Summary

הערכת פחמן אורגני יציב בקרקע שימוש סדרתית פומיגציה ונהלי דגירה

Published: October 29, 2016
doi:

Summary

Labile organic carbon (LOC) and the potential carbon turnover rate are sensitive indicators of changes in soil nutrient cycling processes. Details are provided for a method based on fumigating and incubating soil in a series of cycles and using the CO2 accumulated during the incubation periods to estimate these parameters.

Abstract

שיטות ניהול ושינויים סביבתיים יכולים לשנות מזין אדמה ורכיבה על אופניים הפחמן. הפחמן בקרקע אורגני יציב, ברכת C פריקים בקלות, רגיש מאוד הפרעה. זהו גם המצע העיקרי מיקרואורגניזמים באדמה, שהנו מרכיב מהותי אופניים מזינים. בשל תכונות אלה, פחמן אורגני יציב (LOC) זוהה כפרמטר אינדיקטור לבריאות אדמה. כימות התחלופה של LOC גם מסייעת בהבנת שינויים בתהליכי אופניים מזינים אדמה. שיטת דגירת עישון רציפה פותחה להעריך LOC אדמת קצב תחלופת C פוטנציאלי. השיטה מחייבת לאוורור דגימות קרקע וכימות CO 2 -C respired במהלך תקופת דגירה 10 יום על שורה של מחזורי עשון הדגירה. C האורגני יציב קצב תחלופת C פוטנציאלי אקסטרפולציה אז מן ושות שנצברו 2 עם מודל מעריכים שלילי. נוהלי ביצוע שיטה זו הם מתאריםד.

Introduction

בשל התפקידים החיוניים שלה בפחמן (C) ורכיבה על אופניים מזינים ורגישותה לשינוי אדמה, LOC האדמה הוא פרמטר חשוב למדוד כאינדיקצית איכות עניין אדמה אורגנית. יערות חקלאיים, אזורי חוף במידה רבה תלויים מינרליזציה של חומרים מזינים בעניין אדמה אורגני כמקור של חומרים מזינים. פעילויות ניהול יכולות לשנות את גודל ברכת קצב תחלופה של C האדמה אורגני, וכתוצאה מכך שינויים בהיצע מזין 1. C אורגני אדמה מורכב משני שברים העיקרי של C הסרבן, אשר יש שיעורי תחלופה של כמה אלפי שנים, LOC, אשר יש שיעורי תחלופה בין מספר שבועות עד מספר שנים 2,3,4. C היציב הקרקע מורכב מצעים פריקים בקלות כגון C ביומסה חיידקים, תרכובות נמוך משקל מולקולרי (חומצות אמינו, פחמימות פשוטות) מצמח rhizodeposition, ומוצרי לוואי פירוק תשטיפים מ 1,4,5 המלטת צמח. כיוון ש C אדמה יציב הוא פריקים בקלות, זהמאוד רגיש שיטות ניהול ותופעות טבע מפריעות או לשנות אדמה 6. קרקע יציב C משמש כמקור האנרגיה העיקרי מיקרואורגניזמים באדמה ב בעת פירוק של חומרים אורגניים 7. כמו רכיבה על אופני מזין כזה, משפיע LOC במידה רבה מאשר צורות יציבות של האדמה האורגני C 8. מיקרואורגניזמים באדמה אחראים גם רוב נשימת heterotrophic המתרחשת במהלך הפירוק של חומר אורגני בקרקע הסרבנית בהנחייתם ההשפעה תחול של LOC 9,10,11. נשימה זו ממלאת תפקיד משמעותי במחזורי C העולמיים כי C האדמה האורגני הוא בערך פי שתיים מזה של אטמוספרי C 11.

כתוצאה חשיבותו במערכות אקולוגיות יבשתי, מספר שיטות פותחו כדי להעריך אדמה LOC. שיטות אלה ניתן שמסומנות לשלושה סיווגים כלליים: פיזי, כימי, ביוכימיים. שיטות פרדת densitometric הן ספיד פיזיods המורכבת של הפרדת האדמה C האורגני לתוך שברים כבדים או קלים או לתוך גס חלקיקים עדינים 12,13,14,15 C אורגני. שיטות הפרדה קלות יחסית לביצוע, אבל הם לא לעתים קרובות לייצר תוצאות עקביות כי שברים אלה משתנים עם רכב מינרלי סוג הקרקע, גודל חומר צמחי וצפיפות, ועקביות המצרפי אדמת 13,15. שיטות הפרדה גם לייצר מידע כמותי רק על LOC 15.

