يوصف البناء كاملة مخصصة ، في الوقت الحقيقي المسح مبائر نظام التصوير. هذا النظام ، والتي يمكن استخدامها بسهولة لمعدل الفيديو وmicroendoscopy المجهري ، ويسمح لمجموعة من التطبيقات وهندستها التصوير لا يمكن الوصول إليها باستخدام معيار نظم مبائر التجارية ، في جزء صغير من التكلفة.
Confocal microscopy has become an invaluable tool in biology and the biomedical sciences, enabling rapid, high-sensitivity, and high-resolution optical sectioning of complex systems. Confocal microscopy is routinely used, for example, to study specific cellular targets1, monitor dynamics in living cells2-4, and visualize the three dimensional evolution of entire organisms5,6. Extensions of confocal imaging systems, such as confocal microendoscopes, allow for high-resolution imaging in vivo7 and are currently being applied to disease imaging and diagnosis in clinical settings8,9.
Confocal microscopy provides three-dimensional resolution by creating so-called “optical sections” using straightforward geometrical optics. In a standard wide-field microscope, fluorescence generated from a sample is collected by an objective lens and relayed directly to a detector. While acceptable for imaging thin samples, thick samples become blurred by fluorescence generated above and below the objective focal plane. In contrast, confocal microscopy enables virtual, optical sectioning of samples, rejecting out-of-focus light to build high resolution three-dimensional representations of samples.
Confocal microscopes achieve this feat by using a confocal aperture in the detection beam path. The fluorescence collected from a sample by the objective is relayed back through the scanning mirrors and through the primary dichroic mirror, a mirror carefully selected to reflect shorter wavelengths such as the laser excitation beam while passing the longer, Stokes-shifted fluorescence emission. This long-wavelength fluorescence signal is then passed to a pair of lenses on either side of a pinhole that is positioned at a plane exactly conjugate with the focal plane of the objective lens. Photons collected from the focal volume of the object are collimated by the objective lens and are focused by the confocal lenses through the pinhole. Fluorescence generated above or below the focal plane will therefore not be collimated properly, and will not pass through the confocal pinhole1, creating an optical section in which only light from the microscope focus is visible. (Fig 1). Thus the pinhole effectively acts as a virtual aperture in the focal plane, confining the detected emission to only one limited spatial location.
Modern commercial confocal microscopes offer users fully automated operation, making formerly complex imaging procedures relatively straightforward and accessible. Despite the flexibility and power of these systems, commercial confocal microscopes are not well suited for all confocal imaging tasks, such as many in vivo imaging applications. Without the ability to create customized imaging systems to meet their needs, important experiments can remain out of reach to many scientists.
In this article, we provide a step-by-step method for the complete construction of a custom, video-rate confocal imaging system from basic components. The upright microscope will be constructed using a resonant galvanometric mirror to provide the fast scanning axis, while a standard speed resonant galvanometric mirror will scan the slow axis. To create a precise scanned beam in the objective lens focus, these mirrors will be positioned at the so-called telecentric planes using four relay lenses. Confocal detection will be accomplished using a standard, off-the-shelf photomultiplier tube (PMT), and the images will be captured and displayed using a Matrox framegrabber card and the included software.
هذا النظام التصوير بالفيديو معدل يجعل من استخدام نظام تشغيل مرآة galvanometric مدوية في حوالي 8 كيلو هرتز. يمكن أن يكون مرتفعا المرايا مدوية للغاية عندما يعمل في السلطة الكاملة ، والملعب العالية يمكن أن تكون مزعجة أو خطيرة حتى في أوقات التعرض كافية. وإن لم يثبت هنا ، فمن المستحسن لحماية المرآة galvanometric مدوية داخل حقيبة شفافة لخفض كبير في حجم النظام و / أو العتاد المناسب لارتداء السمع وقائية ، مثل سدادات الأذن.
