Summary

Espansione del due-dimensione elettrofilate nanofibre in tre dimensioni ponteggi

Published: January 07, 2019
doi:

Summary

In questo articolo viene illustrata la tecnica di espansione una stuoia di nanofibra tradizionale, due dimensioni (2D) elettrofilate in un’impalcatura di tre dimensioni (3D) attraverso la depressurizzazione del sottocritico CO2 fluido. Queste impalcature aumentate 3D, strettamente mimica cellulare nanotopographic spunti e preservare le funzioni delle molecole biologiche incapsulati all’interno delle nanofibre.

Abstract

Elettrofilatura è stata la tecnologia preferita nella produzione di uno scaffold sintetico, funzionale dovuto la biomimetica alla matrice extracellulare e il controllo di facilità di composizione, struttura e diametro delle fibre. Tuttavia, nonostante questi vantaggi, nanofibre elettrofilate tradizionali ponteggi vengono con limitazioni tra cui disorganizzato nanofibra orientamento, bassa porosità, la dimensione dei pori piccoli e tappetini principalmente bidimensionale. Come tale, c’è un grande bisogno per lo sviluppo di un nuovo processo per la realizzazione di ponteggi di nanofibre elettrofilate capaci di superare le limitazioni di cui sopra. Nel presente documento, è descritto un metodo semplice e romanzo. Una stuoia di nanofibra 2D tradizionale si trasforma in un’impalcatura 3D con spessore desiderato, distanza del gioco, porosità e le indicazioni di nanotopographic per consentire per la semina delle cellule e proliferazione attraverso la depressurizzazione del sottocritico CO2 fluido. Oltre a fornire un scaffold per la rigenerazione del tessuto si verifica, questo metodo fornisce anche la possibilità di incapsulare le molecole bioattive come i peptidi antimicrobici per la consegna di droga locale. I ponteggi di nanofibra di CO2 espanso tengono grandi potenzialità nella rigenerazione dei tessuti, la guarigione della ferita, modellazione 3D del tessuto e somministrazione di farmaci topici.

Introduction

Il concetto di sviluppare un’impalcatura sintetica che possa essere impiantata nei pazienti per aiutare nella rigenerazione e riparazione tissutale è uno che ha permeato il campo della medicina rigenerativa per decenni. Lo scaffold sintetico ideale serve per indurre la migrazione delle cellule dal tessuto sano circostante, fornisce un’architettura per vascolarizzazione di supporti di semina, adesione, segnalazione, proliferazione e differenziazione, cella, consente un’adeguata ossigenazione e consegna di nutrizione e promuove l’attività immunitaria ospite per garantire il successo dopo l’impianto1. Inoltre, può essere utilizzato come vettore per l’incorporamento di molecole antimicrobiche per assistere nella cicatrizzazione1,3,6,7,8,9. La capacità di controllare il rilascio temporale di queste molecole biologiche da scaffold sintetico è un altro attributo desiderabile che è considerato quando ingegneria ponteggi1.

Elettrofilatura è stata una tecnica ben utilizzata per la produzione di nanofibra ponteggi1,2,3,4,5,6. Precedenti tentativi di creare un’impalcatura di nanofibra come quello discusso qui sono state fatte a vari gradi di successo. Tuttavia, ponteggi tradizionali nanofibra hanno limitato le capacità di realizzare questi obiettivi. Nanofibra tradizionali ponteggi sono stati principalmente bidimensionale stuoie1,3. Queste impalcature nonexpanded sono densamente imballate con pori di piccole dimensioni; Questo limita l’infiltrazione delle cellule, migrazione e differenziazione come non promuove un ambiente abbastanza simile a quelli trovati in vivo1,7,8,9. Per questo motivo, più nuove tecniche di preparazione di scaffold nanofibre elettrofilate 3D sono state stabilite a modificare i difetti inerenti che vengono con nanofibre 2D. Queste tecniche si tradurrà in 3D impalcature; Tuttavia, hanno limitata applicabilità a causa dei metodi di produzione che richiedono soluzioni acquose e liofilizzazione procedure. Questa elaborazione comporta la distribuzione casuale delle nanofibre senza organizzazione ristretta, spessore adeguato, e/o porosità desiderata per fornire i segnali di nanotopographic adeguate che sono necessari per la proliferazione e migrazione cellulare. Questi fattori sono nei ponteggi di nanofibra elettrofilate 3D precedenti che non dispongono di adeguati mimetismo di vivere tessuti1,7,8,9.

