Summary

Три стратегии индуцирования нейротрофического кератита и регенерации нервов в роговице мыши

Published: December 08, 2023
doi:

Summary

Здесь мы предлагаем три различных метода повреждения сенсорных волокон, иннервирующих роговицу. Эти методы облегчают изучение регенерации аксонов у мышей. Эти три метода, которые могут быть адаптированы к другим животным моделям, идеально подходят для изучения физиологии и регенерации иннервации роговицы.

Abstract

Роговица представляет собой прозрачную ткань, которая покрывает глаз и имеет решающее значение для четкого зрения. Это самая иннервируемая ткань в организме. Эта иннервация обеспечивает чувствительность и трофическую функцию глаза и способствует сохранению целостности роговицы. Патологическое нарушение этой иннервации называется нейротрофическим кератитом. Это может быть вызвано травмой глаза, хирургическим вмешательством или заболеванием. В этом исследовании мы предлагаем три различных протокола для нанесения повреждений иннервации способами, которые повторяют три типа случаев, обычно встречающихся в клинике.

Первый способ заключается в том, чтобы сделать шлифовку эпителия глазным бором. Это включает в себя удаление эпителиального слоя, свободных нервных окончаний и суббазального сплетения способом, аналогичным операции фоторефракционной кератэктомии, выполняемой в клинике. Второй метод нацелен только на иннервацию, разделяя ее по периферии с помощью биопсийного пуансона, сохраняя целостность эпителия. Этот метод аналогичен первым этапам поклеточной кератопластики и приводит к дегенерации иннервации с последующим отрастанием аксонов в центральной части роговицы. Последний метод повреждает иннервацию трансгенной мышиной модели с помощью многофотонного микроскопа, который специфически локализует место прижигания флуоресцентных нервных волокон. Этот метод наносит тот же вред, что и фотокератит, чрезмерное воздействие ультрафиолета.

В данном исследовании описаны различные варианты изучения физиопатологии иннервации роговицы, в частности, дегенерации и регенерации аксонов. Стимуляция регенерации имеет решающее значение для предотвращения таких осложнений, как дефекты эпителия или даже перфорация роговицы. Предложенные модели могут помочь в тестировании новых фармакологических молекул или генной терапии, которые усиливают регенерацию нервов и ограничивают прогрессирование заболевания.

Introduction

Роговица, которая представляет собой прозрачную поверхность глаза, состоит из трех отдельных слоев: эпителия, стромы и эндотелия. Этот орган имеет самую высокую плотность иннервации в организме и состоит в основном из сенсорных волокон (типов Аδ и С), берущих начало от глазной ветви тройничного ганглия. Сенсорные волокна проникают на периферию роговицы в середине стромы в виде больших пучков, которые разветвляются, покрывая поверхность. Затем они раздваиваются, чтобы пронзить мембрану Боумана и сформировать суббазальное сплетение, которое легко распознать по образованию вихря в центре роговицы. Эти волокна оканчиваются свободными нервными окончаниями на наружной поверхности эпителия. Они способны преобразовывать тепловые, механические и химические раздражители и высвобождать трофические факторы, необходимые для гомеостаза эпителия 1,2. Нейротрофический кератит (НК) – это дегенеративное заболевание, поражающее сенсорную иннервацию роговицы. Это редкое заболевание возникает из-за снижения или потери чувствительности роговицы, что приводит к снижению слезообразования и плохим заживляющим свойствам роговицы3. НК прогрессирует через три хорошо описанные стадии: от стадии 1, когда пациенты страдают от дефектов эпителия, до стадии 3, когда происходит расплавление стромы и/или перфорация роговицы4.

Клинически происхождение этого заболевания может быть разнообразным. Пациенты могут потерять иннервацию роговицы после физической травмы глаза, хирургического вмешательства или из-за хронических заболеваний, таких как диабет 5,6. На сегодняшний день процесс патогенеза НК остается малоизученным, а терапевтические возможности для этого угрожающего зрению состояния очень ограничены. Таким образом, необходимо лучшее понимание характеристик дефектов эпителия, чтобы лучше понять механизмы, лежащие в основе регенерации этих волокон и потенциально способствовать их развитию. В данной работе мы предлагаем несколько моделей повреждения роговицы, которые индуцируют НК у мышей.

