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MALDI-TOF Mass Spectrometry
  • 00:00Overview
  • 00:52Principles of MALDI-TOF Mass Spectrometry
  • 02:32Plate, Matrix, and Sample Preparation
  • 04:19Running the Mass Spectrometer
  • 05:16Applications
  • 07:09Summary

Spettrometria di massa MALDI-TOF

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Overview

La ionizzazione a desorbimento laser assistito da matrice (MALDI) è una sorgente ionica di spettrometria di massa ideale per l’analisi di biomolecole. Invece di composti ionizzanti allo stato gassoso, i campioni sono incorporati in una matrice, che viene colpita da un laser. La matrice assorbe la maggior parte dell’energia; parte di questa energia viene quindi trasferita al campione, che si ionizza di conseguenza. Gli ioni campione possono quindi essere identificati utilizzando un analizzatore di tempo di volo (TOF).

Questo video illustra i principi di MALDI-TOF, inclusa la selezione della matrice e il modo in cui TOF viene utilizzato per chiarire i rapporti massa-carica. Questa procedura mostra la preparazione di una piastra MALDI, il caricamento di campioni sulla piastra e il funzionamento dello spettrometro di massa TOF. Nella sezione finale vengono mostrate le applicazioni e le variazioni, tra cui l’analisi di cellule intere, la caratterizzazione di campioni biologici complessi e la ionizzazione a spruzzo di elettroni.

La ionizzazione a desorbimento laser assistita da matrice, o MALDI, è una sorgente ionica di spettrometria di massa ideale per l’analisi di biomolecole. La maggior parte delle fonti ioniche rimuove le informazioni strutturali da biomolecole grandi e fragili. MALDI mantiene l’integrità strutturale, e quindi le informazioni, mentre accelera le molecole nell’analizzatore di massa, che separa i composti in base alle dimensioni e alla carica. Il più comunemente accoppiato con MALDI è il tempo di volo, o TOF, analizzatore di massa. Questo video mostrerà i concetti di ionizzazione MALDI, una procedura generale, e alcuni dei suoi usi in biochimica.

Affinché la spettrometria di massa funzioni, le molecole devono essere ionizzate allo stato gassoso. In MALDI, il campione è incorporato in una matrice, tipicamente un composto organico contenente doppi legami aromatici e coniugati.

Quando un impulso laser colpisce questa miscela, la matrice assorbe la maggior parte dell’energia, si riscalda rapidamente e viene desorbita, o rilasciata, dalla superficie. La matrice energizzata trasferisce parte della sua energia alle biomolecole, desorbendole e quindi ionizzandole.

MALDI è in genere abbinato a un analizzatore di massa time of flight, o TOF. Un campo elettrico applica energia cinetica agli ioni, spostandoli in una regione priva di campo chiamata tubo di deriva. La velocità degli ioni mentre si muovono attraverso il tubo è correlata al loro rapporto massa-carica, quindi le particelle più pesanti viaggiano più lentamente attraverso lo strumento. Un rilevatore all’estremità del tubo misura il tempo di volo di ogni ione. Con questa conoscenza, così come la lunghezza del tubo e l’intensità del campo applicato, è possibile chiarire il rapporto massa-carica di ciascun ione.

Questo grafico dell’intensità del segnale rispetto al rapporto massa-carica, noto come spettro di massa, può essere paragonato a una libreria di spettri raccolti. Se non vengono trovate corrispondenze, le molecole possono essere identificate con ulteriori tecniche, come la spettrometria di massa tandem. Per ulteriori informazioni, vedere il video di questa raccolta sull’argomento.

Ora che le basi di MALDI-TOF sono state discusse, diamo un’occhiata al processo in laboratorio.

Prima di iniziare un esperimento, è importante considerare la scelta della matrice da cui i campioni verranno desorbiti. Deve assorbire l’energia del laser, essere stabile nel vuoto, non reagire con le molecole bersaglio ed essere in grado di desorbire. A seconda del campione, sono preferite matrici diverse. Per una proteina di grandi dimensioni, una combinazione di CHCA e DHB ha mostrato una migliore separazione dei picchi, chiamata risoluzione, rispetto alle singole matrici.

Esistono diversi modi per preparare i campioni. Mostreremo ciò che è noto come il metodo “doppio strato” o “sandwich”. Per iniziare, pulire la piastra MALDI con reagenti ultrapuri, poiché la spettrometria di massa è molto sensibile alla contaminazione. Asciugare la piastra con un flusso di gas inerte.

