Summary

Staphylococcus aureus Vekst med humant hemoglobin som en Iron Source

Published: February 07, 2013
doi:

Summary

Her beskriver vi en vekst analysen for<em> Staphylococcus aureus</em> Med hemoglobin som eneste kilde til tilgjengelige næringsstoffer jern. Denne analysen etablerer rolle bakterielle faktorer involvert i hemoglobin-avledet jern oppkjøpet.

Abstract

S. aureus er en sykdomsfremkallende bakterie som krever jern til å utføre livsviktige metabolske funksjoner og forårsake sykdom. Det mest rikelig reservoar av jern inne i menneskekroppen verten er heme, som er kofaktor av hemoglobin. Å tilegne seg jern fra hemoglobin, S. aureus benytter et omfattende system kjent som jern-regulert overflate determinant (ISD) system 1. Komponenter i ISD systemet først bind vert hemoglobin, deretter pakke og importere heme, og til slutt frigjøre jernet fra heme i den bakterielle cytoplasma 2,3. Denne veien er dissekert gjennom mange in vitro studier 4-9. Videre har bidraget fra den ISD system for smitte gjentatte ganger blitt demonstrert i musemodeller 8,10-14. Etablering bidraget fra den ISD systemet til hemoglobin-avledet jern oppkjøp og vekst har vist seg å være mer utfordrende. Vekst analyser ved hjelp hemoglobin som eneste jernkilde er komplisert by ustabiliteten av kommersielt tilgjengelig hemoglobin, forurensende fritt jern i vekstmediet, og toksisitet forbundet med jern chelatorer. Her presenterer vi en metode som overvinner disse begrensningene. Høykvalitative hemoglobin fremstilt fra friskt blod og lagres i flytende nitrogen. Renset hemoglobin er supplert til jern-deplete medium etterligne jern-dårlig miljø møtt av patogener inne i virveldyr vert. Ved å sulte S. aureus av fri jern og supplere med en minimal manipulert form av hemoglobin vi indusere vekst på en måte som er helt avhengig av evnen til å binde hemoglobin, trekke heme, passere heme gjennom bakteriecellen konvolutten og degradere heme i cytoplasma. Denne analysen vil være nyttig for forskere som søker å belyse mekanismene for hemoglobin-/heme-derived jern oppkjøp i S. aureus og muligens andre bakterielle patogener.

Protocol

1. Rensing av Hemoglobin fra Fresh Blood Erverve frisk menneskeblod supplert med en antikoagulant. Hold blod på is eller ved 4 ° C i hele rensing. Sentrifuger blod i 20 minutter ved 1500 x g. De røde blodceller (RBC), vil være på bunnen av røret. Nøye Aspirer supernatanten og forsiktig resuspender pelleten i iskald 0,9% (w / v) NaCl-oppløsning. Gjenta sentrifugeringen og vask 3 ganger. Resuspender pelleten i en volum iskald 10 mM Tris-HCl (pH 8,0). Dette vil indusere lysering av RB…

Representative Results

Vi har renset humant hemoglobin fra hemolysat med HPLC (Protokoll trinn 1.7). Figur 1 viser registrert absorbansen eluatet ved 280 og 410 nm bølgelengder. Fraksjon 5 ble oppsamlet og andre fraksjoner ble kassert. Avlingene av 5-15 milligram hemoglobin per milliliter eluat er vanligvis ervervet. Renset hemoglobin ble analysert ved SDS-PAGE i duplikat og gelene ble enten farget for proteiner eller overføres på nitrocellulose og immunoblotted (Protokoll trinn 1,10, figur 2). <p clas…

Discussion

Jern er et essensielt næringsstoff som kreves av organismer fra alle riker livet 15. I virveldyr, blir jern sequestered å unngå toksisitet forårsaket av dette elementet. Denne deponering skjuler også jern fra invaderende mikrober i en prosess som kalles ernæringsmessig immunitet 16. Som svar har patogener utviklet strategier som omgår ernæringsmessige immunitet. En slik mekanisme er avhengig hemoglobin, som er den mest rikelig kilde til jern i verten 17. Hemoglobin er inneholdt i…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskningen ble støttet av US Public Health Service tilskudd AI69233 og AI073843 fra National Institute of Allergy og smittsomme sykdommer. EPS er en Burroughs Wellcome Fellow i Patogenese of Infectious Diseases. KPH ble finansiert av Cellulær og molekylær mikrobiologi Training Grant Program 5 T32 A107611-10.

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalogue Number Comments
HPLC anion exchange column Varian PL1551-3802
Drabkin’s reagent Sigma D5941-6VL
Hemoglobin standard Pointe Scientific H7506-STD
RPMI HyClone SH30011.02
Chelex 100 sodium form Sigma C7901
EDDHA LGC Standards GmbH ANC 001
Hemoglobin a antibody Santa Cruz Biotechnology, Inc SC-21005
Tryptic soy agar BD 236920

