Gene Lieferung in Postnatale Rattengehirn von Non-ventrikuläre Plasmid Injektion und Elektroporation
Summary
Dieses Protokoll beschreibt eine nicht-virale Methode der Lieferung von Gen-Konstrukte zu einem bestimmten Bereich des Gehirns lebende Nagetier. Die Methode besteht aus Plasmid-Präparation, Mikropipette Fertigung, neugeborenen Ratten pup Chirurgie, Mikroinjektion des Konstrukts und<em> In vivo</em> Elektroporation.
Abstract
Erstellung von transgenen Tieren ist ein Standard-Ansatz bei der Untersuchung von Funktionen eines Gens von Interesse in vivo. Allerdings sind viele Knockout oder transgenen Tieren, die nicht in den Fällen, wo das modifizierte Gen exprimiert oder gelöscht wird in den gesamten Organismus lebensfähig. Darüber hinaus eine Vielzahl von Kompensationsmechanismen machen es oft schwierig, die Ergebnisse zu interpretieren. Die kompensatorische Effekte können entweder durch Timing der Genexpression oder die Begrenzung der Höhe von transfizierten Zellen vermindert werden.
Die Methode der postnatalen nicht ventrikuläre Mikroinjektion und in vivo Elektroporation ermöglicht die gezielte Verabreichung von Genen, siRNA oder Farbstoffmoleküle direkt auf eine kleine Region des Interesses an der neugeborenen Nagern Gehirn. Im Gegensatz zu herkömmlichen ventrikuläre Injektionstechnik ermöglicht diese Methode die Transfektion von nicht-wandernde Zelltypen. Tiere mit Hilfe der hier beschriebenen Methode transfiziert kann, zum Beispiel für Zwei-Photonen werden in-vivo-Bildgebung oder in elektrophysiologischen Experimenten an akuten Hirnschnitten.
Protocol
Discussion
Methoden der Gentransfer in lebende Nagetier Gehirn sind gut für die in utero Elektroporation 7,8,11,12 gegründet und seit kurzem auch für die postnatale Elektroporation 6. Allerdings sind diese Methoden auf intraventrikuläre Injektion der Plasmid-DNA, die für mehrere Anwendungen kann die Begrenzung basiert. Zum Beispiel, haben diese Methoden nicht zulassen, dass Targeting-Zellen in bestimmten Bereichen des Gehirns wie Hippocampus, noch die Transfektion von solchen nicht-wandernde Zel…
Acknowledgements
Wir danken Ekaterina Karelina für die Hilfe bei der Aufnahme Soundtrack für das Video, Ivan Molotkov für 3D-Animation und Dr. Peter Blaesse für CAG-EGFP Plasmid-Präparation.
Die Arbeit wurde durch Zuschüsse aus dem Zentrum für Internationale Mobilität von Finnland, Finnish Cultural Foundation und der Academy of Finland unterstützt.
Materials
| Material Name | Type | Company | Catalogue Number | Comment |
|---|---|---|---|---|
| 2A-sa dumb Tweezers, 115mm | equipment | XYtronic | XY-2A-SA | Treat with 70% ethanol for disinfection before use in surgical manipulations |
| Biological Temperature Controller with stainless steel heating pad | equipment | Supertech | TMP-5b | |
| Borosilicate tube with filament | material | Sutter Instruments | BF120-69-10 | Glass needle |
| Disposable drills | material | Meisinger | HP 310 104 001 001 008 | |
| Dulbeco’s PBS 10X | reagent | Sigma | D1408 | |
| Dumont #5 forceps, 110 mm | equipment | FST | 91150-20 | Treat with 70% ethanol for disinfection before use in surgical manipulations |
| Ealing microelectrode puller | equipment | Ealing | 50-2013 | Vertical electrode glass puller |
| Ethilon monofil polyamide 6-0 FS-3 16 mm 3/8c | material | Johnson & Johnson Medical | EH7177H | Surgical threads |
| Exmire micro syringe 10.0 ml | equipment | Exmire | MS*GLLX00 | Gas-tight syringe |
| Fast Green | reagent | Sigma | F7252 | |
| Forceps electrodes | equipment | BEX | LF650P3 | Treat with 70% ethanol for disinfection prior to use |
| Foredom drill control | equipment | Foredom | FM3545 | Surgical drill power supply and control. Currently available analogue is micromotor kit K.1070 (Foredom) |
| Foredom micro motor handpiece | equipment | Foredom | MH-145 | Currently available analogue is micromotor kit K.1070 (Foredom) |
| Gas anesthesia platform for mice | equipment | Stoelting | 50264 | Assembled on stereotaxic instrument |
| Isoflurane | reagent | Baxter | FDG9623 | |
| Micro dressing forceps, 105 mm | equipment | Aesculap | BD302R | Treat with 70% ethanol for disinfection before use in surgical manipulations |
| Microfil | material | WPI | MF34G-5 | Micro syringe filling capillaries |
| Mineral oil | reagent | Sigma | M8410 | |
| NanoFil Syringe 10 microliter | equipment | WPI | NANOFIL | Hamilton syringe |
| plasmid CAG-EGFP | reagent | Extracted and purified with EndoFree Plasmid Maxi Kit (Qiagen) and dissolved in nuclease free water to concentration 1.5 mg/ml | ||
| Pulse generator CUY21Vivo-SQ | equipment | BEX | CUY21Vivo-SQ | |
| Schiller electrode gel | reagent | Schiller AG | 2.158000 | Conductive gel |
| Small animal stereotaxic instrument | equipment | David Kopf Instruments | 900 | |
| Stoelting mouse and neonatal rat adaptor | equipment | Stoelting | 51625 | Assembled on stereotaxic instrument. Treat earbars with 70% ethanol for disinfection before use in surgical manipulations |
| Student iris scissors, straight 11.5 cm | equipment | FST | 91460-11 | Treat with 70% ethanol for disinfection before use in surgical manipulations |
| Sugi absorbent swabs 17 x 8 mm | material | Kettenbach | 31602 | Surgical tampons |
| UMP3 microsyringe pump and Micro 4 microsyringe pump controller | equipment | WPI | UMP3-1 | Microinjector and controller |
| Univentor 400 Anesthesia Unit | equipment | Univentor | 8323001 |
References
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