Summary

Vuxen mus siffra amputation och regenerering: en enkel modell för att undersöka bildandet av BLASTEMA hos däggdjur och Intramembranös ossifiering

Published: July 12, 2019
doi:

Summary

Här presenterar vi ett protokoll för Adult Mouse Terminal phalanx amputation för att undersöka däggdjur embryon formation och intramembranös ossification, analyseras med fluorescerande immunohistokemi och sekventiell in-vivo mikrodatortomografi.

Abstract

Här presenterar vi ett protokoll för vuxna mus distala Terminal phalanx (P3) amputation, en processuellt enkel och reproducerbar däggdjurs modell av epimorfiska förnyelse, vilket innebär embryon bildning och intramembranös benbildning analyseras av fluorescensimmunohistokemi och sekventiell in vivo-mikrodatortomografi (μCT). Föryngring av däggdjur är begränsad till amputationer som transekera distala regionen av terminalen falangen (P3); siffror amputerade vid mer proximala nivåer misslyckas med att regenerera och genomgå fibrotisk läkning och ärrbildning. Regenereringsrespons förmedlas genom bildandet av en proliferativ BLASTEMA, följt av ben förnyelse via intramembranös ossifiering för att återställa amputerad skelett längd. P3 amputation är en preklinisk modell för att undersöka epimorfiska regenerering hos däggdjur, och är ett kraftfullt verktyg för utformningen av terapeutiska strategier för att ersätta fibrotisk läkning med en lyckad regenerativ respons. Vårt protokoll använder fluorescensimmunohistokemi till 1) identifiera tidiga och sena embryon cellpopulationer, 2) studie revaskularisering i samband med förnyelse, och 3) undersöka intramembranös ossifikation utan behov av komplexa ben stabiliseringsanordningar. Vi visar också användningen av sekventiell in vivo μCT för att skapa högupplösta bilder för att undersöka morfologiska förändringar efter amputation, samt kvantifiera volym och längdförändringar i samma siffra under loppet av förnyelse. Vi tror att detta protokoll erbjuder enorma verktyg för att undersöka både epimorfiska och vävnad regenerativ svar hos däggdjur.

Introduction

Däggdjur, inklusive människor och möss, har kapacitet att regenerera tips av sina siffror efter distala amputation av terminalen falangen (P3)1,2,3. I möss är regenereringssvaret amputation-nivå-beroende; alltmer proximala amputationer visar ett progressivt försvagat regenerativt svar tills fullständig regenerativ svikt vid amputationer transekera och proximalt till P3-Nagel matrisen4,5,6 , 7 , 8. P3 Regeneration medieras av bildandet av en BLASTEMA, definierad som en population av prolifererande celler som genomgår morfogenes för att återskapa de amputerade strukturerna9. Bildandet av en embryon att regenerera strukturer förlorade genom amputation, en process som kallas epimorfiska förnyelse, skiljer multi-vävnad-nivå P3 förnyelse svar från traditionell vävnad reparation efter skada6, 10. P3 regeneration är en reproducerbar och processuellt enkel modell för att undersöka komplexa regenerativa processer inklusive sårläkning11,12, ben histolys11,12, revaskularisering13, perifer nervregeneration14, och blastemal omvandling till ben via intramembranös ossifikation15.

Tidigare studier med immunohistokemi har visat att embryon är heterogena, avaskulära, hypoxiska, och mycket proliferativ11,13,15,16. Efter den distala P3-amputation associeras tidigt embryon initialt med P3 periostet och endosteum och kännetecknas av robust proliferation och begynnande osteogenes i anslutning till ben ytan15. Efter bennedbrytning och sår stängning bildas den heterogena embryon genom sammanslagning av periostal och endosteal-associerade celler, följt av differentiering av blastemal komponenter inklusive ben via intramembranös ossifikation 15.

Ben reparation som svar på skada uppstår vanligen genom endochondral benbildning, dvs via en initial brosk förhårdnader som bildar en mall för efterföljande benbildning17,18. Långa ben intramembranös ossifikation, dvs benbildning utan en brosk intermediär, är vanligen induceras med hjälp av komplexa distraktion enheter eller kirurgisk fixering19,20. Siffran regenereringsrespons är en preklinisk modell som erbjuder fördelar jämfört med konventionella intramembranösa benbildning modeller: 1) det kräver inte yttre eller inre fixering efter skada för att stimulera intramembranös benbildning, 2) det är utförs med 4 siffror från varje djur, vilket maximerar prover samtidigt minimera djuranvändning, och 3) sekventiell in vivo mikrodatortomografi (μCT) analys kan utföras med lätthet och hastighet.

