Summary

Farelerde Cajal (ICC) Ağ İnterstisyel Hücreler Görselleştirme

Published: July 27, 2011
doi:

Summary

Cajal interstisyel hücreler (ICC), gastrointestinal (Gİ) sistem kalp pili hücreleri. Bunlar, düz kas hücreleri ve gastrointestinal kontraktilite düzenlemek için post-ganglion nöronal liflerdir arasındaki karmaşık ağları oluşturmaktadır. Burada, immünofloresan kesitsel yöntemler ve fare ICC ağlarının bütün montaj görselleştirme sunuyoruz.

Abstract

Cajal interstisyel hücreler (ICC) peristaltizm için gerekli kendiliğinden yavaş dalgalar oluşturur ve nöronal giriş enterik sinir sistemi1 arabuluculuk gastrointestinal (Gİ) sistem mezenkimal elde edilen "kalp pili hücreleri". GI yolu 2,3 muskularis ICC farklı alt tiplerinin farklı ağlar oluşturur. Bu ağlara kaybı veya yaralanma motilite bozuklukları 4 sayı ile ilişkilidir. ICC hücreleri immün ICC ağ 5,6 etiketlemek için son 15 yıldır kullanılan plazma membran ve KIT KIT reseptör tirozin kinaz ifade eder. Daha da önemlisi, normal KIT aktivite, ICC geliştirme 5,6 için gereklidir . Sık sık fonksiyon kazanç-KIT mutasyonları 7,8 limanı ICC hücreleri gastrointestinal stromal tümör (GİST), neoplastik dönüşüm . Biz son zamanlarda ETV1 ICC / GİST soy ifade bir soy-spesifik sağkalım faktörü olup, normal ICC ağ oluşumu hem de ve GİST tümörogenez 9 için gerekli bir ana transkripsiyonel regülatör olduğunu gösterdi . Biz daha KIT mutasyonları tümörigenezinde aktive işbirliği halinde olduğunu göstermektedir. Burada, farelerde ICC ağları görüntüleme yöntemleri, büyük ölçüde, daha önce yayınlanan protokolleri 10,11 açıklar . Daha yakın zamanlarda, klorür kanal anoctamin 1 (ANO1) ICC 11,12 belirli bir membran belirteci olarak karakterize edilmiştir. Çünkü plazma membran lokalizasyonu, hem proteinlerin immünofloresan ICC ağları görselleştirmek için kullanılabilir. Burada, sabit dondurulmuş cyrosections ve tüm montaj hazırlıkları ICC şebekeleri görselleştirme açıklar.

