Summary

Las mediciones electrofisiológicas de un sistema olfativo Polilla

Published: March 29, 2011
doi:

Summary

Sistemas olfativos de insectos proporcionan oportunidades únicas para el registro de olor inducida por las respuestas en las formas de electroantennograms (EAG) y las grabaciones individuales sensillum (SSR), que se resumen las respuestas de todas las neuronas del receptor odorante (ORNs), ubicado en la antena y de los alojados en individuales sensilla, respectivamente.

Abstract

Sistemas olfativos de insectos proporcionan oportunidades únicas para el registro de olor inducida por las respuestas en las formas de electroantennograms (EAG) y las grabaciones individuales sensillum (SSR), que se resumen las respuestas de todas las neuronas del receptor odorante (ORNs), ubicado en la antena y de los alojados en individuales sensilla, respectivamente. Estos enfoques han sido explotados para obtener una mejor comprensión de la comunicación química de insectos. Los estímulos identificados se pueden utilizar como atrayentes o repelentes en las estrategias de gestión de plagas de insectos.

Protocol

1. Los insectos La naranja ombligo, Amyelois transitella (Walker) (Lepidoptera: Pyralidae) colonia en nuestro laboratorio se originó a partir de las polillas recogida de los almendros en Fresno, CA. Nuestra colonia de insectos se mantiene en el medio ambiente cámaras (Percival Inc, IA) a 28 ± 2 ° C, 75 ± 10% de humedad relativa, y en 16:8 h (luz: oscuridad) photo régimen. Polillas emergentes se recogen diariamente, sexo, y se transfieren a cajas de plástico (669 ml caja de almu…

Discussion

Este nuevo método desarrollado para la inmovilización de un ombligo en directo la polilla de la naranja para medir las señales olfativas ha demostrado ser sólido y muy fiable. Nosotros habitualmente utilizan este método para el aislamiento y la identificación de atrayentes novela a partir de sustratos huésped natural como las almendras y los pistachos.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Con el apoyo de USDA-NIFA/AFRI 2010-65105-20582, NSF 0918177, e incorporación Bedoukian investigación.

Materials

Material Name Catalogue #/Model Company Comment
Microscope BX51WI model Olympus, USA  
Stereo microscope MZ75 Leica Microsystems Inc. USA  
1.0 mm borosilicate capillary tubing with filament 1B100F-3 WPI Inc, FL  
Micropipette puller P-97 Sutter Instruments, CA  
Stimulus controller CS-55 model Syntech, Germany  
High Impedance pre-amplifiers
(Universal Single ended probe)
  Syntech, Germany  
Amplifier / data-acquisition system (USB-IDAC)   Syntech, Germany  
EAG Micromanipulator MP-12   Syntech, Germany  
(Z,Z)-11,13-hexadecadienal   Bedoukian Research Inc, CT.  
Whatman filter paper 1001070 Whatman USA  
5 mL polypropylene syringe 309633 BD Syringes, NJ  
pipette tip (200 μL) 1111-0806 USA Scientific Inc  
669 mL lunchbox,13 x 13 cm; height, 4.5 cm,   Rubbermaid  
Thirsty Ultra Absorbent, 27.9 x 27.9 cm   Safeway  
Non-drying clay 18150 Claytoon , Van Aken International, CA  
Environmental chamber I-30BLL model    

References

  1. Kaissling, K. -. E., Thorson, J., Sattelle, D. B., Hall, L. M., Hildebrand, J. G. Insect olfactory sensilla: structural, chemical and electrical aspects of the functional organization. Receptors for Neurotransmitters. Hormones and Pheromones in Insects. , 261-282 (1980).

Play Video

Cite This Article
Syed, Z., Leal, W. S. Electrophysiological Measurements from a Moth Olfactory System. J. Vis. Exp. (49), e2489, doi:10.3791/2489 (2011).

View Video