Cette méthode a été utilisée dans la recherche présentée dans Briggs et al., Science 325 (5938). 318-321 (2009) . Réactifs nécessaires: Polymérase AmpliTaq ADN d'or 10x GeneAmp PCR Buffer II MgCl 2 25 mM mélange de dNTP, 25 mM de chaque BSA, 10 mg ml-1 dans l'eau Biologie moléculaire de qualité de l'eau EB tampon (fourni avec le kit MinElute PCR Purification), 10 mM Tris HCl, pH 8,5 Kit MinElute PCR Purification M-270 streptavidine Dynabeads 2x reliure et de lavage (BW) tampon (2 M de NaCl, 10 mM Tris-Cl, EDTA 1 mM, pH 8,0, 0,2% Tween 20) 1x reliure et de lavage (BW) tampon (2x BindWash tampon dilué dans de l'eau 2X) Laver à chaud (HW) tampon (2,5 mM MgCl, 1X Taq Or tampon, 0,1% Tween 20) Pour plus d'informations concernant la non-fabricant de réactifs et du matériel standard de voir plus loin tableau. Bibliothèque d'amplification 1) La matrice d'ADN est ici une bibliothèque 454 prêts d'une source de copies d'ADN faible nombre tel que décrit dans (Rohland et Hofreiter, 2007a, 2007b) et (Maricic et Pääbo, 2009). Pour amplifier la bibliothèque entière, préparer le mélange de PCR suivant: Réactifs ul par la réaction Eau 45 Gene Amp PCR 10X tampon II 10 MgCl 2 (25mm) 10 BSA (10 mg / ml) 2 dNTP (25 mM chacun) 1 454 emPCR fwd primer/10uM 3 454 emPCR rvs primer/10uM 3 L'ADN polymérase AmpliTaq Gold (5 U / pl) 1 454 modèle de banque d'ADN 25 Total des 100 Utilisez le programme suivant PCR dans un cycleur thermique pour 14 d'amplification des cycles 95 ° C 12min 95 ° C 30s 60 ° C (température de recuit ou désiré) 1 min 72 ° C 1 min Aller à 2 (x 13) 72 ° C 5min 10 ° C ∞ Purifier la réaction sur une colonne Qiagen MinElute conformément aux instructions du fabricant. Eluer dans 50 pi de tampon EB. Quantifier le produit purifié amplifiée ainsi que d'une partie aliquote de la bibliothèque non amplifié par qPCR (Meyer et al., 2007). Si le produit amplifié a plus de 1 X 10 12 copies par UL, réduire la quantité de modèle dans l'étape d'extension d'amorces suivantes pour s'assurer que pas plus de 2 X 10 12 copies sont ajoutés à la réaction extension d'amorce. Extension d'amorce 2) Préparer un master mix pour le nombre requis de réactions. Réactifs ul par la réaction Eau 45 Gene Amp PCR 10X tampon II 10 MgCl 2 (25mm) 10 BSA (10 mg / ml) 2 dNTP (25 mM chacun) 1 454 emPCR fwd primer/10uM 3 454 emPCR rvs primer/10uM 3 L'ADN polymérase AmpliTaq Gold (5 U / pl) 1 454 modèle de banque d'ADN 25 Total des 100 Exécutez le programme suivant dans un thermocycleur pour la réaction d'extension d'amorces unique: 95 ° C 12min 60 ° C (ou votre apprêt PEC recuit température si différente) 1 min 72 ° C 5 min 72 ° C pour toujours! ÉTAPE CRITIQUE Gardez réaction après l'extension à 72 ° C. Puis directement pipette 150ul PBI ou PB tampon pour QIAGEN MinElute de purification dans les tubes avant de retirer le bloc thermique. Ceci est important pour éviter la non-amorce spécifique de recuit et de capturer que le mélange refroidit. Purifier la réaction sur une colonne Qiagen MinElute, conformément aux instructions du fabricant. Eluer dans 50 EB ul. 3) la capture de produits d'extension Solution stock Resuspendre de M-270 billes par vortex. Sortez 25 ul de suspension de billes par échantillon. Laver les billes à deux reprises avec 500ul de tampon 2x BW et remettre en suspension dans 25 ul de tampon 2xBW par échantillon. Ajouter 25 ul éluat de l'étape de 2,3 à 25 pi de suspension de billes étape 3.1. Mélangez puis faites pivoter pour 15 min à température ambiante. Recommandés: conserver restante de 5 ul de l'éluat de l'étape 2.3 pour la quantification par qPCR. Transférer le mélange dans son ensemble à un nouveau tube de 1.5ml (cela permet de réduire l'entraînement des fragments de bibliothèque non-cible). Pellet le surnageant en utilisant le collecteur de particules magnétiques (MPC) et