Protocol

1. Fare GI kanalda diseksiyonu Yerel IUCAC kurallar tarafından ötenazi farelerde Strafor yüzeyinde her uzuv Pin karın yüzeyi ve% 70 etanol ile yıkayın. Diyafram pubis uzun orta hat kesi ile karın boşluğuna açın. Bir distal kalın bağırsağın distal özefagus ve ikinci bir kesme kesme ve blok tr mide anüs gastrointestinal sistem kaldırmak, küçük bir makas kullanarak duodenum ve çekum dikkatlice ligamentler kesme olun. PBS ile bir petri kabına yerleştirin GI sistem. Cımbız (Şekil 1) kullanarak mezenter parçalara ayır. Mide, ince bağırsak, kalın bağırsak, pyloru ve ileoçekal bileşke kesme ayırmak için. Her bir parçası bir beslenme iğne (eski fareler) veya künt bir iğne (genç fareler) bağlı bir 5ml şırınga kullanarak PBS ile gastrointestinal sistem lümeni durulayın. Mezenterik sınırı boyunca aç mide, ince bağırsak ve kalın bağırsak. GI yolu her bölümü için, tüm montaj görünüm için tek ve cryosection için bir iki parça kesin. 2. Tüm montaj numune hazırlama ve immün GI kanalda her bir parçası, 4 en az 1 saat için 1.0 ml buz gibi aseton ve düzeltme örnekleri ile dolu bir 1,5 cm mikrofuge'de tüp ° C tüm parça yerleştirin. Numuneler -20 ° C'de 1 hafta kadar saklanabilir Biz genellikle aseton örnekleri saklamak ve cyrosections hazırlamak geçin. PBS ile örnek 2X yıkayın. PBS ile petri kabına yerleştirin örneği. Miscroscope diseksiyon altında muskularis bırakarak, bir cımbız ile bir ucunu tutarak dikkatle mukoza tabakası bir neşter ile kazıyın. Kas farklı antikorlar ile boyanarak 5mm parçalar halinde kesilebilir. Boyama önce PBS içinde 2 günden fazla saklamayın. Blok ve inkübasyon adımları iyi bir 24 plaka veya bir 1.5ml mikrofuge'de tüp yapılabilir. Engelleme tampon 0.5 ml (% 5 keçi serumu,% 0,1 Triton az 1 saat 4 PBS X-100 ° C) Blok. Tampon engelleme seyreltilmiş primer antikor ile inkübe ve 4 gece döndürmek ° C Biz anti-Kiti ACK-2 sıçan, tavşan anti-Ano1 ve tüm montaj immün tavşan anti-Pgp9.5 antikorlar başarıyla kullanmıştır. PBS ile 5 dk 2X için oda sıcaklığında rotator yıkayın. Rotator oda sıcaklığında 2 saat süreyle bloke tampon seyreltilmiş ikincil antikor ile inkübe edin. Biz genellikle Alexa Fluor 488 anti-tavşan ve Alexa Fluor 594 anti-fare antikorları kullanın. Oda sıcaklığında rotator 3X PBS ile 15 dakika yıkayınız. Mikroskopi sırasında doku yönlendirmesini sağlamak için üst slayt, serozal tarafında monte edin. Bu yönelim, lamel yüz ve bir mikroskop, slayt içine odaklanır gibi ilk karşılaşılan serozal tarafında sağlayacaktır. Biz bunu bir diseksiyon mikroskobu. Bazen, kısaca düzgün şark floresan mikroskobu altında dokuyu inceler. Kit veya Ano1 görselleştirmek için floresan mikroskobu altında, bir lamel yan ilk ICC-MY ağ karşılaşmazsınız. Sonra, aspirat PBS mümkün olduğunca olmadan tamamen kurutulması. Sabit montaj seti medya (Altın Prolong kullandığınız) 50 ul ekleyin ve doku üstüne kapak kayma yavaşça yerleştirin. -80 Gece boyunca oda sıcaklığında ve mağaza slaytlar montaj ver ayarı ° C Mikroskobik inceleme için, Z-sürücü ile geniş bir alan mikroskobu kullanıldı. Biz ya 20X hava bir objektif (NA 0.75, planı apochromat) veya 60X yağlı objektif (NA 1.4, planı apochromat) ve 2 mm veya tüm muskularis yayılan Z kesitler 1 mikron aldı. Görüntüler daha sonra AutoQUANT deconvolution yazılımı kullanarak deconvoluted. Alternatif olarak, diğerleri benzer sonuçlar yerine konfokal mikroskobi kullandık. 3. Cryosection hazırlanması ve immün Filtre kağıdı düz aşağı GI yolu, serozal tarafında, her bir parçası yerleştirin. Doku çevresindeki filtre kağıdı kesin. Oda sıcaklığında 2 saat süreyle PBS (% 32 kullanmadan önce doğru PBS içine kapalı flakon paraformaldehid sulandırmak)% 4 paraformaldehid (PFA) filtre kağıdı üzerine koyun doku. Veya doku büyüklüğüne bağlı olarak 12 plaka, 1.5 ml mikrofuge'de tüp Fixation 6 yapılabilir yapabilirsiniz. Plakasını yapılırsa, parafilm PFA maruziyeti en aza indirmek için. Daha uzun fiksasyon kez, özellikle de anti-Kiti ACK-2 antikor, antijen maskeleme neden olabilir. PBS içinde% 30 sakaroz PFA doku ve yer çıkarın. İzin doku 4 gece lavaboya ° C 1 saat süreyle% 30 sükroz ve OCT 1:1 oranında doku dengelenmesi. Sonra GI sistem boylamasına ekseni cyrosections paralel olmalıdır OCT ile dolu cryomold dikey doku monte edin. Farklı genotipleri ile veya farklı tedaviler ile fareler incelendiğinde, paralel işlem sağlamak için aynı cryomold üzerine farklı farelerde doku monte etmek için yararlı olabilir. Kuru buz ve yer saklama için -80 ° C derin dondurucuda dondurun. 