Summary

Tre strategier för att inducera neurotrofisk keratit och nervregenerering i murin hornhinna

Published: December 08, 2023
doi:

Summary

Här föreslår vi tre olika metoder för att skada de sensoriska fibrerna som innerverar hornhinnan. Dessa metoder underlättar studier av axonregenerering hos möss. Dessa tre metoder, som är anpassningsbara till andra djurmodeller, är idealiska för studier av hornhinnans innervationsfysiologi och regenerering.

Abstract

Hornhinnan är en genomskinlig vävnad som täcker ögat och är avgörande för klar syn. Det är den mest innerverade vävnaden i kroppen. Denna innervation ger känsel och trofisk funktion till ögat och bidrar till att bevara hornhinnans integritet. Den patologiska störningen av denna innervation kallas neurotrofisk keratit. Detta kan utlösas av skada på ögat, operation eller sjukdom. I denna studie föreslår vi tre olika protokoll för att tillfoga skada på innernervationen på ett sätt som rekapitulerar de tre typer av fall som vanligtvis förekommer i kliniken.

Den första metoden består i att göra en nötning av epitelet med en oftalmisk burr. Detta innebär avlägsnande av epitelskiktet, de fria nervändarna och den subbasala plexus på ett sätt som liknar den fotorefraktiva keratektomioperationen som utförs på kliniken. Den andra metoden riktar sig endast mot innervationen genom att snitta den i periferin med en biopsistans, vilket bibehåller epitelets integritet. Denna metod liknar de första stegen i lamellär keratoplastik och leder till en degeneration av innervationen följt av återväxt av axonerna i den centrala hornhinnan. Den sista metoden skadar innervationen av en transgen musmodell med hjälp av ett multifotonmikroskop, som specifikt lokaliserar platsen för kauterisering av de fluorescerande nervfibrerna. Denna metod orsakar samma skada som fotokeratit, en överexponering för UV-ljus.

Denna studie beskriver olika alternativ för att undersöka fysiopatologin vid hornhinnans innervation, särskilt degeneration och regenerering av axonerna. Att främja regenerering är avgörande för att undvika sådana komplikationer som epiteldefekter eller till och med perforering av hornhinnan. De föreslagna modellerna kan hjälpa till att testa nya farmakologiska molekyler eller genterapi som förbättrar nervregenerering och begränsar sjukdomsprogression.

Introduction

Hornhinnan, som är ögats genomskinliga yta, består av tre distinkta lager: epitelet, stromat och endotelet. Detta organ har den högsta tätheten av innervation i kroppen och består huvudsakligen av sensoriska fibrer (typ Aδ och C) som härrör från den oftalmiska grenen av trigeminusgangliet. Sensoriska fibrer tränger in i hornhinnans periferi i mitten av stromat i form av stora knippen som förgrenar sig för att täcka ytan. De förgrenar sig sedan för att tränga igenom Bowmanns membran och bildar den subbasala plexus, som är lätt att känna igen genom bildandet av en virvel i mitten av hornhinnan. Dessa fibrer slutar som fria nervändar på epitelets yttre yta. De kan överföra termiska, mekaniska och kemiska stimuli och frigöra trofiska faktorer som är väsentliga för epitelhomeostas 1,2. Neurotrofisk keratit (NK) är en degenerativ sjukdom som påverkar hornhinnans sensoriska innervation. Denna sällsynta sjukdom härrör från en minskning eller förlust av hornhinnans känslighet som resulterar i lägre tårproduktion och dåliga läkande egenskaper hos hornhinnan3. NK utvecklas genom tre väl beskrivna stadier, från stadium 1 där patienter drabbas av epiteldefekter, till stadium 3 där stromasmältning och/eller hornhinneperforering sker4.

Kliniskt kan ursprunget till denna sjukdom vara olika. Patienter kan förlora hornhinnans innervation efter fysisk skada på ögat, kirurgi eller genom kroniska sjukdomar, såsom diabetes 5,6. Hittills är NK-patogenesprocessen fortfarande dåligt förstådd, och terapeutiska alternativ för detta synhotande tillstånd är mycket begränsade. Därför behövs en bättre förståelse för egenskaperna hos epiteldefekter för att bättre förstå mekanismerna bakom regenereringen av dessa fibrer och potentiellt främja dem. Här föreslår vi flera modeller av hornhinneskador som inducerar NK hos möss.