jeter le surnageant. Laver 5 fois avec 500 ul de tampon 1xBW (nombreux lavages aider à enlever le fond autant que possible). Après la dernière étape de lavage, centrifuger brièvement et éliminer les dernières traces de surnageant. Ajouter 500μl 1x chaud Laver (HW) tampon. Agiter pendant 2 min à 65 ° C (ou 5C-dessus de la Tm PEC amorce) sur un bloc thermique. Retirer le surnageant rapidement après cela, afin de minimiser le refroidissement. (Cette étape est d'enlever des fragments de fond reste associé à des amorces PEC, mais pas vraiment étendu sur le cours de l'étape d'extension). Enlevez les dernières traces de surnageant. Reprendre le culot de billes dans 30 ul de tampon EB. Transférer le mélange dans son ensemble à un nouveau tube de 1.5ml (cela permet de réduire l'entraînement des fragments de bibliothèque non-cible). Incuber à 95 ° C pendant 3 minutes dans un cycleur thermique pour l'élution. Placer dans les PPM et retirer le surnageant, en prenant soin de laisser les billes. 4) Capture d'amplification produit Préparer un master mix PCR pour le nombre requis d'échantillons. Réactifs ul par la réaction Eau 45 Gene Amp PCR 10X tampon II 10 MgCl 2 (25mm) 10 BSA (10 mg / ml) 2 dNTP (25 mM chacun) 1 454 emPCR fwd primer/10uM 3 454 emPCR rvs primer/10uM 3 L'ADN polymérase AmpliTaq Gold (5 U / pl) 1 Produit de capture élué 25 Total des 100 Utilisez le programme suivant PCR dans un cycleur thermique pour 14 d'amplification des cycles: 95 ° C 12min 95 ° C 30s 60 ° C (température de recuit ou désiré) 1 min 72 ° C 1 min Aller à 2 (x 13) 72 ° C 5min 10 ° C ∞ Purifier la réaction sur une colonne Qiagen MinElute tour de silice selon les instructions du fabricant. Eluer dans 50 ul de tampon EB. Le produit peut être désormais utilisé soit pour un second tour de la capture, à partir de l'étape 2.1, ou entrés directement dans le protocole d'émulsion 454 PCR, pour le séquençage. Les résultats représentatifs: Il est fortement recommandé lors du démarrage avec le protocole PEC à effectuer d'abord une réaction de capture où une petite quantité d'une «séquence cible de maîtrise de positif» (par exemple un ~ 100pb produit PCR – 1 picogramme est assez facilement) est mélangée avec la normale recommandée quantité de 454 amplifié modèle de bibliothèque (voir l'étape 2.1), et la capture est effectuée avec une seule amorce PEC conçu pour capturer le produit de contrôle positif. Si cette réaction de contrôle est effectué, à la fois avec qPCR contrôle positif spécifiques et 454 paires adaptateur amorce spécifique peut être utilisé pour quantifier le montant des «cibles de contrôle» par rapport au fond dans la réaction d'extension d'amorces purifiées (1,3), le produit d'extension d'amorces (2,3 ) et on élue produit de la capture billes (3,6). De cette façon, à la fois l'efficacité de la suppression du fond (la «spécificité») et l'efficacité de la récupération cible («sensibilité») dans votre conditions expérimentales peuvent être mesurées directement. Un succès PEC protocole a normalement les propriétés suivantes – Sensibilité (mesurée par le montant de la cible de maîtrise retenus par le protocole): Montant total de la cible de contrôle dans la capture des produits élués billes (3,6) = ~ 1-20% du montant total de la réaction d'extension d'amorces purifiées (2,3). Contexte (mesurée par 454 paire d'amorces emPCR): Montant total de l'expérience dans la capture des produits élués billes (3,6) <0,01% du montant total en réaction amorce d'extension purifiée (2,3). S'il ya moins de 1% de l'objectif restant dans le produit final, l'étape d'extension d'amorces peuvent avoir été infructueuse et devrait être étudiée. Si il ya beaucoup plus de 0,01% de l'arrière-plan restant dans le produit final, les étapes de lavage peuvent avoir été incorrectement effectuée et devrait être étudiée.