المرآة galvanometric بفحص الرنين في نمط الجيبية. ومع ذلك ، وبطاقات framegrabber قراءة في إشارة بافتراض معدل اكتساح خطية تماما في كلا الاتجاهين الأفقي والرأسي. منذ الاجتياح الجيبية يبطئ على حواف الفحص ، يمكن ملاحظة الآثار ضغط الصور على طول محور سريع صورة (أفقي). طريقة واحدة للحد من هذه المشكلة هو محرك عمدا المرآة galvo الرنانة نطاق المسح أكبر بكثير منتتابع عدسة القطر. في القيام بذلك ، لن يؤدي إلا إلى ما يقرب من الاجتياح خطية المركزية لفحص نمط الجيبية تجتاز العينة ، والتقليل من تشوهات الصورة. ونهج آخر يتمثل في ما بعد عملية الصور التي تم جمعها ليصبح خطي المحور بسرعة. ويمكن تحقيق ذلك عن طريق التصوير نمط معروف الفلورية (مثل الشبكة) وباستخدام مقاييس معروفة لخلق نمط نصي unwarps تجهيز الصور التي تم جمعها.
وقد صمم هذا النظام مسح خاص لهذا الغرض من التصوير في الجسم الحي ، والتي غالبا ما يتطلب التوجه تستقيم الفيديو معدل المجهر. للتجارب التصوير الخلوية ، وعادة ما تستخدم أكثر المجاهر المقلوب. ويمكن تصميم المقدمة هنا تغييرها بسهولة لبناء مثل هذا المجهر المقلوب ، وكل ما هو مطلوب هو تناوب المباراة النهائية 2 مرآة قطرها ". بدلا من توجيه المرآة لتوجيه شعاع المسح الهبوط ، يمكن للمرآة توجيه شعاع التصاعدي. وضع عدسة هدفر وعلى مسافة واحدة من المرآة جنبا إلى جنب مع مرحلة عينة تسمح للتصوير في الهندسة مقلوب. إذا كان يتم بناء نظام التصوير لمجرد التصوير microendoscopic ، ليس هناك سبب يدعو إلى "اضعاف" تصميم المجهر عموديا على الإطلاق. بدلا من ذلك ، يمكن أن يبنى نظام مسح كامل على اللوح أفقي واحد مع الهدف الموازي عدسة موجهة الى طاولة الضوئية.
علما بأن هذا المجهر في بناء التكوين يستخدم الثقب الثابتة ، في حين أن هذا ينص على بناء أكبر بساطة وسهولة التنسيق والمستخدمين الراغبين نظام أكثر تنوعا قد تنظر في إدراج متغير ذات الثقب ، كما يمكن العثور عليها في معظم المجاهر مبائر التجارية. عن طريق السماح للمستخدم لضبط حجم ثقب الدبوس للتعويض عن عينات من كثافة الانبعاثات متفاوتة ، وهذا يسمح للمستخدم لتحسين أفضل لالمفاضلة بين القوة والقرار إشارة لعينة معينة.
في الفصلoice من الألياف الصور المختارة للمجهر هو المهم. ونحن نوصي باستخدام الألياف سوميتومو صورة متماسكة نظرا لتباعد الوثيق بينهما الألياف الأساسية وتألق ذاتي نسبي منخفض. تم العثور على صورة ألياف صنعت من قبل فوجيكورا لكميات عالية من تألق ذاتي 10 ، والتي يمكن أن تطغى على إشارات ضعيفة مضان من عينة والحد من حساسية النهائي للmicroendoscope. سوميتومو الألياف المصنعة ، مثل 30N – 8 المستخدمة في هذا الإعداد وجه الخصوص ، لديهم مستويات أقل بكثير من تألق ذاتي معادلاتها فوجيكورا. في حين يمكن اعتبار حزم الألياف يتشيد جذابة للmicroendoscopy ، تصميمها عادة الأماكن النوى الألياف الفردية متباعدة جدا ، وهذا يعني أن الألياف النوى الكائنات عينة قليلة ، تاركة مناطق كبيرة من الفائدة المحتملة.
