Summary

Fibrose intestinale induite par l'infection chronique à Salmonella

Published: September 22, 2019
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Summary

Ce protocole décrit un modèle de souris de la fibrose intestinale salmonella conduite qui ressemble aux caractéristiques pathologiques clés de Crohn’ la maladie de s comprenant l’inflammation transmurale et la fibrose. Cette méthode peut être utilisée pour évaluer les facteurs hôtes qui modifient les résultats fibrotiques à l’aide de souris mutantes maintenues sur un fond génétique C57Bl/6.

Abstract

La fibrose tissulaire caractérisée par l’accumulation pathologique de la matrice extracellulaire telle que le collagène est le résultat de l’inflammation persistante et de la réparation dysregulated. Dans la maladie inflammatoire d’entrailles (IBD), la fibrose mène aux formations récurrentes de restriction pour lesquelles il n’y a aucune thérapie efficace autre que la résection chirurgicale. En raison de son commencement tardif, les processus qui conduisent la fibrose sont moins étudiés et en grande partie inconnus. Par conséquent, les complications fibrotiques représentent un défi majeur dans IBD. Dans ce protocole, un modèle in vivo robuste de la fibrose intestinale est décrit où le pré-traitement de streptomycine des souris c57Bl/6 suivi du gavage oral avec le mutant salmonella Typhimurium de qualité vaccinale d’AroA mène à la colonisation persistante d’agent pathogène et fibrose du cecum. Méthodologies pour la préparation de S. Typhimurium ‘AroA pour l’inoculation, quantifier les charges pathogènes dans le cecum et la rate, et évaluer le dépôt de collagène dans les tissus intestinaux sont expliqués. Ce modèle expérimental de maladie est utile pour examiner des facteurs d’hôte qui augmentent ou exacerbent la fibrose intestinale CD-like.

Introduction

La colite ulcéreuse (UC) et la maladie de Crohn (CD) sont les deux formes principales d’IBD et sont caractérisées en tant que désordres inflammatoires chroniques et rechutants du tractus gastro-intestinal 1,2. Ces troubles ont un impact majeur sur la qualité de vie des patients. Les symptômes de la MII comprennent des douleurs abdominales, de la diarrhée, des nausées, une perte de poids, de la fièvre et de la fatigue3. Des études récentes ont identifié des facteurs génétiques et environnementaux qui contribuent à la pathogénie de la maladie; on pense que ces facteurs de risque contribuent à la perturbation de la barrière épithéliale entraînant la translocation ou le suréchantillonnage des antigènes luminals4. En conséquence, ceci initie une réponse inflammatoire aberrante à la flore commensal médiée par les cellules immunitaires intestinales4. Les caractéristiques des complications associées aux MII peuvent s’étendre à des sites au-delà du tractus gastro-intestinal affectant divers organes, y compris les articulations, la peau et le foie1,2. Les marques de l’UC incluent l’inflammation grave et diffuse typiquement localisée dans les deux points1. La pathologie de la maladie affecte la muqueuse et la sous-muqueuse de l’intestin entraînant des ulcérations muqueuses superficielles1. En revanche, CD peut affecter n’importe quelle partie du tractus gastro-intestinal bien que l’évidence de la maladie soit généralement trouvée dans le côlon et l’ilém distal2. En outre, l’inflammation dans le CD est transmural, affectant toutes les couches de la paroi intestinale2.

Plusieurs gènes de susceptibilité aux MII qui ont été identifiés indiqueraient que la dysrégulation de la barrière ou de l’immunité épithéliale est un facteur essentiel de la progression de la maladie5. Les mutations dans le domaine d’oligomerization de nucléotide 2 (NOD2) exprimées par des monocytes se sont avérées associées à la susceptibilité accrue au CD ; ceci met en évidence un lien entre la détection immunitaire innée altérée des composants bactériens et la maladie6. Des études d’association plus récentes à l’échelle du génome (GWAS) ont révélé d’autres voies potentiellement impliquées dans la pathogénie de la MII, y compris les variations génétiques dans : STAT1, NKX2-3, IL2RA, IL23R voies dépendantes lié à l’immunité adaptative, MUC1, MUC19, et PTGER4 dans l’entretien des barrières intestinales, et ATG16L-mediated autophagie7,8,9. Bien que ces études génétiques basées sur la population aient amélioré notre compréhension des MII, les alleles de susceptibilité seuls sont probablement insuffisants pour initier et soutenir la maladie chronique3. D’autres facteurs non génétiques, y compris des altérations de la composition du microbiome intestinal et une réduction de la diversité, ont été associés à une inflammation intestinale. Cependant, il n’est pas clair si la dysbiose intestinale précède ou est la conséquence des réponses immunitaires dysrégulées3. Bien que l’étiologie de la MII reste incertaine, notre compréhension de la pathogénie de la maladie a été améliorée par des modèles expérimentaux de souris de l’inflammation intestinale10,11. Ces modèles individuellement ne représentent pas pleinement la complexité de la maladie humaine, mais ils sont précieux pour élucider les voies pathophysiologiques qui pourraient être pertinentes pour les MII et pour la validation des stratégies thérapeutiques provisoires10, 11. Ces modèles de souris reposent généralement sur l’initiation de l’inflammation par induction chimique ou d’infection, le transfert de cellules immunitaires, ou la manipulation génétique. En outre, ces stratégies impliquent souvent des perturbations dans l’intégrité épithéliale ou la modulation de l’immunité innée ou adaptative.

