Özet

Criação de Sub-50 nm nanofluidic Junções em PDMS Microfluidic Chip via processo de automontagem de coloidal Particles

Published: March 13, 2016
doi:

Özet

We propose a simple self-assembly technique of silica colloidal nanoparticles to create a nanofluidic junction between two microchannels in polydimethylsiloxane (PDMS). Using this technique, a nanoporous bead membrane with a pore size down to ~45 nm was built inside a microchannel and applied to electrokinetic preconcentration of DNA samples.

Abstract

Polidimetilsiloxano (PDMS) é o material de construção predominante para tornar os dispositivos de microfluidos, devido à sua facilidade de moldagem e de ligação, bem como a sua transparência. Devido à suavidade do material de PDMS, no entanto, que é difícil de utilizar para a construção de nanocanais PDMS. Os canais tendem a entrar em colapso facilmente durante a ligação do plasma. Neste artigo, apresentamos um método de auto-montagem orientada por evaporação de nanopartículas de sílica coloidal para criar junções nanofluidic com sub-50 nm poros entre dois microcanais. A carga da superfície da junção nanofluidic de poros, bem como o tamanho é sintonizável simplesmente mudando a sílica coloidal e o tamanho do grânulo funcionalização de superfície exterior do dispositivo de microfluidos montados num frasco antes de o processo de auto-montagem. Utilizando o auto-montagem de nanopartículas com um tamanho de esfera de 300 nm, 500 nm e 900 nm, que era possível fabricar uma membrana porosa com um tamanho de poro de ~ 45 nM, ~ 75 nm e ~ 135 nm, respectivamente. sob elétricaal potencial, esta membrana iniciado polarização por concentração de íons (ICP) atuando nanoporous como uma membrana cátion-seletiva para concentrar DNA por ~ 1.700 vezes dentro de 15 min. Este processo de nanofabricação não litográfica abre uma nova oportunidade de construir uma junção nanofluidic sintonizável para o estudo de processos de transporte em nanoescala de íons e moléculas dentro de um chip microfluídico PDMS.

Introduction

Nanofluidics é uma área emergente de pesquisa de u TAS (Micro Systems Analysis total) para estudar os processos biológicos ou fenómenos de transporte de íons e moléculas na escala de comprimento de 10 janeiro – 10 fevereiro nm. Com o advento das ferramentas nanofluidic como nanocanais, processos de transporte de moléculas e íons podem ser monitorizados com uma precisão sem precedentes e manipulado, se necessário, através da exploração de recursos que estão disponíveis apenas nesta escala de comprimento para a separação e detecção. 1,2 Um dos estas características em nanoescala característica é um elevado rácio de superfície de carga a granel (ou número Dukhin) em nanocanais que pode causar um desequilíbrio de carga e iniciar a polarização da concentração de iões (ICP) entre o nanochannel e 3 microcanal.

Uma plataforma dispositivo comum para o estudo de fenómenos nanofluidic consiste de um sistema de dois microcanais ligados por uma matriz de nanocanais como uma junção 4-6. </sup> O material de escolha para a construção de um dispositivo, tal nanofluidic é o silício devido à sua elevada rigidez, que evita que o canal de entrar em colapso durante o processo de colagem. 7 No entanto, o dispositivo de fabricação de silício requer máscaras caros e quantidade substancial de tratamento na instalação de salas limpas. 8- 10 Devido à facilidade de fabricação do dispositivo de moldagem por meio de colagem e de plasma, de polidimetilsiloxano (PDMS) tem sido amplamente aceite como um material de construção para microfluidos e seria um material ideal para nanofluidics bem. No entanto, módulo de sua baixa de Young em torno de 360-870 kPa, torna o canal PDMS facilmente desmontável durante a ligação de plasma. A razão mínima aspecto da nanochannel (largura de profundidade) tem de ser inferior a 10: 1, o que significa que o fabrico de dispositivos PDMS via fotolitografia padrão irá tornar-se extremamente difícil se a profundidade nanochannel tem de ser inferior a 100 nm, o que requer uma largura de canal menos do que o limite atual de fotolitoografia em cerca de 1 uM. Para superar essa limitação, tem havido tentativas de criar nanocanais em PDMS usando métodos não-litografia, como alongamento para iniciar rachaduras com profundidade média de 78 nm 11 ou para formar rugas após o tratamento de plasma. 12 desmoronamento de um canal de PDMS com pressão mecânica permitiu uma altura nanochannel tão baixo quanto 60 nm. 13

