Summary

Tre strategier for å indusere nevrotrofisk keratitt og nerveregenerering i murine hornhinnen

Published: December 08, 2023
doi:

Summary

Her foreslår vi tre forskjellige metoder for å skade de sensoriske fibrene som innerverer hornhinnen. Disse metodene letter studiet av aksonregenerering hos mus. Disse tre metodene, som kan tilpasses andre dyremodeller, er ideelle for studier av hornhindeinnervasjonsfysiologi og regenerering.

Abstract

Hornhinnen er et gjennomsiktig vev som dekker øyet og er avgjørende for klart syn. Det er det mest innerverte vevet i kroppen. Denne innerveringen gir sensasjon og trofisk funksjon til øyet og bidrar til å bevare hornhinnenes integritet. Den patologiske forstyrrelsen av denne innerveringen kalles nevrotrofisk keratitt. Dette kan utløses av skade på øyet, kirurgi eller sykdom. I denne studien foreslår vi tre forskjellige protokoller for å påføre skade på innerveringen på måter som rekapitulerer de tre typer tilfeller som vanligvis oppstår i klinikken.

Den første metoden består i å lage en slitasje av epitelet med en oftalmisk burr. Dette innebærer fjerning av epitellaget, de frie nerveender og subbasal plexus på en måte som ligner på fotorefraktiv keratektomi kirurgi utført i klinikken. Den andre metoden retter seg bare mot innerveringen ved å seksjonere den i periferien med en biopsistans, og opprettholder epitelets integritet. Denne metoden ligner de første trinnene av lamellar keratoplastikk og fører til en degenerasjon av innerveringen etterfulgt av gjenvekst av axonene i den sentrale hornhinnen. Den siste metoden skader innerveringen av en transgen musemodell ved hjelp av et multifotonmikroskop, som spesifikt lokaliserer stedet for cauterization av fluorescerende nervefibre. Denne metoden forårsaker samme skade som fotokeratitt, en overeksponering for UV-lys.

Denne studien beskriver ulike alternativer for å undersøke fysiopatologien til hornhinneinnervering, spesielt degenerasjon og regenerering av aksonene. Fremme regenerering er avgjørende for å unngå slike komplikasjoner som epiteldefekter eller til og med perforering av hornhinnen. De foreslåtte modellene kan bidra til å teste nye farmakologiske molekyler eller genterapi som forbedrer nerveregenerering og begrenser sykdomsprogresjon.

Introduction

Hornhinnen, som er den gjennomsiktige overflaten av øyet, består av tre forskjellige lag: epitelet, stroma og endotelet. Dette organet har den høyeste tettheten av innervering i kroppen og består hovedsakelig av sensoriske fibre (type Aδ og C) som stammer fra den oftalmiske grenen av trigeminal ganglion. Sensoriske fibre trenger inn i periferien av hornhinnen i midten av stroma i form av store bunter som grener ut for å dekke overflaten. De forgrener seg deretter for å gjennombore Bowmanns membran og danne subbasal plexus, som er lett gjenkjennelig ved dannelsen av en virvel i midten av hornhinnen. Disse fibrene avsluttes som frie nerveender på epitelets ytre overflate. De er i stand til å transdusere termiske, mekaniske og kjemiske stimuli og frigjøre trofiske faktorer som er essensielle for epitelhomeostase 1,2. Neurotrofisk keratitt (NK) er en degenerativ sykdom som påvirker hornhinnen sensorisk innervering. Denne sjeldne sykdommen stammer fra en reduksjon eller tap av hornhinnefølsomhet som resulterer i lavere tåreproduksjon og dårlige helbredende egenskaper av hornhinnen3. NK utvikler seg gjennom tre godt beskrevne stadier, fra stadium 1 hvor pasientene lider av epiteldefekter, til stadium 3 hvor stromal smelting og/eller hornhinneperforasjon forekommer4.

Klinisk kan opprinnelsen til denne sykdommen være mangfoldig. Pasienter kan miste hornhinneinnervering etter fysisk skade på øyet, kirurgi eller gjennom kroniske sykdommer, som diabetes 5,6. Hittil er NK-patogeneseprosessen fortsatt dårlig forstått, og terapeutiske muligheter for denne synstruende tilstanden er svært begrenset. Derfor er det nødvendig med en bedre forståelse av egenskapene til epiteldefekter for bedre å forstå mekanismene bak regenerering av disse fibrene og potensielt fremme dem. Her foreslår vi flere modeller av hornhinneskade som induserer NK hos mus.

