Summary

T hücreleri dendritik hücreler gelen Transinfection tarafından Bakteriler Yakalama

Published: January 13, 2016
doi:

Summary

Burada bir protokol, önceden enfekte edilmiş dendritik hücreler (DC) transinfection ile antijen sunumu sırasında ortaya çıkan, CD4 + T hücreleri tarafından bakteriyel yakalama ölçmek için sunulmuştur. Birincil hücreler, DC, DC / T hücre konjuge oluşumu enfeksiyon ve bakteri T hücre transfeksiyon ölçüm izolasyon: Biz gerekli adımları gerçekleştirmek için nasıl gösterir.

Abstract

Recently, we have shown, contrary to what is described, that CD4+ T cells, the paradigm of adaptive immune cells, capture bacteria from infected dendritic cells (DCs) by a process called transinfection. Here, we describe the analysis of the transinfection process, which occurs during the course of antigen presentation. This process was unveiled by using CD4+ T cells from transgenic OTII mice, which bear a T cell receptor (TCR) specific for a peptide of ovoalbumin (OVAp), which therefore can form stable immune complexes with infected dendritic cells loaded with this specific OVAp. The dynamics of green fluorescent protein (GFP)-expressing bacteria during DC-T cell transmission can be monitored by live-cell imaging and the quantification of bacterial transinfection can be performed by flow cytometry. In addition, transinfection can be quantified by a more sensitive method based in the use of gentamicin, a non-permeable aminoglycoside antibiotic killing extracellular bacteria but not intracellular ones. This classical method has been used previously in microbiology to study the efficiency of bacterial infections. We hereby explain the protocol of the complete process, from the isolation of the primary cells to the quantification of transinfection.

Introduction

Bir patojen konukçu bulaştığında, genellikle bakteriyel temizlenmesi için gerekli olan doğal ve kazanılmış bağışıklık tepkilerinin, bir aktivasyon vardır. Doğuştan gelen bağışıklık çoğu enfeksiyonları önler ilk savunma hattıdır. Doğuştan gelen bağışıklık mikroorganizma ana gruba arasında korunan bir hassas bir şekilde elemanları (patojenle ilişkili molekül örnekleri, PAMPS) 1 ayırt. Doğuştan gelen bağışıklık mekanizmaları fagositler (makrofajlar, nötrofiller ve dendritik hücreler), mast hücreleri, eozinofiller, bazofiller ve doğal öldürücü hücreleri içerir, fiziksel deri gibi engelleri, kimyasal bariyerler (antimikrobiyal peptitler, lizozim) ile doğuştan gelen lökositler arasında, 2. Bu hücreler temas yoluyla veya patojenin içine çeken ve öldürme içeren fagositoz yoluyla onlara saldırarak ya tanımlamak ve patojenleri ortadan kaldırır. Bu sistem, p karşı bağışıklık belleğini kazandıran adaptif bağışıklık aksine, yaşam boyu savunma izin vermezathogens. Adaptif bağışıklık sistemi savunma İkinci satır ve tanımak ve birden mikrobik olmayan mikrobiyal maddelerin 3 spesifik antijenlere tepki yapabiliyor. Adaptif immün sisteminin ana bileşenleri B ve T hücrelerini içerir lenfositlerdir. B hücreleri, patojenler veya dışsal proteinlere karşı antikorlar salgılayan, hümoral yanıt olarak dahil edilmektedir. Bununla birlikte, T hücreleri sitokin sekresyon veya öldürme patojen ile enfekte olmuş hücrelerde 4 bağışıklık tepkisini modüle hücre aracılı bağışıklık temsil etmektedir.