Mesmo que esses métodos não litográficas altamente inventivos permitido nanocanais construção abaixo de 100 nm em profundidade, a controlabilidade dimensional da fabricação nanochannel ainda representa um obstáculo para uma ampla aceitação de PDMS como material de construção para dispositivos nanofluidic. Outro problema crítico das nanocanais, quer em silício ou PDMS, a funcionalização da superfície é no caso de haver uma necessidade de alterar a carga de superfície na parede do canal para a manipulação de iões ou moléculas. Após a montagem do dispositivo por meio de ligação, os nanocanais são extremamente difíceis dechegar para a funcionalização da superfície devido ao transporte limita-difusão. Para criar um canal de nanoescala com alta fidelidade dimensional e funcionalização da superfície fácil, o método de auto-montagem de partículas coloidais induzidas por evaporação 14-16 em microcanais pode ser uma das abordagens promissoras. Além da capacidade de controlo de tamanho de poro e propriedades de superfície, existe ainda a possibilidade de ajustar o tamanho do poro in situ pelo uso de partículas coloidais revestidos com polielectrólitos, controlando a temperatura, pH 17, 18,19 e força iónica. 18 Devido a estes aplicações vantagens, o método de auto-montagem de partículas coloidais já encontrados para electrocromatograf, 20 biossensores, a concentração de proteína de 21 e 22 de separação de proteínas e de DNA em microfluidics. 14,23 neste estudo, foram implantados este método de auto-montagem para construir um dispositivo de pré-concentração electrokinetic emPDMS que requer uma junção entre duas nanofluidic microcanais. 24 o mecanismo fundamental para trás a concentração electrocinético é baseado em polarização de concentração de iões (ICP). 25 Uma descrição mais detalhada das etapas de fabricação e de montagem está incluído no seguinte protocolo.

Protocol

1. Preparação da sílica coloidal Bead Suspensões Preparação de 300 nm e 500 nm de sílica suspensões grânulo Vortex a suspensão de pasta talão de sílica (10% w / v em água) durante 30 seg. para se obter uma suspensão homogénea. Pipetar um total de 600 ul da suspensão para um tubo de 1,5 mL e centrifuga-se que em 2600 xg durante 1 min. Substituir o sobrenadante com 400 ul de tampão de fosfato de sódio 1 mM (PB, pH 7,0). Suspender os grânulos de s?…

Representative Results

Um chip concentrador electrocinético PDMS em que contém uma junção nanofluidic auto-montados entre dois microcanais é mostrado na Figura 1A). O canal no meio do dispositivo é preenchido com uma solução de amostra de ADN e flanqueado por dois canais de solução tampão de cada lado por meio de um 50 um canal de largura de entrega talão (Figura 1B). A suspensão de sílica coloidal é levado para o canal de entrega grânulo imediatamente após a …

Discussion

Seguindo o esquema de design do dispositivo comum para estudar nanofluidics, que fabricou uma junção nanofluidic entre dois canais microfluídicos usando a auto-montagem orientada por evaporação de nanopartículas coloidais em vez de lithographically padronização uma matriz de nanocanais. Quando fluir as partículas coloidais para dentro do canal de entrega do grânulo, uma matriz de nanoarmadilhas com uma profundidade de 700 nm e uma largura de 2 m em ambos os lados do canal de distribuição de pérolas a uma la…

Açıklamalar

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi financiado pelo NIH R21 EB008177-01A2 e New York University Abu Dhabi (NYUAD) Research Fund Enhancement 2013. Nós expressamos os nossos agradecimentos à equipe técnica do MIT MTL por seu apoio durante microfabricação e James Weston e Nikolas Giakoumidis de NYUAD para a sua apoio na tomada de SEM imagens e construir um divisor de tensão, respectivamente. A fabricação do dispositivo em PDMS foi realizada na unidade do núcleo de microfabricação NYUAD. Por fim, gostaríamos de agradecer a Rebecca Pittam a partir do Centro NYUAD para Scholarship Digital para a gravação de vídeo e edição.