Più recenti tentativi di sviluppare un’impalcatura espansa, 3D con migliore biomimetica della matrice extracellulare (ECM) sono stati effettuati utilizzando un trattamento della soluzione acquosa di sodio boroidruro (NaBH4) e stampi predefiniti per aiutare a controllare meglio la forma della risultante dell’impalcatura7,8. Tuttavia, questo metodo non è ideale in quanto richiede l’utilizzo di soluzioni acquose, reazioni chimiche e liofilizzazione che potrebbe interferire con polimeri e qualsiasi biomolecole incapsulato che sono solubili in acqua. Gli additivi utilizzati possono anche causare effetti collaterali durante la rigenerazione del tessuto8,9. Il metodo di espansione di CO2 descritto in questo articolo notevolmente riduce il tempo di elaborazione, Elimina la necessità di soluzioni acquose e conserva l’importo e la funzionalità delle molecole biologicamente attive in misura maggiore rispetto alla precedentemente metodi consolidati9.

In studi precedenti, antibiotici, argento, 1 α, 25 dihydroxyvitamin D3e peptide antimicrobico LL-37 sono stati caricati in nanofibra impalcature individualmente e in associazione a studiare il potenziale di queste impalcature di distaccanti per ulteriore aiuto nella cicatrizzazione9,10,12,13. Allo scopo di dimostrare questo metodo di espansione impalcatura nanofibra, cumarinici 6, un colorante fluorescente, verranno caricati nel patibolo per dimostrare il potenziale di incorporare il patibolo con vari composti desiderati. Questo metodo di montaggio di impalcatura nanofibra espansa in combinazione con molecole bioattive incapsulati ha un grande potenziale nella rigenerazione dei tessuti, la guarigione della ferita, la creazione di modelli 3D del tessuto e la consegna d’attualità della droga.

Protocol

Tutti in vivo procedure descritte di seguito sono state approvate dal Comitato IACUC presso l’University of Nebraska Medical Center. 1. preparare le soluzioni per elettrofilatura Standard In un tubo di vetro da 20 mL, sciogliere 2 g di poly(ε-caprolactone) (PCL, Mw = 80 kDa) in una miscela solvente di diclorometano (DCM) e N, N-dimetilformammide (DMF) con una razione di 4:1 (v/v) ad una concentrazione del 10% (p/v).Attenzione: Maniglia DCM e DMF in un cappuccio ventilat…

Representative Results

L’efficacia di espansione nanofibre elettrofilate 2D tradizionale nei ponteggi 3D tramite depressurizzazione del sottocritico CO2 fluido è stata dimostrata in diverse capacità: lo spessore delle impalcature è aumentato da 1 mm quando non trattata fino a 2,5 mm e 19.2 mm con uno e due trattamenti di CO2 , rispettivamente (Figura 3A-C). La porosità-a caratteristica dell’architettura critico per la semina delle cellule-…

Discussion

Trasformando nanofibre elettrofilate 2D tradizionale in espanso scaffold 3D è stata studiata tramite CO2 depressurizzazione. 2D tradizionale nanofibre sono correttamente espansa tramite sottocritico CO2 fluido. I passaggi critici sono per fabbricare nanofibre 2D sotto una condizione ottimizzata e tagliare i tappetini senza deformare i bordi (ad es., usando forbici chirurgiche affilate). Questo CO2-espanso nanofibra impalcature hanno molti benefici sopra stuoie …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato supportato da concede dal National Institute of General Medical Science (NIGMS) al NIH (2P 20 GM103480-06 e 1R01GM123081 a J.X.), i fondi Otis Glebe Medical Research Foundation, NE LB606 e avvio dal University of Nebraska Medical Centro.

