, L., et al. Total body irradiation causes long-term mouse BM injury via induction of HSC premature senescence in an Ink4a- and Arf-independent manner. Blood. 123 (20), 3105-3115 (2014).
  19. Cui, Y. Z., et al. Optimal protocol for total body irradiation for allogeneic bone marrow transplantation in mice. Bone Marrow Transplantation. 30 (12), 843-849 (2002).
  20. Koch, A., et al. Establishment of early endpoints in mouse total-body irradiation model. PLOS One. 11 (8), 0161079 (2016).
  21. Ismaiel, A., Dumitraşcu, D. L. Cardiovascular risk in fatty liver disease: the liver-heart axis-literature review. Frontiers in Medicine. 6, 202 (2019).
  22. Amann, K., Wanner, C., Ritz, E. Cross-talk between the kidney and the cardiovascular system. Journal of the American Society of Nephrology. 17 (8), 2112-2119 (2006).
  23. Liao, X., et al. Distinct roles of resident and nonresident macrophages in nonischemic cardiomyopathy. Proceedings of the National Academy of Sciences. 115 (20), 4661-4669 (2018).
  24. Honold, L., Nahrendorf, M. Resident and monocyte-derived macrophages in cardiovascular disease. Circulation Research. 122 (1), 113-127 (2018).
  25. Lavine, K. J., et al. The macrophage in cardiac homeostasis and disease. Journal of the American College of Cardiology. 72 (18), 2213-2230 (2018).
  26. Ginhoux, F., Guilliams, M. Tissue-resident macrophage ontogeny and homeostasis. Immunity. 44 (3), 439-449 (2016).
  27. Mildner, A., et al. Microglia in the adult brain arise from Ly-6C hi CCR2+ monocytes only under defined host conditions. Nature Neuroscience. 10 (12), 1544-1553 (2007).
  28. Cronk, J. C., et al. Peripherally derived macrophages can engraft the brain independent of irradiation and maintain an identity distinct from microglia. Journal of Experimental Medicine. 215 (6), 1627-1647 (2018).
  29. Lu, R., Czechowicz, A., Seita, J., Jiang, D., Weissman, I. L. Clonal-level lineage commitment pathways of hematopoietic stem cells in vivo. Proceedings of the National Academy of Sciences. 116 (4), 1447-1456 (2019).
  30. Gibson, B. W., et al. Comparison of cesium-137 and X-ray irradiators by using bone marrow transplant reconstitution in C57BL/6J mice. Comparative Medicine. 65 (3), 165-172 (2015).
  31. Cui, Y. Z., et al. Optimal protocol for total body irradiation for allogeneic bone marrow transplantation in mice. Bone Marrow Transplantation. 30 (12), 843-849 (2002).
  32. Kim, C. K., Yang, V. W., Bialkowska, A. B. The role of intestinal stem cells in epithelial regeneration following radiation-induced gut injury. Current Stem Cell Reports. 3 (4), 320-332 (2017).

Play Video

Cite This Article
Park, E., Evans, M. A., Doviak, H., Horitani, K., Ogawa, H., Yura, Y., Wang, Y., Sano, S., Walsh, K. Bone Marrow Transplantation Procedures in Mice to Study Clonal Hematopoiesis. J. Vis. Exp. (171), e61875, doi:10.3791/61875 (2021).

View Video