Materials

Poly(Styrenesulfonic Acid) Sodium Salt Polysciences  08772
Poly(allylamine) Solution Sigma Aldrich 479144-5G
Silica Microsphere – 300 nm Polysciences  24321
Silica Microsphere – 500 nm Polysciences  24323
Silica Microsphere Carboxyl Functional – 500 nm Polysciences  24753
Silica Microsphere Amine Functional – 500 nm Polysciences  24756
Sylgard 184 Silicone Elastomer kit Dow Corning
Trichlorosilane Sigma Aldrich 175552
Ultrasonic Cleaner Branson 3510
Tube Rotator  VWR 10136-084
Vortex Mixer WiseMix VM-10
Microcentrifuge VWR Micro 1207
Plasma Cleaner Harrick Plasma PDC-001-HP
PDMS Mixer Thinky ARE-250
Oven Thermo Scientific PR305220M
Epi-fluorescence Microscope Nikon Eclipse Ti
CCD Camera Andor Clara
Platinum Electrodes Alfa Aesar 43014
Source Meter Keithley 2400
Digital Multimeter  Extech 410
Microscopy Glass Slides Thermo Scientific 2951-001
Tween 20 Merck Millipore 822184
Sodium chloride Fisher Scientific 7646-14-5
Sodium phosphate monobasic Sigma Aldrich 71505
Sodium phosphate dibasic Sigma Aldrich S3264
DNA IDT CAA CCG ATG CCA CAT CAT TAG CTA C
B-Phycoerythrin Life Technologies P-800
Dynamic light scattering system for Zeta Potential Measurement Malvern Zetasizer Nano S
Photoresist  Shipley SPR700-1.0
Projection lithography Nikon NSR2005i9
Reactive Ion Etcher Applied Materials AME P5000
ICP deep reactive ion etcher STS STS-6"
Contact lithography Electronic Visions EV620
Photoresist Coater Developer SSI SSI 150
Non-contact surface profiler Wyko NT 9800