Büyük histo uyumlu kompleks (MHC) 5-7 hücre yüzeyinde sunulur antijenler içine fagosite ederler patojenler ve işlem bakteriyel bileşenler tanıyabilir dendritik hücreler ya da makrofajlar, doğal bağışıklık sisteminin bir parçası, aşağıdakileri içeren Antijen sağlayan hücreler (APC 'ler). APC 'ler patojenleri fagosite sonra, bunlar genellikle T etkileşime boşaltma lenf düğümlerine göçHücreler. T lenfositleri, T hücre reseptörleri tarafından spesifik peptit-MHC kompleksleri tanıyabilir. Bağışıklık sinaps (IS) antijen sunumu 8,9 sırasında antijen yüklü APC ve lenfosit arasındaki ara yüzeyde oluşur. Bazı bakteriler fagositozu hayatta ve APC 'içinde sistematik olarak yaymak olabilir. Bu görüşe göre, enfekte ZPT bakteriyel rezervuar veya bakteriyel yayılmasını kolaylaştıran 10 "Truva atları" olarak hizmet vermektedir. APC 've BS oluşumu sırasında gerçekleşecek lenfositler arasındaki yakın temas, aynı zamanda membranların, genetik materyalin ve eksozom parçası alışverişi için bir platform olarak işlev ve T hücreleri enfekte bazı virüsler için kaçırdılar olabilir; bu işlem 11-13 transinfection olarak adlandırılır.

Bazı patojen bakterilerin (Listeria monocytogenes, Salmonella enterica ve Shigella flexneri) in vivo T lenfositleri istila ve davranışlarını 14-16 değiştirmek edebiliyoruz. SahibizSon zamanlarda T lenfositleri de antijen sunumu 16 sırasında önceden enfekte dendritik hücreler (DC) dan transinfection bakterilerin yakalamak mümkün olduğunu anlattı. T hücresi doğrudan enfeksiyonlara daha (1,000-4,000x) derece daha etkili transinfection bakteri yakalama. Transinfection daha gösteren T hücreleri yakalama patojen olmayan patojen bakteriler T hücreleri tarafından tahrik edilen bir işlemdir. Çarpıcı, hücreler hızla yakalanan bakterileri öldüren ve profesyonel fagositler 16 daha çok fazla verimli yaptım T (TİT) transinfected. Immünoloji bir dogmayı kırmak Bu sonuçlar, adaptif bağışıklık hücreleri doğuştan gelen bağışıklık sözde münhasır olan işlevleri yerine göstermektedir. Buna ek olarak, meme ucu hücreleri pro-enflamatuar sitokinlerin büyük miktarlarda salgılarlar ve in vivo bakteriyel enfeksiyonlara karşı koruma gösterdi.

Burada bakteriyel transinfection sürecini incelemek için kullanılan farklı protokoller sunmakFare modeli. Bu model, bakteri bulaşmış kemik ile spesifik olarak etkileşime I-Ab 17 bağlamında OVA (OVAp) peptit 323-339 için TCR spesifik taşıyan transgenik farelerin OTII, CD4 + T hücrelerinin kullanımına dayanmaktadır iliği stabil bağışıklık sinaps meydana OVAp yüklü DH'ler türetilmiş (BMDCs) 18,19.

T hücre transinfection görüntülendi ve floresan mikroskobu kullanarak izlenebilir. Buna ek olarak, akış sitometrisi, yeşil floresan proteini (GFP) 16,20 ifade bakteriler tarafından yayılan floresan yararlanarak tarafından enfekte edilen hücreleri tespit edilmesi için de kullanılabilir. Ayrıca, T hücresi transinfection daha hassas bir yaklaşım, etkinlikleri sayıda ölçümünü sağlar gentamisin sağkalım analizi ile tayin edilebilir. Gentamisin ökaryotik hücreleri içine giremeyeceği bir antibiyotiktir. Bu nedenle, bu antibiyotiği kullanarak antibiyotik ilave fr hayatta hücre içi bakteri farklılaşmasını veriyor21 öldürüldüğü om dışı olanlar.

Protocol

Not: Deneysel işlemler Universidad Autonoma de Madrid Araştırma Etik Komitesi tarafından onaylanan ve İspanyol ve Avrupa kurallarına uygun olarak Hayvan Refahı ve Sağlık Universidad Autonoma de Madrid Başkanı'nın gözetiminde yapılmıştır. Fareler spesifik patojen free (SPF) konut yetiştirilen ve onlar karbon dioksiti kullanarak eğitimli ve kalifiye personel (CO 2) inhalasyon yöntemi ile ötenazi uygulandı. 1. Fare Kemik DH'ler Farklılaşma ve Enfeksiyon …