Den första modellen är nötning av hornhinnans epitelskikt med en okulär borr. Denna modell har främst studerats i samband med regenerering av epitelet hos olika djur, såsom gnagare och fiskar 7,8,9, och för att testa molekyler som främjar hornhinnans läkning10,11. Fysiologiskt tar det 2-3 dagar för epitelcellerna att stänga såret. Det fysiologiska mönstret för innervationen tar dock mer än fyra veckor att återhämta sig från nötningen12,13. Under operationen tar den okulära borren bort hornhinnans epitelskikt som innehåller subbasal plexus och fibrernas fria nervändar. Denna procedur kan kliniskt jämföras med patienter med fotorefraktiv keratektomi (PRK) för att korrigera ögonbrytningsdefekter. Proceduren består av att ta bort hornhinnans epitel och sedan omforma stromat med en laser14. Patienter kan uppleva flera biverkningar efter sådan operation, såsom en minskning av hornhinnans nervtäthet i 2 år och en minskning av känsligheten under en period av 3 månader till ett år efter operationen15. Med tanke på att operationen inducerar en bräcklighet i hornhinnans mikromiljö, kan denna modell hjälpa till att undersöka dessa biverkningar och utveckla terapeutiska metoder som skulle främja snabbare reinnervering och därmed minska biverkningarna i fråga.

Den andra modellen består av att snitta axonerna i hornhinnans periferi med en biopsistans, vilket inducerar en wallersk degeneration av den centrala innervationen 16. Kliniskt kan denna metod jämföras med främre lamellär keratoplastik, där kirurgen realiserar en partiell trepanering av hornhinnan för att ta bort en del av hornhinnans främre tjocklek och ersätta den med en donatortransplantation 17. Efter lamellär keratoplastik kan patienter drabbas av ett antal symtom, inklusive torra ögon, förlust av hornhinneinnervation och transplantatavstötning18. Denna axotomimodell utförd på hornhinnans nerver kan ge insikt i mekanismerna för fiberdegeneration, som sker efter ett transplantat, följt av axonernas regenerering.

Den tredje metoden skadar hornhinnans nerver med laser. Genom att använda ett multifotonmikroskop på hornhinnan hos sövda djur induceras degeneration av nerverna lokaliserade i det optiska fältet som ett resultat av bildning av reaktiva syrearter (ROS), vilket leder till DNA-skador och cellulära kavitationer19. Denna metod rekapitulerar hornhinnans fotoskada som induceras av överexponering för naturlig UV (solbränna), vilket också utlöser ROS-bildning, vilket leder till DNA-skador20. Patienter som lider av solbränna på hornhinnan upplever stor smärta, eftersom försämringen av epitelcellerna berövar hornhinnans extremiteter allt.

De tre metoderna som beskrivs här är utformade för att möjliggöra undersökning av NK-patogenesprocessen och axonregenerering. De är lätta att reproducera och exakta. Dessutom möjliggör de snabb återhämtning och enkel övervakning av djuren.

Protocol

Alla försök godkändes av Statens Djurförsöksnämnd. 1. Förberedelser Bered en bedövningslösning av ketamin-xylazin för anestesi. Injicera ketamin 80 mg/kg och xylazin 10 mg/kg genom spädning av 200 μl ketamin (100 mg/ml) och 125 μl xylazin (20 mg/ml) i 2 175 ml steril 0,9 % NaCl. Bered 0,02 mg/ml buprenorfinlösning som smärtstillande lösning genom att tillsätta 100 μl 0,3 mg/ml buprenorfin till 1 400 ml steril 0,9 % NaCl. <li…

Representative Results

Denna studie föreslår flera protokoll för att tillfoga skador på hornhinnans innervation hos möss. Medan liknande protokoll har använts för att undersöka fysiopatologin för läkning av epitelet, valde vi att anpassa och utveckla nya metoder för att undersöka regenerering av hornhinnans innerver. För att observera innervationen använde vi två tekniker. Först använde vi en immunofluorescensteknik för att färga nervfibrerna med hjälp av en panneuronal antikropp (BIII tubulin) och kärnorna med en interkal…