10 mikron cryosections Kes-80 ° C derin dondurucu slayt ve mağaza üzerine. Biz genellikle iki bölümden slayt başına kesti. Ayrıca genellikle bir cryosection slayt H & E boyama gerçekleştirin. Immünofloresan için, ilk 15 dakika boyunca oda sıcaklığında slayt dengelenmesi. Sonra PAP kalem kullanarak doku etrafında bir daire çizin. 1 saat süreyle bloke tampon (bütün monte immün aynı) 150 ul engelleyin. Aspire engelleme tampon ve tampon engelleme seyreltilmiş 150 ul primer antikor ekleyin ve 4 gece inkübe ° C nemlendirilmiş bir odasında. PBS ile 5 dk 2X yıkayın. Oda sıcaklığında 2 saat tampon engelleme seyreltilmiş ikincil antikor ile inkübe edin. Biz genellikle Alexa 488 anti-tavşan ve Alexa 594 anti-fare antikorları kullanın. 3X PBS ile 15 dakika süreyle yıkayın. Doku tamamen kuruyan olmadan slayt aspire. DAPI (Altın Prolong kullandığınız) # 1.5 lamel ile medya montaj sert kümesinin bir damla ekleyin. Gecelik oda sıcaklığı -80 ° C derin dondurucuda kurulum ve saklama yeri slayt. DAPI, FITC, ve Texas Red filtre setleri kullanılarak üçlü floresan görüntüler elde. 4. Temsilcisi Sonuçlar: Burada, biz, bir örnek olarak kalın bağırsak kullanır. H & E sukroz leke immünofloresan için kullanılan dondurulmuş bölümünde sabit korunan bazı eserler bir referans parafin bölüm (Şekil 2), gösterir nerede dairesel ve uzunlamasına kas tabakaları ve yeşil hat demarks arasında sarı çizginin demarks myenterik pleksus arasındaki sınır mukoza ve muscularlis. Seroza mukoza cryosection incelenmesi, ilk olarak kalın yuvarlak kas (CM) tabakası tarafından takip uzunlamasına ince kas (LM) katmanı karşılaşıyoruz. CM çekirdeklerin, küçük ve yuvarlak olmalıdır LM çekirdekleri biraz uzun olmalı, böylece bölüm uzunlamasına kas ile paralel olmalıdır. LM ve CM arasında Pgp9.5 ile leke nöronlar yapılan myenterik pleksi. CM boyunca Pgp9.5 lekeleri nöronal süreçleri. Myenterik ICC ağ (ICC-MY) myenterik pleksus çevreleyen ve çok kutuplu hücreler yapılır. Longitudinal kas tabakasının içinde, bipolar hücreleri kas ile paralel olarak çalışan nadir intramüsküler ICCS (ICC-IM) vardır. Sirküler kas tabakası içinde de dairesel bir kas ile paralel ve bu kesim kesitli bipolar hücreleri olan ICC-IMs bol vardır. ICC-TPF oluşan submukozal ICC ağ muskularis ve submukoza kavşağında, düz, çok kutuplu ICCS bir ağdır. Lamel odaklanır gibi kalın bağırsak immün bütün montaj Kiti incelenmesi, bir (Figure. 3), CM ICC-IM ve ICC-SMP ağları sonra ICC-MY ağ ilk karşılaşmaya bekliyoruz. . Tüm montaj görüntüler 3 boyutlu rekonstrüksiyon kullanarak ICC ağları Volumetrik ölçüsü 10 tarif edilmiştir. Geniş alan mikroskobu kullanarak, önemli bir düzlem-dışı floresan deconvolution sonra kaldırılır (Şekil 3) ham görüntüleri var. Mukoza sıyırma Eksik yüksek eşiğe neden olacaktır. ANO1 başka bir ICC'nin marker ve co-immün KİT ve ANO1 ICC boyama (Şekil 4) tam bir örtüşme gösterir. Şekil 1. Temsilcisi izni 13 ile yeniden basıldı, fare gastrointestinal sistem disseke. Şekil 2 A) Temsilcisi H & E boyama cryosections bazı büzülme eserler gösteren bölümünde anlatıldığı ve referans parafin hazırlanmış cryosections fare kalın bağırsak. Sarı hat demarks myenterik pleksus ve mavi çizgi, muskularis mukoza ayırır. B) Temsilcisi Kit (kırmızı, ACK-2) ve Pgp9.5 (yeşil) fare kalın bağırsak DAPI (mavi) counterstaining ile çift immünofloresan. LM: uzunlamasına kas CM: dairesel kas. Ölçek çubuğu 20 mm. Şekil 3 Temsilci Kiti (kırmızı, ACK-2) tüm montaj üç odak düzlemleri aynı alanda immünofloresan, ICC-MY LM / CM sınırında uçak, CM ICC-IM uçak ve ICC- CM / submukozaya sınırda SMP düzlemi. Ham görüntüleri ve deconvoluted görüntüleri gösterilmiştir. Ölçek çubuğu 20 mm. Şekil 4 Ano1 (yeşil) ve kalın bağırsak Kiti (kırmızı, ACK-2) Temsilcisi çift immünofloresan. Ölçek çubuğu 20 mm.