Representative Results

Akış sitometri ve gentamisin yaşam tahlil Şekil 1 hücreleri elde etmek prosedürü özetler:. Bu yazıda enfekte kemik iliği kaynaklı-DH'ler ve nasıl iki farklı yaklaşım yoluyla bakteri transinfection ölçmek için fare T hücre bakteriyel transinfection nasıl gerçekleştirileceği açıklanan. DCler, 9 gün boyunca GM-CSF ile kemik iliği hücrelerinin inkübe etmek suretiyle oluşturulur. Daha sonra DCler, OVA (OVAp) belirli bir peptid ile daha sonra …

Discussion

T hücreleri veya T lenfositleri adaptif bağışıklık yanıtı 26 hücre-aracılı bağışıklığın bir rol oynayabilir ve ait lökosit türüdür. T hücreleri in vitro enfekte olma dirençli ama bazı raporlar, in vivo 14,15 enfekte olabilir göstermektedir. Bağışıklık sinaps sırasında APC ve T hücrelerinin samimi kişiler HIV gibi bazı virüsler 11 de dahil olmak üzere biyolojik madde 13, alışverişi için platformlar olarak hizm…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by grants BFU2011-29450, BFU2008-04342/BMC from the Spanish Ministry of Science and Innovation and PIES201020I046 from Consejo Superior de Investigaciones Cientìficas (CSIC).

Materials

RPMI Fisher Scientific SH3025501
r-GMCSF Peprotech 315-03
LPS SIGMA L2630-10mg
Na Pyruvate Thermo Scientific SH3023901
2-ME Gibco 31350-010
OVAp OTII (323–339) GenScript
Cell Strainer 70uM BD 352350
 30uM Syringe Filcons Sterile BD 340598
AutoMacs Classic Miltenyi Biotec 130-088-887
Gentamicin Normon 624601.6
Transwell Costar 3415
LB Pronadisa 1231
Agar Pronadisa 1800
Paraformaldehyde 16% Electron Microscopy Sciences 15710
Triton X-100
CD8 biot BD Biosciences 553029
IgM Biot ImmunoStep Clone RMM-1
B220 Biot BD Biosciences 553086
CD19 biot BD Biosciences 553784
MHC-II Biot (I-A/I-E) BD Biosciences 553622
CD11b biot Immunostep 11BB-01mg
CD11c biot Immunostep 11CB3-01mg
DX5 biot BD Biosciences 553856
Gr-1 biot BD Biosciences 553125
CD16/CD32 ImmunoStep M16PU-05MG
anti Salmonella ABD Serotec 8209-4006
CD11cPE BD Biosciences 553802
CD4-APC Tonbo Biosciences 20-0041-U100
Gr-1 APC BD Biosciences 553129
MHC-II (I-A/I-E) FITC BD Biosciences 553623
Alexa-Fluor 647 Goat Anti-Rabbit IgG (H+L) Antibody, highly cross-adsorbed Invitrogen A-21245
CMAC (7-amino-4-chloromethylcoumarin) Life technologies C2110
BSA SIGMA A7030-100G
Streptavidin MicroBeads Miltenyi Biotec 130-048-101
BD FACSCanto II BD Biosciences