References

  1. Mazmanian, S., et al. Passage of heme-iron across the envelope of Staphylococcus aureus. Science. 299, 906-909 (2003).
  2. Pishchany, G., Skaar, E. P. Taste for blood: hemoglobin as a nutrient source for pathogens. PLOS Pathogens. 8, e1002535 (2012).
  3. Haley, K. P., Skaar, E. P. A battle for iron: host sequestration and Staphylococcus aureus acquisition. Microbes and infection. Institut Pasteur. 14, 217-227 (2012).
  4. Krishna Kumar, K., et al. Structural basis for hemoglobin capture by Staphylococcus aureus cell-surface protein. IsdH. The Journal of biological chemistry. 286, 38439-38447 (2011).
  5. Grigg, J. C., Mao, C. X., Murphy, M. E. Iron-coordinating tyrosine is a key determinant of NEAT domain heme transfer. Journal of Molecular Biology. 413, 684-698 (2011).
  6. Villareal, V. A., et al. Transient weak protein-protein complexes transfer heme across the cell wall of Staphylococcus aureus. Journal of the American Chemical Society. 133, 14176-14179 (2011).
  7. Muryoi, N., et al. Demonstration of the iron-regulated surface determinant (Isd) heme transfer pathway in Staphylococcus aureus. J. Biol. Chem. 283, 28125-28136 (2008).
  8. Reniere, M. L., Skaar, E. P. Staphylococcus aureus haem oxygenases are differentially regulated by iron and haem. Mol. Microbiol. 69, 1304-1315 (2008).
  9. Liu, M., et al. Direct hemin transfer from IsdA to IsdC in the iron-regulated surface determinant (Isd) heme acquisition system of Staphylococcus aureus. J. Biol. Chem. 283, 6668-6676 (2008).
  10. Pishchany, G., et al. Specificity for human hemoglobin enhances Staphylococcus aureus infection. Cell Host Microbe. 8, 544-550 (2010).
  11. Pishchany, G., Dickey, S. E., Skaar, E. P. Subcellular localization of the Staphylococcus aureus heme iron transport components IsdA and IsdB. Infect. Immun. 77, 2624-2634 (2009).
  12. Torres, V. J., Pishchany, G., Humayun, M., Schneewind, O., Skaar, E. P. Staphylococcus aureus IsdB is a hemoglobin receptor required for heme iron utilization. J. Bacteriol. 188, 8421-8429 (2006).
  13. Kim, H. K., et al. IsdA and IsdB antibodies protect mice against Staphylococcus aureus abscess formation and lethal challenge. Vaccine. 28, 6382-6392 (2010).
  14. Cheng, A. G., et al. Genetic requirements for Staphylococcus aureus abscess formation and persistence in host tissues. Faseb J. 23, 3393-3404 (2009).
  15. Andreini, C., Bertini, I., Cavallaro, G., Holliday, G. L., Thornton, J. M. Metal ions in biological catalysis: from enzyme databases to general principles. J. Biol. Inorg. Chem. 13, 1205-1218 (2008).
  16. Weinberg, E. D. Iron availability and infection. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – General Subjects. 1790, 600-605 (2009).
  17. Drabkin, D. Metabolism of the Hemin Chromoproteins. Physiological Reviews. 31, 345-431 (1951).
  18. Graversen, J. H., Madsen, M., Moestrup, S. K. CD163: a signal receptor scavenging haptoglobin-hemoglobin complexes from plasma. The international journal of biochemistry & cell biology. 34, 309-314 (2002).
  19. Torres, V. J., et al. Staphylococcus aureus Fur regulates the expression of virulence factors that contribute to the pathogenesis of pneumonia. Infect. Immun. 78, 1618-1628 (2010).
  20. Hammer, N. D., Skaar, E. P. Molecular Mechanisms of Staphylococcus aureus Iron Acquisition. Annu. Rev. Microbiol. , (2011).
  21. Hurd, A. F., et al. The iron-regulated surface proteins IsdA, IsdB, and IsdH are not required for heme iron utilization in Staphylococcus aureus. Fems. Microbiology Letters. 329, 93-100 (2012).
  22. Boys, B. L., Kuprowski, M. C., Konermann, L. Symmetric behavior of hemoglobin alpha- and beta- subunits during acid-induced denaturation observed by electrospray mass spectrometry. Biochemistry. 46, 10675-10684 (2007).
  23. Williams, R. C., Tsay, K. Y. A convenient chromatographic method for the preparation of human hemoglobin. Analytical Biochemistry. 54, 137-145 (1973).
  24. Shen, T. J., et al. Production of unmodified human adult hemoglobin in Escherichia coli. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 90, 8108-8112 (1993).
  25. Manjula, B. N., Acharya, S. A. Purification and molecular analysis of hemoglobin by high-performance liquid chromatography. Methods Mol. Med. 82, 31-47 (2003).
  26. Neilands, J. B. Microbial envelope proteins related to iron. Annual review of microbiology. 36, 285-309 (1982).
  27. Chart, H., Buck, M., Stevenson, P., Griffiths, E. Iron regulated outer membrane proteins of Escherichia coli: variations in expression due to the chelator used to restrict the availability of iron. Journal of General Microbiology. 132, 1373-1378 (1986).
  28. Rogers, H. J. Iron-Binding Catechols and Virulence in Escherichia coli. Infection and Immunity. 7, 445-456 (1973).

Play Video

Cite This Article
Pishchany, G., Haley, K. P., Skaar, E. P. Staphylococcus aureus Growth using Human Hemoglobin as an Iron Source. J. Vis. Exp. (72), e50072, doi:10.3791/50072 (2013).

View Video