Тубулоидные культуры почек человека представляют собой ценную модель in vitro для изучения физиологии и заболеваний почек. Тубулоиды могут быть получены из почечной ткани (здоровой и больной), а также мочи, причем последняя представляет собой легко доступный и менее инвазивный источник исследовательского материала.
Эпителиальные органоиды почек человека, полученные из взрослых стволовых клеток (ASC), или тубулоиды, могут быть получены из здорового и больного эпителия почек с высокой эффективностью. Нормальные почечные тубулоиды повторяют многие аспекты своей ткани происхождения. Они представляют собой отдельные сегменты нефронов – в первую очередь проксимального канальца, петли Генле, дистальных канальцев и собирающего протока – и могут быть использованы для изучения нормальной физиологии почек. Кроме того, тубулоидная технология облегчает моделирование заболеваний, например,для инфекционных заболеваний, а также для рака. Получение эпителиальных клеток почки для генерации тубулоидов, однако, зависит от остатков хирургического материала (таких как частичная) нефрэктомия) или биопсии иглы. Способность выращивать тубулоиды из мочи обеспечит альтернативный, менее инвазивный источник здоровых эпителиальных клеток почек. Ранее было показано, что тубулоидные культуры могут быть успешно получены всего из нескольких миллилитров свежесбранной мочи. В этой статье описываются протоколы для создания и распространения ансульских культур почек человека из образцов тканей и мочи.
Почки выполняют функцию системного контроля баланса жидкостей организма. Нарушение их физиологической функции может быть вызвано различными факторами, включая диабет, гипертонию и лекарственную токсичность1. Для лучшего понимания нормальной физиологии почек, а также развития почечных заболеваний, использование репрезентативных доклинических моделей имеет решающее значение. В последние годы было сгенерировано несколько моделей почек in vitro на основе так называемой органоидной технологии2. Органоиды представляют собой трехмерные, многоклеточные структуры, напоминающие морфологию и физиологию ткани (нормальной или больной), из которой они происходят. Они могут быть получены из плюрипотентных (PSC) или взрослых стволовых клеток (ASC), каждый из которых имеет свои собственные характеристики и применения.
Органоиды почек, полученные из PSC, имитируют нефрогенез3,4,5. Они также могут быть установлены из производных от пациента совершенных клеток путем принудительной дедифференциации (индуцированная плюрипотентность или iPSC). ИПСК впоследствии могут быть дифференцированы в различные типы клеток нефрона, функциональной единицы почки, путем своевременного воздействия специфических коктейлей фактора роста. При создании довольно полного мини-органа в блюде их создание остается трудоемким, а благодаря протоколу перепрограммирования иПСК могут быть подвержены нежелательной генетической нестабильности6. Кроме того, органоиды iPSC не способны полностью созревать во взрослые клетки почек, выявляя профиль транскриптома, который напоминает почку плода на ранней стадии развития7.
Было показано, что тубулоиды почек человека, полученные из ASC, повторяют обновление эпителия почек взрослых. Они в первую очередь представляют собой проксимальный каналец, петлю Генле, дистальные канальцы и собирающий проток, что подтверждается экспрессией различных белков-транспортеров8,9,10. Протокол тубулоидной культуры позволяет быстро расширять ткани почек, полученных пациентом, сохраняя при этом стабильный геном. Исследовательские приложения включают изучение нормальной физиологии почек, нефротоксичности, тестирование лекарств, а также моделирование заболеваний8,10,11,12. Потенциальным ограничением создания органоидных культур, полученных от пациента, включая тубулоиды, является наличие свежих тканей. Тем не менее, несколько отчетов показали, что моча может служить источником эпителиальных клеток почек, тем самым обеспечивая гораздо более простую, менее инвазивную стратегию получения материала пациента для тубулоидных культур8,13,14. Действительно, недавно было показано, что тубулоиды можно выращивать из мочи8. В данной статье описывается создание и поддержание тубулоидных культур из почечной ткани и мочи.
Органоиды считаются аватарами ткани, из которой они получены. Они позволяют быстро расширять материал пациента при сохранении генотипических и фенотипических характеристик ткани происхождения15. Органоидная технология недавно открыла двери для разработки более репрезентативных доклинических моделей, которые могут быть использованы в качестве важных инструментов для перевода результатов со скамейки на прикроватную. Почечные тубулоиды являются перспективными моделями in vitro для тестирования лекарственно-индуцированной нефротоксичности, распространенного побочного эффекта многих химиотерапевтических препаратов2,8,12. Таким образом, было продемонстрировано, что полученные от пациента опухолевые органоидные культуры прогностические для ответа пациента на лечение16,17,18. Таким образом, тестирование лекарств с высокой пропускной способностью на тубулоидах потенциально позволяет лучше финировать терапевтические окна и снижает риск лекарственно-индуцированной нефротоксичности у пациентов.
Было описано, что обычно используемые антибиотики оказывают токсическое действие на почки19. Хотя наличие антибиотиков широкого спектра действия необходимо для успешного создания культур путем предотвращения загрязнения, важно учитывать их потенциальную нефротоксичность. Хотя никаких негативных эффектов антибиотиков на создание тубулоидных культур не наблюдалось, необходимы дальнейшие исследования для тщательной оценки их эффектов. Тубулоиды могут быть использованы для изучения и моделирования заболеваний8. Цилиопатии (патологическая дисфункция ресничек), а также другие генетические синдромы, влияющие на почки, могут быть изучены либо путем генерации тубулоидных линий непосредственно от пораженных субъектов, либо с использованием здоровых культур, в которые мутации драйвера заболевания могут быть введены с помощью редактирования генома CRISPR / Cas920.