Den første modellen er slitasje av epitellaget av hornhinnen med en okulær burr. Denne modellen har hovedsakelig blitt studert i sammenheng med regenerering av epitelet i forskjellige dyr, som gnagere og fisk 7,8,9, og for å teste molekyler som fremmer hornhinneheling10,11. Fysiologisk tar det 2-3 dager for epitelcellene å lukke såret. Det fysiologiske mønsteret av innerveringen tar imidlertid mer enn fire uker å komme seg fra slitasje12,13. Under operasjonen fjerner den okulære burren epitellaget av hornhinnen som inneholder subbasal plexus og fibrenes frie nerveender. Denne prosedyren kan klinisk sammenlignes med pasienter med fotorefraktiv keratektomi (PRK) for å korrigere øyebrytningsdefekter. Prosedyren består i å fjerne epitelet i hornhinnen og deretter omforme stroma med en laser14. Pasienter kan oppleve flere bivirkninger etter en slik operasjon, for eksempel en reduksjon av hornhinnenes nervetetthet i 2 år og en reduksjon i følsomhet i en varighet på 3 måneder til ett år etter operasjonen15. Gitt at operasjonen induserer en skjøthet i hornhinnenes mikromiljø, kan denne modellen bidra til å undersøke disse bivirkningene og utvikle terapeutiske tilnærminger som vil fremme raskere reinnervasjon, og dermed redusere de aktuelle bivirkningene.

Den andre modellen består av å seksjonere aksonene i periferien av hornhinnen med et biopsislag, indusere en walleriansk degenerasjon av den sentrale innerveringen 16. Klinisk kan denne metoden sammenlignes med fremre lamellar keratoplastikk, hvor kirurgen innser en delvis trefinering av hornhinnen for å fjerne en del av hornhinnenes fremre tykkelse og erstatte den med en donortransplantasjon 17. Etter lamellar keratoplastikk kan pasienter lide av en rekke symptomer, inkludert tørre øyne, tap av hornhinneinnervering og avstøtning av transplantat18. Denne aksotomimodellen utført på hornhinnendere kan gi innsikt i mekanismene for fiberdegenerasjon, som oppstår etter et transplantat, etterfulgt av axons regenerering.

Den tredje metoden skader hornhinnen med en laser. Ved å bruke et multifotonmikroskop på hornhinnen av bedøvede dyr, induseres degenerasjon av nerver lokalisert i det optiske feltet som et resultat av dannelse av reaktive oksygenarter (ROS), noe som fører til DNA-skade og cellulær kavitasjon19. Denne metoden rekapitulerer hornhinnen fotodamage indusert av overeksponering for naturlig UV (solbrenthet), som også utløser ROS-dannelse, noe som fører til DNA-skade20. Pasienter som lider av solbrenthet i hornhinnen opplever stor smerte, da forverringen av epitelceller frarøver hornhinnenes fibre ekstremiteter av alle.

De tre metodene beskrevet her er utformet for å muliggjøre undersøkelse av NK-patogeneseprosessen og aksonregenerering. De er lett reproduserbare og presise. Videre tillater de rask gjenoppretting og enkel overvåking av dyrene.

Protocol

Alle forsøkene ble godkjent av National Animal Experiment Board. 1. Forberedelser Forbered en bedøvelsesløsning av ketamin-xylazin til anestesi. Injiser ketamin ved 80 mg/kg og xylazin med 10 mg/kg ved å fortynne 200 μl ketamin (100 mg/ml) og 125 mikrol xylazin (20 mg/ml) i 2 175 ml steril 0,9 % NaCl. Tilbered 0,02 mg/ml buprenorfinoppløsning som smertestillende oppløsning ved å tilsette 100 μL 0,3 mg/ml buprenorfin til 1 400 ml steril 0,9 % NaCl<e…