Discussion

Neurotrofisk keratit anses vara en sällsynt sjukdom som drabbar 5 av 10 000 individer. Personer som lider av NK på grund av en fysisk skada, t.ex. kemiska brännskador, eller syndrom som diabetes eller multipel skleros ingår dock inte i denna statistik. Dessutom är detta tillstånd fortfarande kraftigt underdiagnostiserat22, och förekomsten av sjukdomen är underskattad. Det finns ett stort behov av nya behandlingar och terapier som skulle främja axonregenerering som …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna tackar Dr. Karine Loulier för tillgången till den transgena muslinjen MAGIC-Markers. Författarna tackar också RAM-Neuro animal core facility och imaging facility MRI, en medlem av den nationella infrastrukturen France-BioImaging som stöds av den franska nationella forskningsbyrån (ANR-10-INBS-04, “Investments for the future”). Denna forskning stöddes av ATIP-Avenir-programmet, Inserm, Région Occitanie, universitetet i Montpellier, den franska nationella forskningsbyrån (ANR-21-CE17-0061), Fondation pour la Recherche Médicale (FRM Regenerative Medicine, REP202110014140) och Groupama Foundation.

Materials

0.2 µm seringe filter CLEARLINE 51733
0.5 mm rust ring remover Alger Equipment Company BU-5S
2 mL plastic tubes Eppendrof  30120094
Algerbrush burr, Complete instrument Alger Equipment Company BR2-5
Anti-beta III Tubulin antibody Abcam ab18207
Antigenfix Diapath P0016
Artificial tear Larmes artificielles Martinet N/A
Buprecare Animalcare N/A
Cotton swab Any provider N/A
Dissecting tools Fine Science Tools N/A
Fluorescein Merck 103887
Gelatin from cold water fish skin Sigma G7765
Goat serum Merck S26
Head Holder Narishige SGM 4
Heated plate BIOSEB LAB instruments BIO-HE002
Hoechst 33342 Thermo Fisher Scientific H3570
Imalgene 1000 BOEHRINGER INGELHEIM ANIMAL HEALTH France N/A French marketing authorization numbre: FR/V/0167433 4/1992
LAS X software Leica N/A Large volume computational clearing (LVCC) process
Laser Chameleon Ultra II Coherent N/A
Laser power meter Coherent N/A
Leica Thunder Imager Tissue microscope Leica N/A
Multi-photon Zeiss LSM 7MP upright microscope Zeiss N/A
Ocry-gel TVM lab N/A
Parametric oscillator Coherent N/A
Penlights with blue cobalt filtercap Bernell ALPEN
Petri dish Thermo Scientific 150318 Axotomy protocol
Petridish Thermo Scientific 150288 Cornea whole-mount processing
Rompun 2% Elanco N/A French marketing authorization numbre: FR/V/8146715 2/1980
Sterile biopsy punch 2.5 mm LCH medical LCH-PUK-25
Triton X-100 VWR 0694
Vectashield EuroBioSciences H-1000 Mounting medium