Хотя тубулоиды являются многоклеточными культурами почек, в них отсутствует несколько типов почечных клеток, включая подоциты и эндотелиальные клетки8. Более того, в отличие от некоторых других органоидных моделей, полученных из ASC, тубулоиды имеют ограниченный репликативный потенциал, поскольку их можно культивировать примерно в течение 15 проходов. Однако эта ограниченная продолжительность жизни может быть значительно увеличена путем добавления Wnt к питательной среде21. Требуется дальнейшая оптимизация протокола тубулоидных культур, чтобы сделать их еще более репрезентативными для почек, включая более дифференцированные типы клеток. Хотя эффективность тубулоидного учреждения из образцов тканей очень высока (>95%), она может, в редких случаях, выйти из строя. Могут быть различные причины, в том числе: 1) низкое качество исходного материала(например,некротическая ткань в результате медикаментозного лечения), 2) переваривание образца ткани или 3) загрязнение первичного образца.
Чтобы убедиться, что качество полученных образцов ткани достаточно для выполнения протокола, важно поддерживать тесный контакт с патологоанатомом, выполняющим оценку ткани после операции. При наличии достаточного количества материала его жизнеспособность должна быть подтверждена гистологическим исследованием(например,окрашиванием гематоксилина и эозина). Кроме того, для предотвращения лизиса клеток во время ферментативного пищеварения важно, чтобы процедура инкубации не превышала 1 ч. Наконец, для предотвращения загрязнения в промывные и культуральные среды следует добавлять антибиотики и противогрибкальные средства.
Моча может содержать отшелушиваемые эпителиальные клетки, которые не получены из почки22,которые могут загрязнять тубулоидные культуры. К ним относятся, например, клетки уротелия, которые, в отличие от почечных канальцевых клеток, положительны для опухолевого белка P63 и отрицательны для PAX88. Поэтому рекомендуется проверить культуры на позитивность PAX8 для подтверждения чистоты установленных почечных тубулоидных линий, прежде чем приступать к последующим экспериментам(рисунок 4B).
Моча представляет собой враждебную среду для клеток из-за высокого осмотического давления и низкого рН. Поэтому для успеха протокола крайне важно, чтобы образцы обрабатывались как можно скорее после сбора мочи. Таким образом, собранную мочу следует как можно скорее разбавить и тщательно промыть буферным раствором, чтобы обеспечить наличие жизнеспособных клеток во время посева. Успешность тубулоидного учреждения значительно снизится, если моча будет храниться в течение нескольких часов перед обработкой. Наконец, хотя моча стерильная, она имеет высокий риск загрязнения, связанного с процессом сбора. Поэтому важно дополнять промывочную и питательную среду антибиотиками и противогрибковые средства. Принимая во внимание все вышесказанное, можно достичь успеха примерно в 50%.
The authors have nothing to disclose.
Мы благодарим всех пациентов и их семьи за участие в исследовании. Мы благодарим клиническую команду, которая способствовала нашим исследованиям. Мы благодарны за поддержку Европейского исследовательского совета (ERC), 850571 (J.D.), Голландского онкологического общества (KWF)/Alpe d’HuZes Bas Mulder Award (No 10218, J.D.), Института Oncode и Фонда Children Cancer Free (KiKa No 292, C.C.)
A83-01 | Tocris | 2939/10 | Stock of 5 mM, final concentration of 5 µM, activin receptor-like kinase 5 inhibitor |
Advanced DMEM/F12 | ThermoFisher Scientific | 12634010 | |
antiPAX8 antibody | LSBio | LS-B13466 | |
B27 supplement | ThermoFisher Scientific | 17504044 | Stock of 50x, final concentration of 1x |
BME | Trevigen | 3533-010-02 | |
Collagenase | Sigma Aldrich | C9407 | Stock of 10 mg/mL, final concentration of 1 mg/mL |
EGF | Peprotech | AF-100-15 | Stock of 0.5 mg/mL, final concentration of 50 ng/mL |
FGF10 | Peprotech | 100-26 | Stock of 0.1 mg/mL, final concentration of 100 ng/mL |
GlutaMAX – L-alanine/L-glutamine | Gibco | 35050061 | Stock of 100x, final concentration of 1x |
Hepes | Gibco | 15630106 | Stock of 1 M, final concentration of 10 mM |
Multiwell tissue culture plates 12 wells | CELLSTAR | 665180 | |
Multiwell tissue culture plates 24 wells | CELLSTAR | 662160 | |
Multiwell tissue culture plates 6 wells | CELLSTAR | 657160 | |
N-acetylcysteine | Sigma Aldrich | A9165 | Stock of 500 mM, final concentration of 1.25 mM |
Penicillin/Streptomycin | Gibco | 15140163 | Stock of 10.000 U/mL, final concentration of 100 U/mL |
Primocin – broad-range antibiotics | Invivogen | ant-pm-1 | Stock of 50 mg/mL, final concentration of 0.1 mg/mL |
Red blood cells lysis buffer | Roche | 11814389001 | |
RhoKinase inhibitor Y-27632 | Abmole Bioscience | M1817 | Stock of 100 mM, final concentration of 10 µM |
R-spondin conditioned medium | Produced in house with the use of stable cell lines generated by Calvin Kuo lab. Final concentration is 10% | ||
TrypLe Express/ trypsin replacement agent | ThermoFisher Scientific | 12605010 |