בשיטות כימיות קיימות מספר לאמידת LOC. מיצוי מימי של פחמן אורגני הוא יחסית קל לבצע, ואת השיטות לעתים קרובות לספק תוצאות לשחזור בקלות. עם זאת, עקירות אלה אינן כרוכים הספקטרום השלם של מצעים זמינים עבור מיקרואורגניזמים 15. שיטות חמצון כמה עבור חלוקה כימית של C האורגני האדמה פותחו. שיטות חמצון יש את היתרון של המאפיינת את הכמות והאיכות של יציב אורגני C, אם כי שיטות מסוימות דורשות עבודה עם חומרים מסוכנים ישנים שונה בין שיטות שחזור של תוצאות 15. שיטת חילוץ הידרוליזה חומצית היא סוג אחר של הליך חלוק כימי שיכול למדוד את הכמות ואיכות של LOC, אבל תוצאות של שיטה זו לא להקל פרשנות של התכונות הביולוגיות שלה 13,15.

שיטות ביוכימיים לפרשנות של LOC אדמה פותחו. C אורגני יציב שניתן למדוד אותם CO 2 שוחרר על ידי מיקרואורגניזמים מבחני הנשימה. מבחנים אלו מספקים הערכות של חומר אורגני mineralizable נכון, אבל בדרך כלל רק את התרכובות היציבות ביותר הן mineralized במהלך המבחנים 15. C קרקע ביומסה חיידקים נמדדים דגירת עישון 16 ו-מיצוי עישון 17 נעשה שימוש כדי לפתח מסקנות לגבי LOC. עם זאת, נהלים אלה מספקים הערכות של C ביומסה חיידקים ולא LOנהלים ג שניהם עישון כוללים חיסור של ערכים מאדמת הלא חיטוי לקבוע C ביומסה חיידקים, אך הוצע כי ערכים שהתקבלו ללא חיסור של אדמה בלתי חיטוי לספק מידה מסוימת של שברים אורגניים יציבים של C בנוסף ביומסה מיקרוביאלית 18 .

הדגירה-עישון רציף (SFI) נוהל 13 למדידת LOC היא שיטה ביוכימית מותאמת מהליך עישון דגירת 16 למדידת C ביומסה אדמת חיידקים. שיטת SFI יש כמה יתרונות ביחס לשיטות אחרות של אמידת LOC. בסיס רעיוני עבור השיטה הוא LOC היא C מתכלה microbially השולטת התפתחותם של חיידקי LOC נגיש פיזי מתכלה כימי על ידי מיקרואורגניזמים באדמה. בתנאי שדה, התפתחותם של חיידקים מוגבלים בדרך כלל על ידי זמין פחמן, זמינות מזינה, נקבובי זמין, ו / או טריפה. גורמים אלה הם כמעט elimiהנדחה על ידי עישון, יצירת תנאים באין מפריעים במשך התפתחותם של חיידקים. לא מזין יוסרו במהלך תקופת הדגירה של השיטה. במהלך מחזורי עישון ו דגירה מרובים, התפתחותם של חיידקים הופכת מוגבלת על ידי כמות ואיכות C (לביליון) 13. שנצבר CO 2 respired במהלך מחזורי הדגירה משמש לחיץ LOC עם 11,13,19 מודל מעריכים שליליים פשוטים. שיעור תחלופת C הפוטנציאלי יכול גם לנבוע שיפוע מודל המעריכים, ולכן שיטת SFI יש היתרון על פני רוב שיטות LOC האחרות לאמוד בו זמנית ריכוזי קצב תחלופת פוטנציאל של LOC 11. עבור שיטות אחרות, מידע על שיעורי תחלופת הפוטנציאל של LOC ניתן לקביעה רק אם קליעים נותבים כגון 14 C משמשים 13. שיטת SFI היא אפוא טכניקה יחסית פשוטה וזולה עבור קבלת מדידות של שני LOC ושיעורי תחלופת הפוטנציאל שלה.

Protocol

1. אסוף קרקע לקבל מדגמים מייצגים של תנאי שבחטיבה הניסיונית ובתוך ניסיוני יחידות 20 לזהות את כל הבדלים מאפייני אתר כגון תכונות מדרון ואדמה כולל מרקם, צפיפות בצובר, pH, עומק אופק אורגני, ו / או בריכוזי חומרי הזנה. לזהו?…

Representative Results

שיטת SFI שמשה מתוארת במאמר זה בסדרה של ניסויים שנערכו 24,25,26,27 בדרום מזרח ארה"ב. יחד, הניסויים הללו הקיפו מגוון רחב של סוגי צמחייה, כוללים אורן Loblolly (Pinus taeda L.), וקליפות (Panicum virgatum L.), צפצפה (Populus deltoides ברטראם לשעבר מארש.), סויה (גליצין …