أخيرا ، تجدر الإشارة إلى أنه في حين أن المجهر الموصوفة هنا سيكون مفيدا في مجموعة متنوعة من في المختبر والمجراة للتطبيقيمكن خلق الوظائف ولجزء من تكلفة نظام كامل المواصفات التجارية ، وأنها لا تملك ميزات مثل الكشف عن الضوء المرسل ، والعدسة للعرض ، أو مسار شعاع لepifluorescence widefield غير متحد البؤر. في حين أنه من الممكن بناء نظام مع هذه الميزات من الصفر ، ويمكن للقراء الراغبين مثل هذا النظام ترغب في تعديل نظام قائم التجارية لتلبية احتياجاتهم بدلا من الشروع في بناء جديد تماما.
The authors have nothing to disclose.
فإن الكتاب أود أن أشكر ThorLabs لدعمهم لهذا المشروع. AJN تود أن تقر الدعم من زمالة دراسات عليا جبهة الخلاص الوطني.
وقد تم تمويل هذا العمل جزئيا من قبل المعاهد الوطنية للصحة من خلال المعاهد الوطنية للصحة المدير الجديد المبتكر برنامج جائزة ومنحة رقم 1 DP2 OD007096 – 01. معلومات عن برنامج مبتكر جديد هو على جائزة http://nihroadmap.nih.gov/newinnovator/ . فإن الكتاب أود أن أشكر توم هايز لاستخدام مختبر الإلكترونيات في جامعة هارفارد.
Part Name | Manufacturer | Item Number | Specifications | Quantity |
515 nm Band Pass Filter | Chroma | HQ515/50M | 46 FWHM | 1 |
Achromatic Doublet Lens 25.4mm Dia. x 50mm FL, MgF2 Coating | Edmund Optics | NT49-766 | 1 | |
Achromatic Doublet Lens 25.4mm Dia. x 76.2mm FL, MgF2 Coating | Edmund Optics | NT49-768 | 1 | |
Achromatic Doublet Lens 25.4mm Dia. x 88.9mm FL, MgF2 Coating | Edmund Optics | NT49-769 | 2 | |
Achromatic Doublet Lens 50mm Dia. x 300mm FL, MgF2 Coating | Edmund Optics | NT45-179 | 1 | |
8 kHz R High Frequency Optical Scanner | Electro-Optical Products Corporation (EOPC) | SC-30 | 8 kHz | 1 |
AGC Driver | Electro-Optical Products Corporation (EOPC) | ACG:8K | ||
H7422-PA Photosensor Module | Hamamatsu | H7422-PA | Current limiting recommended | 1 |
M9012 Power Supply | Hamamatsu | M9012 | For use with H7422-PA | 1 |
HC PL APO CS Objective | Leica | 11506284 | 10x/0.40 | 1 |
Solios eA/XA Framegrabber Card | Matrox | Solios eA/XA | MIL software required; OEM interconnects recommended | 1 |
12V Power Supply | Meanwell | LPV-100-12 | +12V, 8.5A | 1 |
5x Microscope Objective Lens | Newport | M-5X | 0.10 NA, 25.4 mm Focal Length | 1 |
Coherent Image Fiber | Sumitomo | 8-30N | 1 | |
1/4″-20 Cap Screw and Hardware Kit | ThorLabs | HW-KIT2 | 1 | |
100 μm Mounted Pinhole | ThorLabs | P100S | Ideal for building spatial filters | 1 |
30 mm Cage Cube Clamp | ThorLabs | B6C | 1 | |
30 mm Cage System Cube, 4-Way | ThorLabs | C4W | 1 | |