Salmonella enterica serovars sont des agents pathogènes intestinaux qui peuvent infecter les humains et les souris. Après l’ingestion, Salmonella peut coloniser l’intestin par invasion directe d’épithélia, de cellules M ou de cellules présentant des antigènes12. Souris infectées par la s. Typhimurium résultats dans la colonisation principalement des sites systémiques tels que la rate et les ganglions lymphatiques mésentériques avec une abondance relativement faible dans le tractusgastro-intestinal 12. Cependant, le prétraitement des souris avec la streptomycine améliore l’efficacité de la colonisation de Salmonella de l’intestin en diminuant les effets protecteurs d’hôte du microbiote normal13. Les dispositifs pathologiques de ce modèle incluent la perturbation ou l’ulcération de la barrière épithéliale, le recrutement de granulocyte, et l’oème grave13. Alternativement, l’infection par le vaccin de catégorie S. Typhimurium ‘AroA mutant conduit à la colonisation chronique du cecum et du côlon qui persiste jusqu’au jour 40 après l’infection14. Le S. La souche Typhimurium ‘AroA a un défaut dans la biosynthèse des acides aminés aromatiques; cela rend la souche mutante avirulente et peut être utilisé comme un vaccin très efficace15. L’infection orale chez les souris mène à une réponse inflammatoire associée de Th1- et de Th17-cytokine, au remodelage étendu de tissu, et au dépôt de collagène. La pathologie tissulaire est associée à des niveaux élevés de facteur pro-fibrotique tels que le TGF-1, le CTGF et l’IGF14. Les cicatrices fibrotiques transmuriques rapportées dans ce modèle rappellent les formations de restriction souvent observées dans IBD. L’induction de la fibrose par Salmonella nécessite une virulence codée par salmonella pathogenicité îles (SPI)-1 et 2 12. Fait important, ce S. Le modèle d’infection tymphimurium d’AroA est un système utile pour l’étude des réponses fibrotiques chez les souris mutantes maintenues sur un fond c57/Bl6. La souche C57/Bl6 est extrêmement sensible au S. Typhiumurim SL1344 infection due à une mutation de perte de fonction dans le gène codant la protéine macrophage associée à la résistance naturelle (NRAMP)-116,17. Nous avons constaté que les cellules lymphoïdes innées dépendantes de l’IL-17A et de la ROR sont des facteurs importants de la pathogénie dans ce modèle18.

Une complication majeure du CD est le dépôt dysrégulé et excessif de la matrice extracellulaire (ECM) y compris le collagène2,19. Bien que le tractus gastro-intestinal ait une capacité relativement élevée de régénération, les cicatrices fibrotiques peuvent survenir en raison de réponses non résolues de guérison des plaies qui sont associées à une inflammation chronique et sévère20,21. En CD, cela entraîne des effets délétères sur l’architecture tissulaire conduisant à une déficience importante des organes21,22. La nature transmurimurale de l’inflammation observée dans le CD précède finalement l’épaississement de la paroi intestinale associée à la sténose symptomatique ou à la formation de restriction21. Environ un tiers des patients de CD ont besoin de résection intestinale pour cette complication22. Il n’existe pas de thérapies antifibrotiques efficaces dans les MII étant donné que l’utilisation d’immunosuppresseurs tels que l’azathioprine ou les produits biologiques anti-TNMD n’a pas d’impact ou seulement modestement réduit l’exigence d’interventions chirurgicales19,23 . Tandis que la fibrose est vraisemblablement la conséquence de l’inflammation chronique, les cellules d’origine mesenchymal telles que des fibroblastes et des périrites sont vraisemblablement les sources cellulaires primaires de l’ECM dans la cicatrisation fibrotique21,24. S chronique. L’infection au Typhimurium est un modèle robuste de fibrose intestinale qui peut offrir un aperçu de la pathogénie des caractéristiques semblables à des CD.