Discussion

The SFI method is an effective protocol for detecting differences in soil LOC and potential C turnover rates over a range of management practices (such as fertilization, tillage, vegetation control, and harvest practices) and soil conditions. Soil LOC content and C turnover rate can be used to understand alterations of nutrient cycles. The SFI method also provides measurement of microbial biomass C from the first fumigation-incubation event. The ability to measure soil LOC, C turnover, and microbial biomass C concurrentl…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors gratefully acknowledge Michelle Gonzales, Kenny Kidd, Brad Osbon, and all other personnel that conducted the laboratory procedures for these data. The authors are thankful for assistance from Andrew Scott in developing software coding to conduct model-fitting procedures. The authors also appreciate the funding from the U.S. Department of Agriculture National Institute of Food and Agriculture, Sustainable Agriculture and Research & Education, Sun Grant South Central region, and the National Council of Air and Stream Improvement that made possible the studies from which representative results provided in this paper were drawn.

Materials

Soil auger sampling kit JMC PN039 Several other manufacturers of punch augers are available
Parafilm Curwood PM999
Aluminum weighing boats Fisherbrand 08-732-103
General purpose drying oven Fisher Scientific 15-103-0511 Many other manufacturers of general purpose laboratory ovens are available
10.5 L vacuum desiccator Corning 3121-250
Glass scintillation vial Wheaton 968560
Glass threaded vials, 41 mL  Fisherbrand 03-339-21N
Chloroform, stabilized with amylenes Sigma-Aldrich 67-66-3
Boiling chips Fisher Scientific S25201
Glass rod Fisherbrand S63449
Size 10 rubber stopper Fisherbrand 14-130P Rubber stoppers can be purchased as solid and drilled in center to install glass rod or bought with a hole to insert glass rod
Wide-mouth PPCO bottle, 0.5 L ThermoScientific 3121050016
Sodium hydroxide, reagent grade Sigma-Aldrich S5881
Barium chloride Sigma-Aldrich 202738
Phenolphthalein indicator Fisher Scientific S25466
Hydrochloric acid solution, 0.1 N Fisher Scientific SA54-4