406 nm, 5 mW, B Pin Code, SM Fiber Pigtailed Laser Diode, FC/PC | ThorLabs | LPS-406-FC | Product obsolete; replaced by LP405-SF10 | 1 |
5-Minute Epoxy, 1 Ounce | ThorLabs | G14250 | 1 | |
6 Axis Kinematic Optic Mount | ThorLabs | K6X | 1 | |
8-32 Cap Screw and Hardware Kit | ThorLabs | HW-KIT1 | 1 | |
8-32 Setscrew and Hardware Kit | ThorLabs | HW-KIT3 | 1 | |
Adapter with External RMS Threads and Internal SM1 Threads | ThorLabs | SM1A4 | 1 | |
Adj. FC/PC and FC/APC Collimator, f = 2.0 mm, ARC: 400-600 nm | ThorLabs | CFC-2X-A | f = 2.0 mm | 1 |
Adjustable Fiber Collimator Adapter, SM1 Threaded | ThorLabs | AD9.5F | 1 | |
Aluminum Breadboard, 12″ x 18″ x 1/2″ | ThorLabs | MB1218 | 1/4″-20 Threaded | 2 |
Benchtop Laser Diode/TEC Controller | ThorLabs | ITC4001 | 1 A/96 W | 1 |
DMLP 425 nm Long-Pass Dichroic Mirror | ThorLabs | DMLP425 | 1 | |
Kinematic Mount for Ø1″ Optics | ThorLabs | KM100 | 3 | |
LD/TEC Mount for ThorLabs Fiber-Pigtailed Laser Diodes | ThorLabs | LM9LP | 1 | |
Lens Mount for Ø18 mm Optics | ThorLabs | LMR18 | One retaining ring included | 1 |
Lens Mounts for 2″ Optics | ThorLabs | LMR2S | With internal and external threading; retainer ring included | 2 |
Mini Series Cage Assembly Rod, 6″ Long, Ø4 mm, Qty. 1 | ThorLabs | SR6 | 4 | |
Ø1.0″ Pedestal Pillar Post, 8-32 Taps, 1″ Long | ThorLabs | RS1P8E | 4 | |
Ø1″ Pillar Post Extension, Length=0.5 | ThorLabs | RS05 | 4 | |
Ø1″ Pillar Post Extension, Length=0.75″ | ThorLabs | RS075 | 4 | |
Ø1″ Protected Silver Mirror, 3.2 mm Thick | ThorLabs | ME1-P01 | 1 | |
Ø1″ SM1 Rotating Adjustable Focusing Element, L = 1″ | ThorLabs | SM1V10 | 1 | |
Ø2″ Protected Silver Mirror, 3.2 mm Thick | ThorLabs | ME2-P01 | 2 | |
P100S – Ø100 μm Mounted Pinhole | ThorLabs | P100S | 1 | |
Polaris Low Drift Ø1″ Kinematic Mirror Mount | ThorLabs | POLARIS-K1 | Low drift | 1 |
SM1 Lens Tube, L = 1″ | ThorLabs | SM1L-10 | One retaining ring included | 4 |
SM1 Threaded 30 mm Cage Plate, 0.35″ Thick | ThorLabs | CP02 | 2 | |
SM1 to M25 Optical Component Threading Adaptor | ThorLabs | SM1A24 | External SM1 Threads and Internal M25.5×0.5 Threads | 1 |
Small Beam Diameter Galvo System | ThorLabs | GVSM001 | 1 | |
Small Clamping Fork | ThorLabs | CF125 | 1/25″ counterbored slot, universal | 15 |
Spatial Filter System | ThorLabs | KT310 | Pinhole sold separately | 1 |
TE-Cooled Mount for 5.6 & 9 mm Lasers | ThorLabs | TCLDM9 | 1 | |
Vertical Bracket for Breadboards | ThorLabs | VB01 | Each | 2 |
Plan-Apochromat | Zeiss | 1101-957 | 20x/0.75 NA | 1 |