Protocol

Tous les protocoles sur les animaux ont été approuvés par le Comité des soins aux animaux de l’Université de la Colombie-Britannique. 1. Préparation des cultures Salmonella Typhimurium ‘AroA pour le gavage oral des souris À partir d’un stock de glycérol congelé de S. Typhimurium AroA, préparer une plaque de stries à l’aide d’agar LB contenant 100 g/mL de streptomycine avec une boucle inoculante stérile. Incuber toute la nuit à 37 oC. Les plaques de stri…

Representative Results

Traitement de la streptomycine suivi d’une infection buccale par S. Typhimurium ‘AroA conduit à une inflammation intestinale robuste et la fibrose en particulier dans le cecum (Figure 1). Les charges pathogènes typiques de 108 à 109 UFC pour 1 g de cecum et de 104 CFU par 1 g de rate peuvent être récupérées sur des animaux infectés (figure 2). L’évaluation de la fibrose dans les sections de cécal teintées roug…

Discussion

Notre compréhension de la pathogénie de la MII a été grandement améliorée par des modèles murins de l’inflammation intestinale. Bien que ces modèles individuels ne récapitulent pas toutes les caractéristiques de la maladie humaine complexe et multifactorielle, ils ont été utiles pour identifier les principales caractéristiques de la progression de la maladie. Les restrictions fibrotiques associées aux MII demeurent un besoin clinique non satisfait majeur, car les traitements actuels sont inefficaces pour in…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous remercions Ingrid Barta pour ses services d’histologie.

Materials

2 ml round bottom safe lock tubes Eppendorf 22363344
Stainless steel beads Qiagen 69989
PBS Gibco 10010031
Large-Orifice Pipet Tips Fisher 2707134
2 mL megablock plates Sarstedt 82.1972.002
Gavage needles FST 18061-22
Streptomycin sulfate Sigma S9137
Mixer mill Retsch MM

