Summary

Chirurgie stéréotaxique rongeurs et des améliorations pour la protection des animaux Résultat Behavioral Neuroscience

Published: January 30, 2012
doi:

Summary

Chirurgie stéréotaxique sur des rongeurs permet l'administration ciblée de médicaments ou la stimulation électrique et les enregistrements dans Réveillez-vous, de se comporter des animaux. Dans cette présentation vidéo, nous allons montrer des dernières améliorations procédurales à cette procédure depuis longtemps que le taux de survie et réduit réussi à améliorer la perte de poids post-chirurgicale.

Abstract

Chirurgie stéréotaxique pour l'implantation de canules dans les régions spécifiques du cerveau a été pendant de nombreuses décennies une technique très réussie expérimentale pour étudier les effets des neurotransmetteurs au niveau local manipulé et voies de signalisation dans éveillés, les animaux se comportent. Par ailleurs, l'implantation stéréotaxique d'électrodes de stimulation et des études électrophysiologiques d'enregistrement a été déterminant pour notre compréhension actuelle de la neuroplasticité du cerveau et des réseaux dans le comportement des animaux. Connaissances sans cesse croissantes sur l'optimisation des techniques chirurgicales chez les rongeurs 1-4, sensibilisation du public concernant les questions de bien-être animal et de la législation stricte (par exemple, la directive 2010 de l'Union européenne sur l'utilisation des animaux de laboratoire 5) nous a incité à affiner ces procédures chirurgicales, en particulier en ce qui concerne la mise en œuvre de nouvelles procédures pour la supplémentation en oxygène et la surveillance continue de l'oxygénation du sang et des niveaux de fréquence cardiaque pendant l'intervention chirurgicale ainsi quel'introduction d'un protocole normalisé pour soins post-chirurgicaux. Nos observations indiquent que ces modifications conduit à un taux de survie accru et une amélioration de l'état général des animaux après la chirurgie (par exemple moins de perte de poids et un animal plus active). Cette présentation vidéo montrera les procédures générales impliquées dans ce type de chirurgie stéréotaxique avec une attention particulière à notre plusieurs modifications. Nous allons illustrer ces procédures chirurgicales chez les rats, mais il est également possible d'effectuer ce type de chirurgie chez la souris ou d'autres petits animaux de laboratoire en utilisant des adaptateurs spéciaux pour l'appareil de stéréotaxie 6.

Protocol

Note: Les techniques antiseptiques doivent être utilisés durant toute la procédure. Tous les instruments et les matériaux (coton-tige tampons de gaze, etc) qui sera utilisé pendant la chirurgie doivent être stérilisées à l'autoclave. Un masque chirurgical, bonnet de cheveux et gants stériles devraient être portés. La zone de travail et de l'appareil de stéréotaxie devraient être entièrement nettoyés et désinfectés avec une solution d'éthanol à 70%. 1. Pré-chir…

Discussion

Le but principal de cette vidéo de présentation est de familiariser les neuroscientifiques comportementaux avec les principes fondamentaux de la chirurgie stéréotaxique. Les chercheurs qui sont déjà de la chirurgie stéréotaxique pourraient également bénéficier de cette vidéo et d'examiner certains des raffinements de procédure pour l'utilisation dans leur propre laboratoire. Une connaissance de plus en plus sur l'optimisation des techniques chirurgicales 1-3, le développement de nouv…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs remercient le Dr Peter Gerrits pour les dessins utilisés dans la vidéo.

Materials

Name of the reagent Company
Alcohol 70% VWR
Antisedan (atipamezole) Orion
Atropine sulfate 0,5 Pharmachemie BV
Bulldog haemostatic clamp Aesculap
Cannulas Component Supply Co.
Chlorhexidine 0.5% AppepPharma
Cleaning powder Alconox
Cotton sticks Hartmann BV
Dexdomitor (dexmedetomidine) Orion
Drill Dremel 8000
Duratears Z Alcon
Durogrip Naaldvoerder converse 130mm Aesculap
Durotip Fijne schaar ret.sp/st 110 mm Aesculap
Gauze Medicomp (5×5)
Heating pad Harvard Apparatus
Insect pins (stylets) Entosphinx (Czech Republik)
Ketamine 10% (ketamine) Alfasan
Micro-halsted straight tip Aesculap-vet
Molinea Hartmann BV
NaCl 0,9% Baxter
Needles (25G) Terumo
Oximeter Edan Instruments, Inc.
Pentobarbital Pharmacy of the UMCG
Rimadyl Pfizer
Scalpel blade No. 23 Swann Morton
Scalpelholder NR. 4 133 mm Aesculap
Screw driver conventional Hardware Store
Simplex Rapid (dental cement) Kemdent
Skull screws Component Supply Co.
Spatula VWR
Spongestan special Johnson & Johnson
Stereotacts Kopf Instruments
Surgical forceps 100mm Aesculap
Suture material Safil 5/0 Aesculap
Syringe 10 ml Omnifix
Syringe 1ml Terumo
Syringe 5ml Omnifix
Xylocaine (lidocaine/adrenaline) Astra Zeneca

References

  1. Russell, W. M. S., Burch, R. L. . The Principles of Humane Experimental Technique. , (1959).
  2. Richardson, C. A., Flecknell, P. A. Anaesthesia and post-operative analgesia following experimental surgery in laboratory rodents: are we making progress?. Altern. Lab Anim. 33, 119-127 (2005).
  3. Stokes, E. L., Flecknell, P. A., Richardson, C. A. Reported analgesic and anaesthetic administration to rodents undergoing experimental surgical procedures. Lab Anim. 43, 149-154 (2009).
  4. Flecknell, P. A. . Laboratory Animal Anaesthesia – A Practical Introduction for Research Workers and Technicians. , (2009).
  5. . DIRECTIVE 2010/63/EU OF THE EUROPEAN PARLIAMENT AND OF THE COUNCIL of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes. Official Journal of the European Union. , (2010).
  6. Geiger, B. M., Frank, L. E., Caldera-Siu, A. D., Pothos, E. N. Survivable Stereotaxic Surgery in Rodents. J. Vis. Exp. (20), e880-e880 (2008).
  7. Hellebrekers, L. J., Booij, L. H. D. J., Flecknell, P. A., Van Zutphen, L. F. M., Baumans, V., Beynen, A. C. Anaesthesia, analgesia and euthanasia. Principles of Laboratory Animal Science. , 277-311 (2001).
  8. Walantus, W., Elias, L., Kriegstein, A. In utero intraventricular injection and electroporation of E16 rat embryos. J. Vis. Exp. (6), e236-e236 (2007).
  9. Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , (1986).
  10. Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , (2007).
  11. Swanson, L. W. . Brain Maps: Structure of the Rat Brain. , (1992).

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Cite This Article
Fornari, R. V., Wichmann, R., Atsak, P., Atucha, E., Barsegyan, A., Beldjoud, H., Messanvi, F., Thuring, C. M., Roozendaal, B. Rodent Stereotaxic Surgery and Animal Welfare Outcome Improvements for Behavioral Neuroscience. J. Vis. Exp. (59), e3528, doi:10.3791/3528 (2012).

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