References

  1. Medzhitov, R. Recognition of microorganisms and activation of the immune response. Nature. 449 (7164), 819-826 (2007).
  2. Alberts, B., Johnson, A., Lewis, J., Raff, M., Roberts, K., Walter, P. . Molecular biology of the cell. , (1989).
  3. Pancer, Z., Cooper, M. D. The evolution of adaptive immunity. Annual Review of Immunology. 24, 497-518 (2006).
  4. Rhoades, R. A., Bell, D. R. . Medical Phisiology. , (2012).
  5. Cossart, P. Bacterial Invasion: The Paradigms of Enteroinvasive Pathogens. Science. 304 (5668), 242-248 (2004).
  6. Kaufmann, S. H., Schaible, U. E. Antigen presentation and recognition in bacterial infections. Current Opinion in Immunology. 17 (1), 79-87 (2005).
  7. Pizarro-Cerdá, J., Cossart, P. Bacterial Adhesion and Entry into Host Cells. Cell. 124 (4), 715-727 (2006).
  8. Dustin, M. L. T-cell activation through immunological synapses and kinapses. Immunological Reviews. 221, 77-89 (2008).
  9. Calabia-Linares, C., Robles-Valero, J., et al. Endosomal clathrin drives actin accumulation at the immunological synapse. Journal of Cell Science. 124 (5), 820-830 (2011).
  10. Westcott, M. M., Henry, C. J., Cook, A. S., Grant, K. W., Hiltbold, E. M. Differential susceptibility of bone marrow-derived dendritic cells and macrophages to productive infection with Listeria monocytogenes. Cellular Microbiology. 9 (6), 1397-1411 (2007).
  11. Geijtenbeek, T. B., Kwon, D. S., et al. DC-SIGN, a dendritic cell-specific HIV-1-binding protein that enhances trans-infection of T cells. Cell. 100 (5), 587-597 (2000).
  12. Izquierdo-Useros, N., Naranjo-Gòmez, M., et al. HIV and mature dendritic cells: Trojan exosomes riding the Trojan horse. PLoS Pathogens. 6 (3), e1000740 (2010).
  13. Mittelbrunn, M., Sanchez-Madrid, F. Intercellular communication: diverse structures for exchange of genetic information. Nature Reviews. Molecular cell biology. 13 (5), 328-335 (2012).
  14. McElroy, D. S., Ashley, T. J., D’Orazio, S. E. Lymphocytes serve as a reservoir for Listeria monocytogenes growth during infection of mice. Microbial Pathogenesis. 46 (4), 214-221 (2009).
  15. Salgado-Pabon, W., Celli, S., et al. Shigella impairs T lymphocyte dynamics in vivo. Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (12), 4458-4463 (2013).
  16. Cruz Adalia, A., Ramirez-Santiago, G., et al. T cells kill bacteria captured by transinfection from dendritic cells and confer protection in mice. Cell Host and Microbe. 15 (5), 611-622 (2014).
  17. Barnden, M. J., Allison, J., Heath, W. R., Carbone, F. R. Defective TCR expression in transgenic mice constructed using cDNA-based alpha- and beta-chain genes under the control of heterologous regulatory elements. Immunology and Cell Biology. 76 (1), 34-40 (1998).
  18. Matheu, M. P., Sen, D., Cahalan, M. D., Parker, I. Generation of bone marrow derived murine dendritic cells for use in 2-photon imaging. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (17), (2008).
  19. Inaba, K., Inaba, M., et al. Generation of large numbers of dendritic cells from mouse bone marrow cultures supplemented with granulocyte/macrophage colony-stimulating factor. Journal of Experimental Medicine. 176 (6), 1693-1702 (1992).
  20. Thöne, F., Schwanhäusser, B., Becker, D., Ballmaier, M., Bumann, D. FACS-isolation of Salmonella-infected cells with defined bacterial load from mouse spleen. Journal of Microbiological Methods. 71 (3), 220-224 (2007).
  21. Vaudaux, P., Waldvogel, F. A. Gentamicin antibacterial activity in the presence of human polymorphonuclear leukocytes. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 16 (6), 743-749 (1979).
  22. Zhang, X., Goncalves, R., Mosser, D. M., Coligan, J. E. Chapter 14, The isolation and characterization of murine macrophages. Current protocols in immunology. , Unit 14.1 (2008).
  23. Bedoya, S. K., Wilson, T. D., Collins, E. L., Lau, K., Larkin, J. Isolation and th17 differentiation of naïve CD4 T lymphocytes. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (79), e50765 (2013).
  24. Basu, S., Campbell, H. M., Dittel, B. N., Ray, A. Purification of specific cell population by fluorescence activated cell sorting (FACS). Journal of Visualized Experiments: JoVE. (41), (2010).
  25. Foucar, K., Chen, I. M., Crago, S. Organization and operation of a flow cytometric immunophenotyping laboratory. Seminars in diagnostic pathology. 6 (1), 13-36 (1989).
  26. Itano, A. A., Jenkins, M. K. Antigen presentation to naive CD4 T cells in the lymph node. Nature Immunology. 4 (8), 733-739 (2003).

Play Video

Cite This Article
Cruz-Adalia, A., Ramírez-Santiago, G., Torres-Torresano, M., Garcia-Ferreras, R., Veiga Chacón, E. T Cells Capture Bacteria by Transinfection from Dendritic Cells. J. Vis. Exp. (107), e52976, doi:10.3791/52976 (2016).

View Video