Первая модель – истирание эпителиального слоя роговицы глазным бором. Эта модель в основном изучалась в контексте регенерации эпителия у различных животных, таких как грызуны и рыбы 7,8,9, а также для тестирования молекул, способствующих заживлению роговицы10,11. Физиологически эпителиальным клеткам требуется 2-3 дня, чтобы закрыть рану. Физиологическая картина иннервации, однако, требует более четырех недель, чтобы восстановиться после истирания12,13. Во время операции глазной бор удаляет эпителиальный слой роговицы, который содержит суббазальное сплетение и свободные нервные окончания волокон. Эту процедуру клинически можно сравнить с процедурой пациентов с фоторефракционной кератэктомией (ФРК) для коррекции дефектов рефракции глаза. Процедура заключается в удалении эпителия роговицы с последующим изменением формы стромы с помощью лазера14. Пациенты могут испытывать несколько побочных эффектов после такой операции, таких как снижение плотности роговичных нервов в течение 2 лет и снижение чувствительности в течение периода от 3 месяцев до одного годапосле операции. Учитывая, что операция вызывает хрупкость микроокружения роговицы, эта модель может помочь исследовать эти побочные эффекты и разработать терапевтические подходы, которые будут способствовать более быстрой реиннервации, тем самым уменьшая рассматриваемые побочные эффекты.

Вторая модель состоит в секционировании аксонов на периферии роговицы с помощью биопсийного пуансона, индуцируя валлерову дегенерацию центральной иннервации 16. Клинически этот метод можно сравнить с передней послойной кератопластикой, при которой хирург осуществляет частичную трепанацию роговицы для удаления части передней толщины роговицы и замены ее донорским трансплантатом 17. После послойной кератопластики пациенты могут страдать от ряда симптомов, включая сухость глаз, потерю иннервации роговицы и отторжение трансплантата18. Эта модель аксотомии, выполненная на нервах роговицы, может дать представление о механизмах дегенерации волокон, которая происходит после трансплантата с последующей регенерацией аксонов.

Третий метод повреждает нервы роговицы лазером. При использовании многофотонного микроскопа на роговице животных, находящихся под наркозом, индуцируется дегенерация нервов, локализованных в оптическом поле, в результате образования активных форм кислорода (АФК), что приводит к повреждению ДНК и клеточной кавитации19. Этот метод повторяет фотоповреждение роговицы, вызванное чрезмерным воздействием естественного ультрафиолета (солнечный ожог), которое также вызывает образование АФК, что приводит к повреждению ДНК20. Пациенты, страдающие солнечными ожогами роговицы, испытывают сильную боль, так как разрушение эпителиальных клеток лишает конечности роговичных волокон.

Три метода, описанные здесь, предназначены для исследования процесса патогенеза НК и регенерации аксонов. Они легко воспроизводимы и точны. Кроме того, они позволяют быстро восстанавливаться и легко следить за животными.

Protocol

Все эксперименты были одобрены Национальным советом по экспериментам на животных. 1. Подготовка Приготовьте обезболивающий раствор кетамина-ксилазина для анестезии. Вводят кетамин в дозе 80 мг/кг и ксилазин в дозе 10 мг/кг, разбавляя 200 мкл кетамина (100 мг/мл) и…

Representative Results

В этом исследовании предлагается несколько протоколов для нанесения повреждений иннервации роговицы у мышей. Несмотря на то, что подобные протоколы использовались для изучения физиопатологии заживления эпителия, мы решили адаптировать и разработать новые методы исследования регене…