Discussion

Cajal İnterstisyel hücreler başlangıçta gastrointestinal muskularis metilen mavisi ve gümüş kromat lekeleri kullanarak tam bir asır önce, Santiago Ramóón y Cajal ile karakterize edilmiştir. Cajal başlangıçta ICC'nin nöronların akson ve dendritler anımsatan süreçlerini tabanlı düşündüm. Birçok izleyen yıl içinde, ICC biyoloji çalışma, bu KIT bir keşif değil sadece ICC ifade kadar spesifik belirteçler eksikliği tarafından sınırlı, ancak aynı zamanda onların gelişimi 6 için gereklidir. O zamandan beri, KIT immünofloresan ICC biyoloji çalışmada, yaygın olarak kullanılan ve aynı zamanda, mesane gibi diğer kontraktil organlarda ICC beğenisine yol açmıştır. Son zamanlarda, ANO1 ikinci bir güvenilir ICC belirteci olarak tespit edilmiştir.

Immünofloresan kullanarak çeşitli sabitleme ve montaj teknikleri kullanarak ICC tanımlamak için son 15 yılda pek çok yayın olmuştur. Paraformaldehid ve korunan sakaroz öneki ile bizim elimizde "sabit donmuş" cryosections cryosectioning sonra aseton veya fiksasyonu sonrası paraformaldehid göre çalışır. Bütün bağlar için, mukozal diseksiyon aseton tespiti en sağlam sonuçlar veren bulduk.

Tarihsel olarak, ACK-2 fare ICC kimlik için tercih edilen Kit antikor olmuştur. Ekstrasellüler etki tanıyan monoklonal bir sıçan ve fareler yaşamak verildiğinde ileus neden olan bir engelleme antikordur. Ancak, ACK-2 epitop paraformaldehid fiksasyon tarafından yavaş yavaş tahrip ve standart antijen alma yöntemleri ile kurtarıldı. ACK-4 epitop paraformaldehid fiksasyon daha dirençli olduğunu buldular. Morfolojisi sabit dondurulmuş blok ve bölümleri, parafin blok ve bölümler ile karşılaştırıldığında daha iyi korur ve uzun süreli arşivleme (Şekil 4) daha yumuşak. ACK-2 ya da ACK-4 ne kesitler başarıyla kullanılmaktadır. Biz, yeni bir tavşan monoklonal antikor, D13A2 GI sistem hem sabit dondurulmuş ve parafin bölümlerde son derece iyi çalıştığını karakterize var.