References

  1. Danese, S., Fiocchi, C. Ulcerative colitis. New England Journal of Medicine. 365 (18), 1713-1725 (2011).
  2. Baumgart, D. C., Sandborn, W. J. Crohn’s disease. The Lancet. 380 (9853), 1590-1605 (2012).
  3. Knights, D., Lassen, K. G., Xavier, R. J. Advances in inflammatory bowel disease pathogenesis: linking host genetics and the microbiome. Gut. 62 (10), 1505-1510 (2013).
  4. Xavier, R. J., Podolsky, D. K. Unravelling the pathogenesis of inflammatory bowel disease. Nature. 448 (7152), 427-434 (2007).
  5. Cho, J. H. The genetics and immunopathogenesis of inflammatory bowel disease. Nature Reviews Immunology. 8 (6), 458-466 (2008).
  6. Ogura, Y., et al. A frameshift mutation in NOD2 associated with susceptibility to Crohn’s disease. Nature. 411 (6837), 603-606 (2001).
  7. Jostins, L., et al. Host-microbe interactions have shaped the genetic architecture of inflammatory bowel disease. Nature. 491 (7422), 119-124 (2012).
  8. Rivas, M. A., et al. Deep resequencing of GWAS loci identifies independent rare variants associated with inflammatory bowel disease. Nature Genetics. 43 (11), 1066-1073 (2011).
  9. Rioux, J. D., et al. Genome-wide association study identifies new susceptibility loci for Crohn disease and implicates autophagy in disease pathogenesis. Nature Genetics. 39 (5), 596-604 (2007).
  10. Uhlig, H. H., Powrie, F. Mouse models of intestinal inflammation as tools to understand the pathogenesis of inflammatory bowel disease. European Journal of Immunology. 39 (8), 2021-2026 (2009).
  11. Nell, S., Suerbaum, S., Josenhans, C. The impact of the microbiota on the pathogenesis of IBD: lessons from mouse infection models. Nature Reviews Microbiology. 8 (8), 564-577 (2010).
  12. Grassl, G. A., Finlay, B. B. Pathogenesis of enteric Salmonella infections. Current Opinion in Gastroenterology. 24 (1), 22-26 (2008).
  13. Barthel, M., et al. Pretreatment of mice with streptomycin provides a Salmonella enterica serovar Typhimurium colitis model that allows analysis of both pathogen and host. Infection and Immunity. 71 (5), 2839-2858 (2003).
  14. Grassl, G. A., Valdez, Y., Bergstrom, K., Vallance, B. A., Finlay, B. B. Chronic Enteric Salmonella Infection in Mice Leads to Severe and Persistent Intestinal Fibrosis. Gastroenterology. 134 (3), 768-780 (2008).
  15. Hoiseth, S. K., Stocker, B. A. Aromatic-dependent Salmonella typhimurium are non-virulent and effective as live vaccines. Nature. 291 (5812), 238-239 (1981).
  16. Valdez, Y., Ferreira, R. B., Finlay, B. B. Molecular mechanisms of Salmonella virulence and host resistance. Current Topics in Microbiology and Immunology. 337, 93-127 (2009).
  17. Valdez, Y., et al. Nramp1 drives an accelerated inflammatory response during Salmonella-induced colitis in mice. Cellular Microbiology. 11 (2), 351-362 (2009).
  18. Lo, B. C., et al. The orphan nuclear receptor RORalpha and group 3 innate lymphoid cells drive fibrosis in a mouse model of Crohn’s disease. Science Immunology. 1 (3), eaaf8864 (2016).
  19. Burke, J. P., et al. Fibrogenesis in Crohn’s disease. American Journal of Gastroenterology. 102 (2), 439-448 (2007).
  20. Hogan, B. L., et al. Repair and regeneration of the respiratory system: complexity, plasticity, and mechanisms of lung stem cell function. Cell Stem Cell. 15 (2), 123-138 (2014).
  21. Fiocchi, C., Lund, P. K. Themes in fibrosis and gastrointestinal inflammation. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 300 (5), G677-G683 (2011).
  22. Rieder, F., Fiocchi, C. Intestinal fibrosis in IBD—a dynamic, multifactorial process. Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology. 6 (4), 228-235 (2009).
  23. Bouguen, G., Peyrin-Biroulet, L. Surgery for adult Crohn’s disease: what is the actual risk?. Gut. 60 (9), 1178-1181 (2011).
  24. Wynn, T. A. Cellular and molecular mechanisms of fibrosis. The Journal of Pathology. 214 (2), 199-210 (2008).
  25. Junqueira, L. C., Bignolas, G., Brentani, R. R. Picrosirius staining plus polarization microscopy, a specific method for collagen detection in tissue sections. Histochem J. 11 (4), 447-455 (1979).
  26. Lo, B. C., et al. IL-22 Preserves Gut Epithelial Integrity and Promotes Disease Remission during Chronic Salmonella Infection. Journal of Immunology. 202 (3), 956-965 (2019).
  27. Fichtner-Feigl, S., et al. Induction of IL-13 triggers TGF-beta1-dependent tissue fibrosis in chronic 2,4,6-trinitrobenzene sulfonic acid colitis. Journal of Immunology. 178 (9), 5859-5870 (2007).
  28. Fichtner-Feigl, S., et al. IL-13 signaling via IL-13R alpha2 induces major downstream fibrogenic factors mediating fibrosis in chronic TNBS colitis. Gastroenterology. 135 (6), e2001-e2007 (2013).
  29. Johnson, L. A., et al. Intestinal fibrosis is reduced by early elimination of inflammation in a mouse model of IBD: impact of a "Top-Down" approach to intestinal fibrosis in mice. Inflammatory Bowel Diseases. 18 (3), 460-471 (2012).
  30. Darfeuille-Michaud, A., et al. High prevalence of adherent-invasive Escherichia coli associated with ileal mucosa in Crohn’s disease. Gastroenterology. 127 (2), 412-421 (2004).
  31. Small, C. L., Reid-Yu, S. A., McPhee, J. B., Coombes, B. K. Persistent infection with Crohn’s disease-associated adherent-invasive Escherichia coli leads to chronic inflammation and intestinal fibrosis. Nature Communications. 4, 1957 (2013).
  32. Imai, J., et al. Flagellin-mediated activation of IL-33-ST2 signaling by a pathobiont promotes intestinal fibrosis. Mucosal Immunology. , (2019).

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Lo, B. C., Shin, S. B., Messing, M., McNagny, K. M. Chronic Salmonella Infection Induced Intestinal Fibrosis. J. Vis. Exp. (151), e60068, doi:10.3791/60068 (2019).

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