Materials

Polycaprolactone Sigma-Aldrich 440744
N,N-Dimethlyformamide Fisher Chemical D-199-1
Dichloromethane Fisher Chemical AC61093-1000
Coumarin 6 Sigma-Aldrich 546283
Rotating Steel Drum customized This serves as a collector during electrospinning.
Syringe Pump Fisher Scientific 14-831-200 Coaxial spinning requires two single syringe pumps.
Revolver Lab Net International H5600 Adjustable lab rotator for mixing solutions
Hypodermic Needle (27G x 1 1/2") EXCELINT International Co 26426 This is part of the example customized coaxial nozzel shown.
Hypodermic Needle (21G x 1 1/2") EXCELINT International Co 26416 This is part of the example customized coaxial nozzel shown.
High Voltage DC Power Supply Gamma High Voltage Research ES30
Scanning Electron Microscope FEI Nova 2300
Fluorescence Microscope Zeiss Axio Imager 2
LL 37 ELISA Kit Hycult Biotech HK321-02

References

  1. Chen, S., et al. Recent advances in electrospun nanofibers for wound healing. Nanomedicine. 12 (11), 1335-1352 (2017).
  2. Khandalavala, K., Jiang, J., Shuler, F. D., Xie, J. Electrospun Nanofiber Scaffolds with Gradations in Fiber Organization. Journal of Visualized Experiments. (98), e52626 (2015).
  3. Xie, J., Li, X., Xia, Y. Put electrospun nanofibers to work for biomedical research. Macromolecular Rapid Communication. 29 (22), 1775-1792 (2008).
  4. Xie, J., et al. Nanofiber membranes with controllable microwells and structural cues and their use in forming cell microarrays and neuronal networks. Small. 7 (3), 293-297 (2011).
  5. Xie, J., et al. Radially aligned, electrospun nanofibers as dural substitutes for wound closure and tissue regeneration applications. ACS. 4 (9), 5027-5036 (2010).
  6. Xie, J., et al. “Aligned-to-random” nanofiber scaffolds for mimicking the structure of the tendon-to-bone insertion site. Nanoscale. 2 (6), 923-926 (2010).
  7. Jiang, J., et al. Expanded 3D Nanofiber Scaffolds: Cell Penetration. Neovascularization, and Host Response. Advanced Healthcare Materials. 5 (23), 2993-3003 (2016).
  8. Jiang, J., et al. Expanding Two-Dimensional Electrospun Nanofiber Membranes in the Third Dimension by a Modified Gas-Foaming Technique. ACS Biomaterials Science & Engineering. 10 (1), 991-1001 (2015).
  9. Jiang, J., et al. CO2-expanded nanofiber scaffolds maintain activity of encapsulated bioactive materials and promote cellular infiltration and positive host response. Acta Biomaterialia. 68, 237-248 (2018).
  10. Chen, S., et al. Nanofiber-based sutures induce endogenous antimicrobial peptide. Nanomedicine. 12 (10), 2597-2609 (2017).
  11. Dhand, C., et al. Bio-inspired crosslinking and matrix-drug interactions for advanced wound dressings with long-term antimicrobial activity. Biomaterials. 138, 153-168 (2017).
  12. Jiang, J., et al. Local sustained delivery of 25-hydroxyvitamin D3 for production of antimicrobial peptides. Pharmaceutical Research. 32 (9), 2851-2862 (2015).
  13. Jiang, J., et al. 1α, 25-dihydroxyvitamin D3-eluting nanofibrous dressings induce endogenous antimicrobial peptide expression. Nanomedicine (Lond). 13 (12), 1417-1432 (2018).
  14. Ma, B., Xie, J., Jiang, J., Shuler, F. D., Bartlett, D. E. Rational design of nanofiber scaffolds for orthopedic tissue repair and regeneration. Nanomedicine. 8 (9), 1459-1481 (2013).

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Cite This Article
Keit, E., Chen, S., Wang, H., Xie, J. Expansion of Two-dimension Electrospun Nanofiber Mats into Three-dimension Scaffolds. J. Vis. Exp. (143), e58918, doi:10.3791/58918 (2019).

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