Representative Results

Denne studien foreslår flere protokoller for å forårsake skade på hornhinneinnervasjon hos mus. Mens lignende protokoller har blitt brukt til å undersøke fysiopatologien til helbredelsen av epitelet, valgte vi å tilpasse og utvikle nye metoder for å undersøke hornhinneinnervasjonsregenerering. For å observere innerveringen brukte vi to teknikker. Først benyttet vi en immunfluorescensteknikk for å flekke nervefibrene ved hjelp av et pannevronalt antistoff (BIII tubulin) og kjernene med en interkalator. For det…

Discussion

Neurotrofisk keratitt regnes som en sjelden sykdom, som påvirker 5 av 10.000 individer. Imidlertid er personer som lider av NK på grunn av fysisk skade som kjemiske forbrenninger, eller syndromer som diabetes eller multippel sklerose ikke inkludert i denne statistikken3. Videre er denne tilstanden fortsatt betydelig underdiagnostisert22, og forekomsten av sykdommen er underestimert. Det er et sterkt behov for nye behandlinger og terapi som vil fremme aksonregenerering som…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Dr. Karine Loulier for tilgangen til den transgene muselinjen MAGIC-. Forfatterne takker også RAM-Neuro dyrekjernefasiliteten og bildebehandlingsanlegget MR, medlem av Frankrike-BioImaging nasjonal infrastruktur støttet av det franske nasjonale forskningsbyrået (ANR-10-INBS-04, “Investeringer for fremtiden”). Denne forskningen ble støttet av ATIP-Avenir-programmet, Inserm, Région Occitanie, Universitetet i Montpellier, det franske nasjonale forskningsbyrået (ANR-21-CE17-0061), Fondation pour la Recherche Médicale (FRM Regenerative Medicine, REP202110014140) og Groupama Foundation.

Materials

0.2 µm seringe filter CLEARLINE 51733
0.5 mm rust ring remover Alger Equipment Company BU-5S
2 mL plastic tubes Eppendrof  30120094
Algerbrush burr, Complete instrument Alger Equipment Company BR2-5
Anti-beta III Tubulin antibody Abcam ab18207
Antigenfix Diapath P0016
Artificial tear Larmes artificielles Martinet N/A
Buprecare Animalcare N/A
Cotton swab Any provider N/A
Dissecting tools Fine Science Tools N/A
Fluorescein Merck 103887
Gelatin from cold water fish skin Sigma G7765
Goat serum Merck S26
Head Holder Narishige SGM 4
Heated plate BIOSEB LAB instruments BIO-HE002
Hoechst 33342 Thermo Fisher Scientific H3570
Imalgene 1000 BOEHRINGER INGELHEIM ANIMAL HEALTH France N/A French marketing authorization numbre: FR/V/0167433 4/1992
LAS X software Leica N/A Large volume computational clearing (LVCC) process
Laser Chameleon Ultra II Coherent N/A
Laser power meter Coherent N/A
Leica Thunder Imager Tissue microscope Leica N/A
Multi-photon Zeiss LSM 7MP upright microscope Zeiss N/A
Ocry-gel TVM lab N/A
Parametric oscillator Coherent N/A
Penlights with blue cobalt filtercap Bernell ALPEN
Petri dish Thermo Scientific 150318 Axotomy protocol
Petridish Thermo Scientific 150288 Cornea whole-mount processing
Rompun 2% Elanco N/A French marketing authorization numbre: FR/V/8146715 2/1980
Sterile biopsy punch 2.5 mm LCH medical LCH-PUK-25
Triton X-100 VWR 0694
Vectashield EuroBioSciences H-1000 Mounting medium