Discussion

Нейротрофический кератит считается редким заболеванием, поражающим 5 из 10 000 человек. Однако люди, страдающие от НК из-за физических травм, таких как химические ожоги, или синдромов, таких как диабет или рассеянный склероз, не включены вэти статистические данные. Кроме того, …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы благодарят доктора Карин Лулье за доступ к трансгенной мышиной линии MAGIC-Markers. Авторы также выражают признательность центру RAM-Neuro и центру визуализации MRI, входящему в национальную инфраструктуру France-BioImaging при поддержке Французского национального исследовательского агентства (ANR-10-INBS-04, «Инвестиции в будущее»). Это исследование было поддержано программой ATIP-Avenir, Inserm, Région Occitanie, Университетом Монпелье, Французским национальным исследовательским агентством (ANR-21-CE17-0061), Фондом регенеративной медицины (FRM Regenerative Medicine, REP202110014140) и Фондом Groupama.

Materials

0.2 µm seringe filter CLEARLINE 51733
0.5 mm rust ring remover Alger Equipment Company BU-5S
2 mL plastic tubes Eppendrof  30120094
Algerbrush burr, Complete instrument Alger Equipment Company BR2-5
Anti-beta III Tubulin antibody Abcam ab18207
Antigenfix Diapath P0016
Artificial tear Larmes artificielles Martinet N/A
Buprecare Animalcare N/A
Cotton swab Any provider N/A
Dissecting tools Fine Science Tools N/A
Fluorescein Merck 103887
Gelatin from cold water fish skin Sigma G7765
Goat serum Merck S26
Head Holder Narishige SGM 4
Heated plate BIOSEB LAB instruments BIO-HE002
Hoechst 33342 Thermo Fisher Scientific H3570
Imalgene 1000 BOEHRINGER INGELHEIM ANIMAL HEALTH France N/A French marketing authorization numbre: FR/V/0167433 4/1992
LAS X software Leica N/A Large volume computational clearing (LVCC) process
Laser Chameleon Ultra II Coherent N/A
Laser power meter Coherent N/A
Leica Thunder Imager Tissue microscope Leica N/A
Multi-photon Zeiss LSM 7MP upright microscope Zeiss N/A
Ocry-gel TVM lab N/A
Parametric oscillator Coherent N/A
Penlights with blue cobalt filtercap Bernell ALPEN
Petri dish Thermo Scientific 150318 Axotomy protocol
Petridish Thermo Scientific 150288 Cornea whole-mount processing
Rompun 2% Elanco N/A French marketing authorization numbre: FR/V/8146715 2/1980
Sterile biopsy punch 2.5 mm LCH medical LCH-PUK-25
Triton X-100 VWR 0694
Vectashield EuroBioSciences H-1000 Mounting medium