I den nuvarande studien visar vi det standardiserade P3-amputation-planet för att uppnå ett reproducerbart och robust regenereringssvar. Dessutom, vi visar en optimerad fluorescens immunohistokemi protokoll med paraffin sektioner för att visualisera embryon bildning, revaskularisering i samband med förnyelse, och blastemal omvandling till ben via Intramembranous Förbening. Vi visar också användningen av sekventiell in vivo μCT för att identifiera förändringar i ben morfologi, volym och längd i samma siffra under regenereringen. Målet med detta protokoll är att undersöka bildandet av embryon från däggdjur efter amputation och att demonstrera 2 tekniker, fluorescensimmunohistokemi och sekventiell in vivo μct, för studiet av intramembranös ben förnyelse.

Protocol

Alla djuranvändning och tekniker var i överensstämmelse med standardrutiner för den institutionella djuromsorg och användning kommittén för Texas A & M University. 1. Adult mus bakbenen distala P3 amputation Anesthetize en 8 till 12 vecka gammal CD-1 mus (tabell över material) med isofluran gas i syre; initialt söva på 3% i en kammare, följt av 2% isofluran levereras av en noskon under varaktigheten av operationen. Applicera oftalmisk salva på ögonen fö…

Representative Results

Vuxna mus regenerering P3 siffror på 6/7 DPA (figur 2A-D), 9 DPA (figur 2e-H) och 10 DPA (figur 2i-L) var immunostained med antikroppar mot Runx2, OSX, och PCna att visualisera intramembranösa ben och immunfärgade med antikroppar mot CXCR4 och VWF för att visualisera embryon-bildningen. Representativa μCT-tolkningar av siffror som skannats före amputation och vid olika tidpunk…

Discussion

Detta protokoll beskriver ett standardiserat förfarande för vuxna mus distala P3 amputation, fluorescerande immunohistokemisk färgning för att visualisera och undersöka embryon bildning och intramembranös ossification, och sekventiell in vivo μct skanning till identifiera ben morfologiska, volym och längdförändringar efter amputation. P3 amputation är en unik, processuellt enkel och reproducerbar modell för att analysera en proregenerativ sårmiljö som utlöser embryon-bildning. Dessutom erbjuder den P3-siff…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar medlemmar i Muneoka Lab och Texas Institute for genomisk medicin (TIGM). Detta arbete stöddes av Texas A & M University.

Materials

Protein Block Serum Free DAKO X0909 Ready to use
Mouse anti-PCNA antibody Abcam ab29 1:2000 dilution
Rat anti-CXCR4 antibody R&D Systems MAB21651 1:500 dilution
Rabbit anti-human vWF XIII antibody DAKO A0082 1:800 dilution
Rabbit anti-osterix, SP7 antibody Abcam ab22552 1:400 dilution
Rabbit anti-Runx2 antibody Sigma-Aldrich Co. HPA022040 1:250 dilution
Alexa Fluor 647-conjugated goat anti-mouse IgG (H+L) Invitrogen A21235 1:500 dilution
Alexa Fluor 488-conjugated goat anti-rabbit IgG (H+L) Invitrogen A11008 1:500 dilution
Alexa Fluor 568-conjugated goat anti-rat IgG (H+L) Invitrogen A11077 1:500 dilution
Prolong Gold antifade reagent Invitrogen P36930 Ready to use
Surgipath Decalicifier 1 Leica Biosystems 3800400 Ready to use
Z-Fix, Aqueous buffered zinc formalin fixative Anatech LTD 174 Ready to use
CD-1 Female Mouse Envigo ICR(CD-1) 8-12-weeks-old
vivaCT 40 SCANCO Medical