Referanslar

  1. Mawatari, K., Kazoe, Y., Shimizu, H., Pihosh, Y., Kitamori, T. Extended-Nanofluidics: Fundamental Technologies, Unique Liquid Properties, and Application in Chemical and Bio Analysis Methods and Devices. Anal Chem. 86, 4068-4077 (2014).
  2. Tsukahara, T., Mawatari, K., Kitamori, T. Integrated extended-nano chemical systems on a chip. Chem Soc Rev. 39, 1000-1013 (2010).
  3. Mani, A., Zangle, T. A., Santiago, J. G. On the Propagation of Concentration Polarization from Microchannel-Nanochannel Interfaces Part I: Analytical Model and Characteristic Analysis. Langmuir. 25, 3898-3908 (2009).
  4. Aizel, K., et al. Enrichment of nanoparticles and bacteria using electroless and manual actuation modes of a bypass nanofluidic device. Lab Chip. 13, 4476-4485 (2013).
  5. Wang, Y. C., Stevens, A. L., Han, J. Million-fold preconcentration of proteins and peptides by nanofluidic filter. Anal Chem. 77, 4293-4299 (2005).
  6. Karnik, R., et al. Electrostatic control of ions and molecules in nanofluidic transistors. Nano letters. 5, 943-948 (2005).
  7. Mao, P., Han, J. Y. Fabrication and characterization of 20 nm planar nanofluidic channels by glass-glass and glass-silicon bonding. Lab Chip. 5, 837-844 (2005).
  8. Mao, P., Han, J. Massively-parallel ultra-high-aspect-ratio nanochannels as mesoporous membranes. Lab Chip. 9, 586-591 (2009).
  9. Balducci, A., Mao, P., Han, J. Y., Doyle, P. S. Double-stranded DNA diffusion in slitlike nanochannels. Macromolecules. 39, 6273-6281 (2006).
  10. Yamada, M., Mao, P., Fu, J. P., Han, J. Y. Rapid Quantification of Disease-Marker Proteins Using Continuous-Flow Immunoseparation in a Nanosieve Fluidic Device. Anal Chem. 81, 7067-7074 (2009).
  11. Huh, D., et al. Tuneable elastomeric nanochannels for nanofluidic manipulation. Nat Mater. 6, 424-428 (2007).
  12. Chung, S., Lee, J. H., Moon, M. W., Han, J., Kamm, R. D. Non-lithographic wrinkle nanochannels for protein preconcentration. Adv Mater. 20, 3011-3016 (2008).
  13. Park, S. M., Huh, Y. S., Craighead, H. G., Erickson, D. A method for nanofluidic device prototyping using elastomeric collapse. Proc Natl Acad Sci. 106, 15549-15554 (2009).
  14. Zeng, Y., Harrison, D. J. Self-assembled colloidal arrays as three-dimensional nanofluidic sieves for separation of biomolecules on microchips. Anal Chem. 79, 2289-2295 (2007).
  15. Malekpourkoupaei, A., Kostiuk, L. W., Harrison, D. J. Fabrication of Binary Opal Lattices in Microfluidic Devices. Chem Mat. 25, 3808-3815 (2013).
  16. Merlin, A., Salmon, J. -. B., Leng, J. Microfluidic-assisted growth of colloidal crystals. Soft Matter. 8, 3526-3537 (2012).
  17. Schepelina, O., Zharov, I. PNIPAAM-modified nanoporous colloidal films with positive and negative temperature gating. Langmuir. 23, 12704-12709 (2007).
  18. Schepelina, O., Zharov, I. Poly(2-(dimethylamino)ethyl methacrylate)-Modified Nanoporous Colloidal Films with pH and Ion Response. Langmuir. 24, 14188-14194 (2008).
  19. Smith, J. J., Zharov, I. Ion transport in sulfonated nanoporous colloidal films. Langmuir. 24, 2650-2654 (2008).
  20. Gaspar, A., Hernandez, L., Stevens, S., Gomez, F. A. Electrochromatography in microchips packed with conventional reversed-phase silica particles. Electrophoresis. 29, 1638-1642 (2008).
  21. Lee, S. Y., et al. High-Fidelity Optofluidic On-Chip Sensors Using Well-Defined Gold Nanowell Crystals. Anal Chem. 83, 9174-9180 (2011).
  22. Hu, Y. L., et al. Interconnected ordered nanoporous networks of colloidal crystals integrated on a microfluidic chip for highly efficient protein concentration. Electrophoresis. 32, 3424-3430 (2011).
  23. Zhang, D. -. W., et al. Microfabrication-free fused silica nanofluidic interface for on chip electrokinetic stacking of DNA. Microfluid Nanofluid. 14, 69-76 (2013).
  24. Syed, A., Mangano, L., Mao, P., Han, J., Song, Y. A. Creating sub-50 nm nanofluidic junctions in a PDMS microchip via self-assembly process of colloidal silica beads for electrokinetic concentration of biomolecules. Lab Chip. 14, 4455-4460 (2014).
  25. Kim, S. J., Song, Y. A., Han, J. Nanofluidic concentration devices for biomolecules utilizing ion concentration polarization: theory, fabrication, and applications. Chem Soc Rev. 39, 912-922 (2010).
  26. Fu, J. P., Mao, P., Han, J. Y. Continuous-flow bioseparation using microfabricated anisotropic nanofluidic sieving structures. Nat Protoc. 4, 1681-1698 (2009).
  27. Plecis, A., Nanteuil, C., Haghiri-Gosnet, A. M., Chen, Y. Electropreconcentration with Charge-Selective Nanochannels. Anal Chem. 80, 9542-9550 (2008).
  28. Ko, S. H., et al. Nanofluidic preconcentration device in a straight microchannel using ion concentration polarization. Lab Chip. 12, 4472-4482 (2012).

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Bu Makaleden Alıntı Yapın
Wei, X., Syed, A., Mao, P., Han, J., Song, Y. Creating Sub-50 Nm Nanofluidic Junctions in PDMS Microfluidic Chip via Self-Assembly Process of Colloidal Particles. J. Vis. Exp. (109), e54145, doi:10.3791/54145 (2016).

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