Successivamente, viene prodotta una soluzione a matrice satura, in genere con un solvente organico . La soluzione viene striata sulla piastra MALDI e asciugata. Viene preparata una seconda soluzione satura di matrice contenente acido trifluoroacetico o TFA. TFA aiuta gli ioni nella fase gassosa.

Successivamente, la soluzione campione viene aggiunta sopra il punto della matrice essiccata. Aggiungere la soluzione di matrice contenente TFA sopra il campione, completando così il “sandwich” della matrice. L’omogeneità dello spot può essere verificata al microscopio a bassa potenza.

Piastra uno standard di calibrazione, che è una miscela con una vasta gamma di masse conosciute e viene utilizzato per correlare il tempo di volo a m / z. Infine, placcare la matrice da sola come controllo negativo.

Per analizzare i punti, posizionare la piastra target nello strumento. Assicurarsi che non siano presenti detriti, consentendo la formazione di un vuoto stretto. Nel software, selezionare lo standard, il controllo negativo e i campioni di interesse. Etichettare le macchie con la corretta identificazione.

La sorgente iomica e le tensioni della lente possono essere manipolate per migliorare le prestazioni dell’analisi. Ciò dipenderà dalle specifiche dello strumento e del campione. Concentrati sullo spot standard e calibra lo strumento con il software.

Quindi, raccogliere spettri da ciascuno dei punti campione. Prova alcune posizioni diverse sul posto per massimizzare la qualità dei dati raccolti. Una volta terminata, la piastra MALDI può essere raccolta e riutilizzata dopo la pulizia.

Ora che abbiamo esaminato una procedura, diamo un’occhiata ad alcuni dei modi in cui viene utilizzato MALDI e una diversa tecnica di ionizzazione.

Oltre alle biomolecole, MALDI può essere utilizzato per analizzare le cellule viventi. I macrofagi sono cellule immunitarie che assumono una delle diverse forme, in base al loro microambiente. Dopo aver esposto le cellule a varie molecole di segnalazione, o citochine, possono essere aggiunte direttamente alla piastra e analizzate. Gli spettri MALDI possono essere utilizzati come “impronte digitali” uniche, a seconda della citochina utilizzata.

Campioni biologici complessi come le secrezioni sebacee dei mammiferi richiedono una fase di purificazione prima dell’analisi MALDI. La cromatografia su strato sottile è una di queste tecniche che si basa sulla polarità dei componenti. I composti vengono raccolti dal patè TLC, purificati e trasferiti in una matrice MALDI. Gli spettri risultanti verificano l’identità e la purezza delle biomolecole separate dalle secrezioni sebacee dei mammiferi.

Un’altra fonte di ioni comune per le biomolecole è la ionizzazione elettrospray, o ESI. In questo metodo, il campione viene iniettato nello strumento, dove viene applicata un’alta tensione, creando un aerosol di goccioline cariche. Quando il solvente nella goccia evapora, la carica viene spostata sulle molecole del campione, fino a quando non sono completamente gassose. ESI non richiede la procedura di spotting e il campione può essere iniettato direttamente nello strumento. D’altra parte, ESI è più sensibile alla presenza di componenti tampone e altri contaminanti, il che significa che MALDI è più robusto.

Hai appena visto il video di JoVE sulla spettrometria di massa MALDI. Questo video descriveva la teoria alla base dello strumento, andava oltre una procedura generale e copriva alcuni degli usi della tecnica. Grazie per l’attenzione!

Procedure

La ionizzazione a desorbimento laser assistito da matrice (MALDI) è una sorgente ionica di spettrometria di massa ideale per l’analisi di biomolecole. Invece di composti ionizzanti allo stato gassoso, i campioni sono incorporati in una matrice, che viene colpita da un laser. La matrice assorbe la maggior parte dell’energia; parte di questa energia viene quindi trasferita al campione, che si ionizza di conseguenza. Gli ioni campione possono quindi essere identificati utilizzando un analizzatore di tempo di volo (TOF). Questo video ill…

Disclosures

No conflicts of interest declared.

Transcript

Matrix-assisted laser desorption ionization, or MALDI, is a mass spectrometry ion source ideal for the analysis of biomolecules. Most ion sources remove structural information from large, fragile biomolecules. MALDI maintains structural integrity, and therefore information, while accelerating the molecules into the mass analyzer, which separates the compounds based on size and charge. The most commonly coupled with MALDI is the time of flight, or TOF, mass analyzer. This video will show the concepts of MALDI ionization, a general procedure, and some of its uses in biochemistry.