Referências

  1. Marfurt, C. F., Cox, J., Deek, S., Dvorscak, L. Anatomy of the human corneal innervation. Exp Eye Res. 90 (4), 478-492 (2010).
  2. Al-Aqaba, M. A., Dhillon, V. K., Mohammed, I., Said, D. G., Dua, H. S. Corneal nerves in health and disease. Prog Retin Eye Res. 73, 100762 (2019).
  3. Dua, H. S., et al. Neurotrophic keratopathy. Prog Retin Eye Res. 66, 107-131 (2018).
  4. Bonini, S., Rama, P., Olzi, D., Lambiase, A. Neurotrophic keratitis. Eye. 17 (8), 989-995 (2003).
  5. Barrientez, B., et al. Corneal Injury: Clinical and molecular aspects. Exp Eye Res. 186, 107709 (2019).
  6. Willmann, D., Fu, L., Melanson, S. W. Corneal Injury. StatPearls. , (2023).
  7. Kalha, S., et al. Bmi1+ progenitor cell dynamics in murine cornea during homeostasis and wound healing. Stem Cells. 36 (4), 562-573 (2018).
  8. Park, J. W., et al. Potential roles of nitrate and nitrite in nitric oxide metabolism in the eye. Sci Rep. 10 (1), 13166 (2020).
  9. Ikkala, K., Stratoulias, V., Michon, F. Unilateral corneal insult in Zebrafish results in a bilateral cell shape and identity modification, supporting wound closure. bioRxiv. , (2021).
  10. Yang, L., et al. Substance P promotes diabetic corneal epithelial wound healing through molecular mechanisms mediated via the Neurokinin-1 receptor. Diabetes. 63 (12), 4262-4274 (2014).
  11. Zhao, W., He, X., Liu, R., Ruan, Q. Accelerating corneal wound healing using exosome-mediated targeting of NF-κB c-Rel. Inflamm Regen. 43 (1), 6 (2023).
  12. Downie, L. E., et al. Recovery of the sub-basal nerve plexus and superficial nerve terminals after corneal epithelial injury in mice. Exp Eye Res. 171, 92-100 (2018).
  13. He, J., Pham, T. L., Kakazu, A. H., Bazan, H. E. P. Remodeling of substance P sensory nerves and transient receptor potential melastatin 8 (TRPM8) cold receptors after corneal experimental surgery. Invest Ophthalmol Vis Sci. 60 (7), 2449-2460 (2019).
  14. Bandeira, F., Yusoff, N. Z., Yam, G. H. -. F., Mehta, J. S. Corneal reinnervation following refractive surgery treatments. Neural Regen Res. 14 (4), 557-565 (2019).
  15. Erie, J. C., McLaren, J. W., Hodge, D. O., Bourne, W. M. Recovery of corneal subbasal nerve density after PRK and LASIK. Am J Ophthalmol. 140 (6), 1059-1064.e1 (2005).
  16. Coleman, M. P., Freeman, M. R. Wallerian degeneration, WldS, and Nmnat. Annu Rev Neurosci. 33, 245-267 (2010).
  17. Arenas, E., Esquenazi, S., Anwar, M., Terry, M. Lamellar corneal transplantation. Surv Ophthalmol. 57 (6), 510-529 (2012).
  18. Niederer, R. L., Perumal, D., Sherwin, T., McGhee, C. N. J. Corneal innervation and cellular changes after corneal transplantation: An in vivo confocal microscopy study. Invest Ophthalmol Vis Sci. 48 (2), 621-626 (2007).
  19. Icha, J., Weber, M., Waters, J. C., Norden, C. Phototoxicity in live fluorescence microscopy, and how to avoid it. BioEssays. 39 (8), 1700003 (2017).
  20. Volatier, T., Schumacher, B., Cursiefen, C., Notara, M. UV protection in the cornea: Failure and rescue. Biologia. 11 (2), 278 (2022).
  21. Loulier, K., et al. Multiplex cell and lineage tracking with combinatorial labels. Neuron. 81 (3), 505-520 (2014).
  22. Dana, R., et al. Expert consensus on the identification, diagnosis, and treatment of neurotrophic keratopathy. BMC Ophthalmol. 21 (1), 327 (2021).
  23. Matsumoto, Y., et al. Autologous serum application in the treatment of neurotrophic keratopathy. Ophthalmology. 111 (6), 1115-1120 (2004).
  24. Bonini, S., et al. Phase II randomized, double-masked, vehicle-controlled trial of recombinant human nerve growth factor for neurotrophic keratitis. Ophthalmology. 125 (9), 1332-1343 (2018).
  25. Aggarwal, S., Colon, C., Kheirkhah, A., Hamrah, P. Efficacy of autologous serum tears for treatment of neuropathic corneal pain. Ocul Surf. 17 (3), 532-539 (2019).
  26. Singh, N. P., Said, D. G., Dua, H. S. Lamellar keratoplasty techniques. Indian J Ophthalmol. 66 (9), 1239-1250 (2018).
  27. Gautier, B., et al. AAV2/9-mediated gene transfer into murine lacrimal gland leads to a long-term targeted tear film modification. Mol Ther Methods Clin Dev. 27, 1-16 (2022).
check_url/pt/66182?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Meneux, L., Caballero, A., Boukhaddaoui, H., Michon, F. Three Strategies to Induce Neurotrophic Keratitis and Nerve Regeneration in Murine Cornea. J. Vis. Exp. (202), e66182, doi:10.3791/66182 (2023).

View Video