References

  1. Blair, G., et al. Soil carbon fractions based on their degree of oxidation, and the development of a carbon management index for agricultural systems. Aust. J. Agric. Res. 46, 1459-1466 (1995).
  2. Schimel, D. S., et al. Soil organic matter dynamics in paired rangeland and cropland toposequences in North Dakota. Geoderma. 36, 201-214 (1985).
  3. Parton, W. J., et al. Analysis of factors controlling soil organic matter levels in great-plains grasslands. Soil Sci. Soc. Am. J. 51, 1173-1179 (1987).
  4. Wu, H., et al. Labile organic C and N mineralization of soil aggregate size classes in semiarid grasslands as affected by grazing management. Biol. Fertil. Soils. 48, 305-313 (2011).
  5. Jones, D. L., et al. Plant and mycorrhizal regulation of rhizodeposition. New Phytol. 163, 459-480 (2004).
  6. Harrison, K. G., et al. The effect of changing land use of soil radiocarbon. Science. 262, 725-726 (1993).
  7. Jinbo, Z., et al. Land use effects on the distribution of labile organic carbon fractions through soil profiles. Soil Sci Soc. Am. J. 70, 660-667 (2006).
  8. Whalen, J. K., et al. Carbon and nitrogen mineralization from light- and heavy-fraction additions to soil. Soil Biol Biochem. 32, 1345-1352 (2000).
  9. Gregorich, E. G., et al. Towards a minimum data set to assess soil organic matter quality in agricultural soils. Can. J. Soil Sci. 74, 367-385 (1994).
  10. Hamer, U., et al. Priming effects in different soil types induced by fructose, alanine, oxalic acid and catechol additions. Soil Biol. Biochem. 37, 445-454 (2005).
  11. Feng, W., et al. Shifting sources of soil labile organic carbon after termination of plant carbon inputs in a subtropical moist forest of southwest China. Ecol. Res. 26, 437-444 (2011).
  12. Tisdall, J. M., Carter, M. R., Stewart, B. A. Formation of soil aggregates and accumulation of soil organic matter. Structure and Organic Matter Storage in Agricultural Soils. , 57-96 (1996).
  13. Zou, X. M., et al. Estimating soil labile organic carbon and potential turnover rates using a sequential fumigation-incubation procedure. Soil Biol. Biochem. 37, 1923-1928 (2005).
  14. Cambardella, C. A., Elliott, E. T. Particulate soil organic matter changes across a grassland cultivation sequence. Soil Sci. Soc. Am. J. 56, 777-783 (1992).
  15. Strosser, E. Methods for determination of labile soil organic matter: an overview. J. Agrobiol. 27, 49-60 (2010).
  16. Jenkinson, D. A., Powlson, D. S. The effects of biocidal treatment on metabolism in soil V: a method for measuring soil biomass. Soil Biol. Biochem. 8, 209-213 (1976).
  17. Vance, E. D., et al. An extraction method for measuring soil microbial biomass C. Soil Biol. Biochem. 19, 703-707 (1987).
  18. De-Polli, H., et al. Chloroform fumigation-extraction labile C pool (microbial biomass C "plus") shows high correlation to microbial biomass C in Argentinian and Brazilian soils. Cienc. Suelo. 25, 15-22 (2007).
  19. Olson, J. S. Energy storage and the balance of producers and decomposers in ecological systems. Ecology. 44, 322-331 (1963).
  20. Pennock, D., Carter, M. R., Gregorich, E. G., et al. Chapter 1, Unit 1, Soil sampling designs. Soil Sampling and Methods of Analysis. , (2008).
  21. Luizao, R. C. C., et al. Seasonal variation of soil microbial biomass: the effects of clearfelling a tropical rainforest and establishment of pasture in the central Amazon. Soil Biol. Biochem. 24, 805-813 (1992).
  22. Horwath, W. R., Paul, E. A., Weaver, R. W., et al. Microbial biomass. Methods of soil analysis part 2: microbiological and biochemical properties. , 753-773 (1994).
  23. Jenkinson, D. S., Ladd, J. N., Paul, E. A., Ladd, J. N. Microbial biomass in soil: measurement and turnover. Soil Biochemistry. , 415-471 (1981).
  24. Blazier, M. A., Gungor, E. B. O., et al. Poultry litter fertilization impacts on soil, plant, and water characteristics in loblolly pine (Pinus taeda L.) plantations and silvopastures in the mid-South USA. Principles, application, and assessment in soil science. , 43-74 (2011).
  25. Blazier, M. A., et al. Straw harvesting, fertilization, and fertilizer type alter soil biophysical properties in a loblolly pine plantation in the mid-South USA. Biol. Fertil. Soils. 45, 145-153 (2008).
  26. Blazier, M. A., et al. Loblolly pine age and density affects switchgrass growth and soil carbon in an agroforestry system. For. Sci. 58, 485-496 (2012).
  27. Blazier, M. A., et al. Nitrogen and carbon of switchgrass, loblolly pine, and cottonwood biofuel production systems in the Southeast United States. For. Sci. 61, 522-534 (2015).
  28. Zhang, M., et al. Decomposition differences of labile carbon from litter to soil in a tropical rain forest and rubber plantation of Xishuagbanna, southwest China. Eur. J. Soil Biol. 55, 55-61 (2013).
  29. Nelson, D. W., Sommers, L. E., Sparks, D., et al. Total carbon, organic carbon, and organic matter. Methods of soil analysis. Part 3: chemical methods. , 961-1090 (1996).
  30. Huang, L., et al. Correlation among soil microorganisms, soil enzyme activities, and removal rates of pollutants in three constructed wetlands purifying micro-polluted river water. Soil Biol. Biochem. 70, 221-228 (2012).
  31. Kong, L., et al. Enzyme and root activities in surface-flow constructed wetlands. Chemosphere. 76, 601-608 (2009).
  32. Cui, L., et al. Evaluation of nutrient removal efficiency and microbial enzyme activity in a baffled subsurface-flow constructed wetland system. Bioresour. Technol. 146, 656-662 (2013).
  33. Jenkinson, D. S., Wilson, J. R. Determination of microbial biomass carbon and nitrogen in soil. Advances in nitrogen cycling in agricultural ecosystems. , 368-386 (1988).
  34. Sparling, G. P., et al. Interference from plant roots in the estimation of soil microbial ATP, C, N, and P. Soil Biol. Biochem. 17, 275-278 (1985).
  35. Christie, P., Beatte, J. A. M. Significance of sample size in measurement of soil microbial biomass by the chloroform fumigation-incubation method. Soil Biol. Biochem. 19, 149-152 (1987).
  36. McLaughlin, K. K., Hobbie, S. E. Comparison of labile soil organic matter fractionation techniques. Soil Sci. Soc. Am. J. 68, 1616-1625 (2004).
  37. Xia, X., et al. Variation of soil labile organic carbon pools along an elevational gradient in the Wuyi Mountains, China. J. Resour. Ecol. 1, 368-374 (2010).

Play Video

Cite This Article
Blazier, M. A., Liechty, H. O. Assessment of Labile Organic Carbon in Soil Using Sequential Fumigation Incubation Procedures. J. Vis. Exp. (116), e54614, doi:10.3791/54614 (2016).

View Video