Kit, GI yolu da bulunan melanosit, hematopoetik hücreler, germ hücreleri, ve özellikle mast hücreleri de dahil olmak üzere diğer birçok hücre tipleri, ifade edilir. Neyse ki, en mast hücreleri, muskularis mukoza ve bulunur. Çift boyama tavşan anti-Ano1 ve sıçan anti-Kit her antikor non-spesifik boyanması (Şekil 4) ortadan kaldırabilir. Ayrıca Kit ve Ano1 ICC alt sınıfları arasında göreceli bir ifade farklı görünüyor fazlalaştı. Örneğin, küçük bağırsak, Kit boyama Ano1 boyama karşılaştırılabilir ise derin kas pleksus ICC kıyasla çok daha yoğun myenterik ICC.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışma, Ulusal Kanser Enstitüsü (K08CA140946, SK), (5F32CA130372, PC için), (R01CA102774 ve PB R01HL055748), Savunma Bakanlığı (YC etmek PC094302), GİST Araştırma Shuman Aile Fonu (için tarafından desteklenen PC) ve Starr Kanser Konsorsiyumu (PC, YC, CLS ve PB). Biz, Katia Manova, Ning Fan ve MSKCC Moleküler Sitoloji çekirdek tesisin Mesurh Türkekul cryosectioning ve immün yardım için teşekkür etmek istiyorum.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
rat anti-Kit antibody (clone ACK-2) eBioscience 14-1172 Use at 2μg/ml. Epitope is lost with overfixation.
rat anti-Kit antibody (clone ACK-4) Cedarlane CL8936AP Use at 2μg/ml.
rabbit anti-KIT antibody (clone D13A2) Cell Signaling 3074 Use at 1:100 dilution. Only antibody listed here that works well in paraffin sections.
rabbit anti-Pgp9.5 antibody Abcam ab10404 Labels neuronal cell cytoplasm. Useful for marking neurons of the myenteric plexus. Use at 1:1000 dilution.
rabbit anti-Ano1 antibody Abcam ab53212 Use at 2μg/ml
Alexa Fluor 594 goat anti-rat IgG Invitrogen A-11007 Use at 2μg/ml
Alexa Fluor 488 goat anti-rabbit IgG Invitrogen A-11008 Use at 2μg/ml
Animal Feeding Needle Fisher 01-208-87 Silicon tipped needle useful for flushing GI tract of adult mice
Blunt Needle Becton Dickison 305180 Blunt needle useful for flushing GI tract of pre-weaned pups
ProLong Gold antifade reagent with DAPI Invitrogen P-36931 May use alternative hard-setting mounting media with DAPI
Tissue-Tek Cryomold Tissue-Tek 4557  
Tissue-Tek O.C.T. Tissue-Tek 4583  
32% Paraformaldehyde (10ml sealed ampoule) EM Sciences 15714 Open sealed ampoule and dilute to 4% just before use
Blocking buffer     5% Goat serum, 0.1% Triton X-100 in PBS

References

  1. Sanders, K. M. A case for interstitial cells of Cajal as pacemakers and mediators of neurotransmission in the gastrointestinal tract. Gastroenterology. 111, 492-515 (1996).
  2. Ward, S. M., Sanders, K. M. Physiology and pathophysiology of the interstitial cell of Cajal: from bench to bedside. I. Functional development and plasticity of interstitial cells of Cajal networks. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 281, 602-611 (2001).
  3. Komuro, T. Structure and organization of interstitial cells of Cajal in the gastrointestinal tract. J Physiol. 576, 653-658 (2006).
  4. Sanders, K. M., Ordog, T., Koh, S. D., Torihashi, S., Ward, S. M. Development and plasticity of interstitial cells of Cajal. Neurogastroenterol Motil. 11, 311-338 (1999).
  5. Ward, S. M., Burns, A. J., Torihashi, S., Sanders, K. M. Mutation of the proto-oncogene c-kit blocks development of interstitial cells and electrical rhythmicity in murine intestine. J Physiol. 480, 91-97 (1994).
  6. Huizinga, J. D. W/kit gene required for interstitial cells of Cajal and for intestinal pacemaker activity. Nature. 373, 347-349 (1995).
  7. Rubin, B. P., Heinrich, M. C., Corless, C. L. Gastrointestinal stromal tumour. Lancet. 369, 1731-1741 (2007).
  8. Hirota, S. Gain-of-function mutations of c-kit in human gastrointestinal stromal tumors. Science. 279, 577-580 (1998).
  9. Chi, P. ETV1 is a lineage-specific survival factor in Gastrointestinal Stromal Tumour (GIST). Nature. , (2010).
  10. Kwon, J. G. Changes in the structure and function of ICC networks in ICC hyperplasia and gastrointestinal stromal tumors. Gastroenterology. 136, 630-639 (2009).
  11. Hwang, S. J. Expression of anoctamin 1/TMEM16A by interstitial cells of Cajal is fundamental for slow wave activity in gastrointestinal muscles. J Physiol. 587, 4887-4904 (2009).
  12. Gomez-Pinilla, P. J. Ano1 is a selective marker of interstitial cells of Cajal in the human and mouse gastrointestinal tract. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 296, G1370-G1381 (2009).
  13. Sommer, G. Gastrointestinal stromal tumors in a mouse model by targeted mutation of the Kit receptor tyrosine kinase. Proc Natl Acad Sci U S A. 100, 6706-6711 (2003).

Play Video

Cite This Article
Chen, Y., Shamu, T., Chen, H., Besmer, P., Sawyers, C. L., Chi, P. Visualization of the Interstitial Cells of Cajal (ICC) Network in Mice. J. Vis. Exp. (53), e2802, doi:10.3791/2802 (2011).

View Video