Referências

  1. Marfurt, C. F., Cox, J., Deek, S., Dvorscak, L. Anatomy of the human corneal innervation. Exp Eye Res. 90 (4), 478-492 (2010).
  2. Al-Aqaba, M. A., Dhillon, V. K., Mohammed, I., Said, D. G., Dua, H. S. Corneal nerves in health and disease. Prog Retin Eye Res. 73, 100762 (2019).
  3. Dua, H. S., et al. Neurotrophic keratopathy. Prog Retin Eye Res. 66, 107-131 (2018).
  4. Bonini, S., Rama, P., Olzi, D., Lambiase, A. Neurotrophic keratitis. Eye. 17 (8), 989-995 (2003).
  5. Barrientez, B., et al. Corneal Injury: Clinical and molecular aspects. Exp Eye Res. 186, 107709 (2019).
  6. Willmann, D., Fu, L., Melanson, S. W. Corneal Injury. StatPearls. , (2023).
  7. Kalha, S., et al. Bmi1+ progenitor cell dynamics in murine cornea during homeostasis and wound healing. Stem Cells. 36 (4), 562-573 (2018).
  8. Park, J. W., et al. Potential roles of nitrate and nitrite in nitric oxide metabolism in the eye. Sci Rep. 10 (1), 13166 (2020).
  9. Ikkala, K., Stratoulias, V., Michon, F. Unilateral corneal insult in Zebrafish results in a bilateral cell shape and identity modification, supporting wound closure. bioRxiv. , (2021).
  10. Yang, L., et al. Substance P promotes diabetic corneal epithelial wound healing through molecular mechanisms mediated via the Neurokinin-1 receptor. Diabetes. 63 (12), 4262-4274 (2014).
  11. Zhao, W., He, X., Liu, R., Ruan, Q. Accelerating corneal wound healing using exosome-mediated targeting of NF-κB c-Rel. Inflamm Regen. 43 (1), 6 (2023).
  12. Downie, L. E., et al. Recovery of the sub-basal nerve plexus and superficial nerve terminals after corneal epithelial injury in mice. Exp Eye Res. 171, 92-100 (2018).
  13. He, J., Pham, T. L., Kakazu, A. H., Bazan, H. E. P. Remodeling of substance P sensory nerves and transient receptor potential melastatin 8 (TRPM8) cold receptors after corneal experimental surgery. Invest Ophthalmol Vis Sci. 60 (7), 2449-2460 (2019).
  14. Bandeira, F., Yusoff, N. Z., Yam, G. H. -. F., Mehta, J. S. Corneal reinnervation following refractive surgery treatments. Neural Regen Res. 14 (4), 557-565 (2019).
  15. Erie, J. C., McLaren, J. W., Hodge, D. O., Bourne, W. M. Recovery of corneal subbasal nerve density after PRK and LASIK. Am J Ophthalmol. 140 (6), 1059-1064.e1 (2005).
  16. Coleman, M. P., Freeman, M. R. Wallerian degeneration, WldS, and Nmnat. Annu Rev Neurosci. 33, 245-267 (2010).
  17. Arenas, E., Esquenazi, S., Anwar, M., Terry, M. Lamellar corneal transplantation. Surv Ophthalmol. 57 (6), 510-529 (2012).
  18. Niederer, R. L., Perumal, D., Sherwin, T., McGhee, C. N. J. Corneal innervation and cellular changes after corneal transplantation: An in vivo confocal microscopy study. Invest Ophthalmol Vis Sci. 48 (2), 621-626 (2007).
  19. Icha, J., Weber, M., Waters, J. C., Norden, C. Phototoxicity in live fluorescence microscopy, and how to avoid it. BioEssays. 39 (8), 1700003 (2017).
  20. Volatier, T., Schumacher, B., Cursiefen, C., Notara, M. UV protection in the cornea: Failure and rescue. Biologia. 11 (2), 278 (2022).
  21. Loulier, K., et al. Multiplex cell and lineage tracking with combinatorial labels. Neuron. 81 (3), 505-520 (2014).
  22. Dana, R., et al. Expert consensus on the identification, diagnosis, and treatment of neurotrophic keratopathy. BMC Ophthalmol. 21 (1), 327 (2021).
  23. Matsumoto, Y., et al. Autologous serum application in the treatment of neurotrophic keratopathy. Ophthalmology. 111 (6), 1115-1120 (2004).
  24. Bonini, S., et al. Phase II randomized, double-masked, vehicle-controlled trial of recombinant human nerve growth factor for neurotrophic keratitis. Ophthalmology. 125 (9), 1332-1343 (2018).
  25. Aggarwal, S., Colon, C., Kheirkhah, A., Hamrah, P. Efficacy of autologous serum tears for treatment of neuropathic corneal pain. Ocul Surf. 17 (3), 532-539 (2019).
  26. Singh, N. P., Said, D. G., Dua, H. S. Lamellar keratoplasty techniques. Indian J Ophthalmol. 66 (9), 1239-1250 (2018).
  27. Gautier, B., et al. AAV2/9-mediated gene transfer into murine lacrimal gland leads to a long-term targeted tear film modification. Mol Ther Methods Clin Dev. 27, 1-16 (2022).
check_url/pt/66182?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Meneux, L., Caballero, A., Boukhaddaoui, H., Michon, F. Three Strategies to Induce Neurotrophic Keratitis and Nerve Regeneration in Murine Cornea. J. Vis. Exp. (202), e66182, doi:10.3791/66182 (2023).

View Video