For mass spectrometry to function, molecules must be ionized into the gaseous state. In MALDI, the sample is embedded in a matrix, typically an organic compound containing aromatic and conjugated double bonds.

When a laser pulse strikes this mixture the matrix absorbs the majority of the energy, rapidly heats, and is desorbed, or released, from the surface. The energized matrix transfers some of its energy to the biomolecules, desorbing and then ionizing them.

MALDI is typically paired with a time of flight, or TOF, mass analyzer. An electric field applies kinetic energy to the ions, moving them into a field-free region called a drift tube. The velocity of the ions as they move through the tube is related to their mass-to-charge ratio, so heavier particles travel slower through instrument. A detector at the end of the tube measures each ion’s flight time. With this knowledge, as well as the tube length and applied field strength, the mass-to-charge ratio of each ion can be elucidated.

This plot of signal intensity to mass-to-charge-ratio, known as a mass spectrum, can be compared to a library of collected spectra. If no matches are found, it can molecules can be identified by further techniques, such as tandem mass spectrometry. For more information, see this collection’s video on the topic.

Now that the basics of MALDI-TOF have been discussed, let’s look at the process in the laboratory.

Before beginning an experiment, it’s important to consider the choice of matrix from which samples will be desorbed. It must absorb the laser energy, be stable in a vacuum, not react with the target molecules, and be able to desorb. Depending on the sample, different matrices are preferred. For a large protein, a combination of CHCA and DHB has shown better separation of the peaks, called resolution, than the individual matrices.

There are a number of ways to prepare samples. We’ll show what is known as the “double-layer”, or “sandwich,” method. To begin, clean the MALDI plate with ultra-pure reagents, as mass spectrometry is very sensitive to contamination. Dry the plate with a stream of inert gas.

Next, a saturated matrix solution is made, typically with an organic solvent . The solution is streaked onto the MALDI plate and dried. A second saturated solution of matrix containing trifluoroacetic acid, or TFA, is prepared. TFA helps ions into the gaseous phase.

Next, the sample solution is added on top of the dried matrix spot. Add the matrix solution containing TFA on top of the sample, thereby completing the matrix “sandwich”. Homogeneity of the spot can be verified under a low-powered microscope.

Plate a calibration standard, which is a mixture with a wide range of known masses and is used to correlate the time-of-flight to m/z. Finally, plate the matrix alone as a negative control.

To analyze the spots, place the target plate into the instrument. Ensure there’s no debris present, allowing for the formation of a tight vacuum. In the software, select the standard, negative control, and samples of interest. Label the spots with the correct identification.

The ion source and lens voltages can be manipulated to improve performance of the analysis. This will depend on the specifics of the instrument and sample. Focus on the standard spot and calibrate the instrument with the software.

Next, collect spectra from each of the sample spots. Try a few different locations on the spot to maximize the quality of the collected data. Once finished, the MALDI plate can be collected and reused after cleaning.

Now that we’ve reviewed a procedure, let’s look at some of the ways MALDI is utilized, and a different ionization technique.

In addition to biomolecules, MALDI can be used to analyze living cells. Macrophages are immune cells that take on one of several different forms, based on their microenvironment. After exposing the cells to various signaling molecules, or cytokines, they can be added directly to the plate, and analyzed. The MALDI spectra can be used as unique “fingerprints”, depending on the cytokine used.

Complex biological samples like mammalian sebaceous secretions require a step of purification before MALDI analysis. Thin layer chromatography is one such technique that relies on the components’ polarity. The compounds are collected from the TLC pate, purified, and transferred to a MALDI matrix. The resulting spectra verify the identity and purity of the separated biomolecules from the mammalian sebaceous secretions.

Another common ion source for biomolecules is electrospray ionization, or ESI. In this method, the sample is injected into the instrument, where a high voltage is applied, creating an aerosol of charged droplets. As the solvent in the droplet evaporates, the charge is moved to the sample molecules, till they are completely gaseous. ESI doesn’t require the spotting procedure, and the sample can be injected directly into the instrument. On the other hand, ESI is more sensitive to the presence of buffer components and other contaminants, meaning MALDI is more robust.

You’ve just watched JoVE’s video on MALDI mass spectrometry. This video described the theory behind the instrument, went over a general procedure, and covered some of the uses of the technique. Thanks for watching!

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Cite This
JoVE Science Education Database. JoVE Science Education. MALDI-TOF Mass Spectrometry. JoVE, Cambridge, MA, (2023).

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