References

  1. Douglas, B. S. Conservative management of guillotine amputation of the finger in children. Australian Paediatric Journal. 8, 86-89 (1972).
  2. Illingworth, C. M. Trapped fingers and amputated finger tips in children. Journal of Pediatric Surgery. 9, 853-858 (1974).
  3. Borgens, R. B. Mice regrow the tips of their foretoes. Science. 217, 747-750 (1982).
  4. Neufeld, D. A., Zhao, W. Phalangeal regrowth in rodents: postamputational bone regrowth depends upon the level of amputation. Progress in Clinical and Biological Research. 383a, 243-252 (1993).
  5. Han, M., Yang, X., Lee, J., Allan, C. H., Muneoka, K. Development and regeneration of the neonatal digit tip in mice. Developmental Biology. 315, 125-135 (2008).
  6. Takeo, M., et al. Wnt activation in nail epithelium couples nail growth to digit regeneration. Nature. 499, 228-232 (2013).
  7. Chamberlain, C. S., et al. Level-specific amputations and resulting regenerative outcomes in the mouse distal phalanx. Wound repair and Regeneration: Official Publication of the Wound Healing Society [and] the European Tissue Repair Society. 25, 443-453 (2017).
  8. Dawson, L. A., et al. Analogous cellular contribution and healing mechanisms following digit amputation and phalangeal fracture in mice. Regeneration. 3, 39-51 (2016).
  9. Seifert, A. W., Muneoka, K. The blastema and epimorphic regeneration in mammals. Developmental Biology. 433, 190-199 (2018).
  10. Carlson, B. M. . Principles of Regenerative Biology. , (2007).
  11. Fernando, W. A., et al. Wound healing and blastema formation in regenerating digit tips of adult mice. Developmental Biology. 350, 301-310 (2011).
  12. Simkin, J., et al. Epidermal closure regulates histolysis during mammalian (Mus) digit regeneration. Regeneration. 2, 106-119 (2015).
  13. Yu, L., et al. Angiogenesis is inhibitory for mammalian digit regeneration. Regeneration. 1, 33-46 (2014).
  14. Dolan, C. P., et al. Axonal regrowth is impaired during digit tip regeneration in mice. Developmental Biology. 445, 237-244 (2018).
  15. Dawson, L. A., et al. Blastema formation and periosteal ossification in the regenerating adult mouse digit. Wound Repair and Regeneration: Official Publication of the Wound Healing Society [and] the European Tissue Repair Society. 26, 263-273 (2018).
  16. Sammarco, M. C., et al. Endogenous bone regeneration is dependent upon a dynamic oxygen event. Journal of Bone and Mineral Research: The Official Journal of the American Society for Bone and Mineral Research. 29, 2336-2345 (2014).
  17. Einhorn, T. A. The science of fracture healing. Journal of Orthopaedic Trauma. 19, S4-S6 (2005).
  18. Shapiro, F. Bone development and its relation to fracture repair. The role of mesenchymal osteoblasts and surface osteoblasts. European Cells & Materials. 15, 53-76 (2008).
  19. Ilizarov, G. A. The tension-stress effect on the genesis and growth of tissues. Part I. The influence of stability of fixation and soft-tissue preservation. Clinical Orthopaedics And Related Research. (238), 249-281 (1989).
  20. Thompson, Z., Miclau, T., Hu, D., Helms, J. A. A model for intramembranous ossification during fracture healing. Journal of Orthopaedic Research: Official Publication of the Orthopaedic Research Society. 20, 1091-1098 (2002).
  21. Dolan, C. P., Dawson, L. A., Muneoka, K. Digit Tip Regeneration: Merging Regeneration Biology with Regenerative Medicine. Stem Cells Translational Medicine. 7, 262-270 (2018).
  22. Lee, J., et al. SDF-1alpha/CXCR4 signaling mediates digit tip regeneration promoted by BMP-2. Developmental Biology. 382, 98-109 (2013).
  23. Doube, M., et al. BoneJ: Free and extensible bone image analysis in ImageJ. Bone. 47, 1076-1079 (2010).

Play Video

Cite This Article
Dawson, L. A., Brunauer, R., Zimmel, K. N., Qureshi, O., Falck, A. R., Kim, P., Dolan, C. P., Yu, L., Lin, Y., Daniel, B., Yan, M., Muneoka, K. Adult Mouse Digit Amputation and Regeneration: A Simple Model to Investigate Mammalian Blastema Formation and Intramembranous Ossification. J. Vis. Exp. (149), e59749, doi:10.3791/59749 (2019).

View Video