Referências

  1. Marfurt, C. F., Cox, J., Deek, S., Dvorscak, L. Anatomy of the human corneal innervation. Exp Eye Res. 90 (4), 478-492 (2010).
  2. Al-Aqaba, M. A., Dhillon, V. K., Mohammed, I., Said, D. G., Dua, H. S. Corneal nerves in health and disease. Prog Retin Eye Res. 73, 100762 (2019).
  3. Dua, H. S., et al. Neurotrophic keratopathy. Prog Retin Eye Res. 66, 107-131 (2018).
  4. Bonini, S., Rama, P., Olzi, D., Lambiase, A. Neurotrophic keratitis. Eye. 17 (8), 989-995 (2003).
  5. Barrientez, B., et al. Corneal Injury: Clinical and molecular aspects. Exp Eye Res. 186, 107709 (2019).
  6. Willmann, D., Fu, L., Melanson, S. W. Corneal Injury. StatPearls. , (2023).
  7. Kalha, S., et al. Bmi1+ progenitor cell dynamics in murine cornea during homeostasis and wound healing. Stem Cells. 36 (4), 562-573 (2018).
  8. Park, J. W., et al. Potential roles of nitrate and nitrite in nitric oxide metabolism in the eye. Sci Rep. 10 (1), 13166 (2020).
  9. Ikkala, K., Stratoulias, V., Michon, F. Unilateral corneal insult in Zebrafish results in a bilateral cell shape and identity modification, supporting wound closure. bioRxiv. , (2021).
  10. Yang, L., et al. Substance P promotes diabetic corneal epithelial wound healing through molecular mechanisms mediated via the Neurokinin-1 receptor. Diabetes. 63 (12), 4262-4274 (2014).
  11. Zhao, W., He, X., Liu, R., Ruan, Q. Accelerating corneal wound healing using exosome-mediated targeting of NF-κB c-Rel. Inflamm Regen. 43 (1), 6 (2023).
  12. Downie, L. E., et al. Recovery of the sub-basal nerve plexus and superficial nerve terminals after corneal epithelial injury in mice. Exp Eye Res. 171, 92-100 (2018).
  13. He, J., Pham, T. L., Kakazu, A. H., Bazan, H. E. P. Remodeling of substance P sensory nerves and transient receptor potential melastatin 8 (TRPM8) cold receptors after corneal experimental surgery. Invest Ophthalmol Vis Sci. 60 (7), 2449-2460 (2019).
  14. Bandeira, F., Yusoff, N. Z., Yam, G. H. -. F., Mehta, J. S. Corneal reinnervation following refractive surgery treatments. Neural Regen Res. 14 (4), 557-565 (2019).
  15. Erie, J. C., McLaren, J. W., Hodge, D. O., Bourne, W. M. Recovery of corneal subbasal nerve density after PRK and LASIK. Am J Ophthalmol. 140 (6), 1059-1064.e1 (2005).
  16. Coleman, M. P., Freeman, M. R. Wallerian degeneration, WldS, and Nmnat. Annu Rev Neurosci. 33, 245-267 (2010).
  17. Arenas, E., Esquenazi, S., Anwar, M., Terry, M. Lamellar corneal transplantation. Surv Ophthalmol. 57 (6), 510-529 (2012).
  18. Niederer, R. L., Perumal, D., Sherwin, T., McGhee, C. N. J. Corneal innervation and cellular changes after corneal transplantation: An in vivo confocal microscopy study. Invest Ophthalmol Vis Sci. 48 (2), 621-626 (2007).
  19. Icha, J., Weber, M., Waters, J. C., Norden, C. Phototoxicity in live fluorescence microscopy, and how to avoid it. BioEssays. 39 (8), 1700003 (2017).
  20. Volatier, T., Schumacher, B., Cursiefen, C., Notara, M. UV protection in the cornea: Failure and rescue. Biologia. 11 (2), 278 (2022).
  21. Loulier, K., et al. Multiplex cell and lineage tracking with combinatorial labels. Neuron. 81 (3), 505-520 (2014).
  22. Dana, R., et al. Expert consensus on the identification, diagnosis, and treatment of neurotrophic keratopathy. BMC Ophthalmol. 21 (1), 327 (2021).
  23. Matsumoto, Y., et al. Autologous serum application in the treatment of neurotrophic keratopathy. Ophthalmology. 111 (6), 1115-1120 (2004).
  24. Bonini, S., et al. Phase II randomized, double-masked, vehicle-controlled trial of recombinant human nerve growth factor for neurotrophic keratitis. Ophthalmology. 125 (9), 1332-1343 (2018).
  25. Aggarwal, S., Colon, C., Kheirkhah, A., Hamrah, P. Efficacy of autologous serum tears for treatment of neuropathic corneal pain. Ocul Surf. 17 (3), 532-539 (2019).
  26. Singh, N. P., Said, D. G., Dua, H. S. Lamellar keratoplasty techniques. Indian J Ophthalmol. 66 (9), 1239-1250 (2018).
  27. Gautier, B., et al. AAV2/9-mediated gene transfer into murine lacrimal gland leads to a long-term targeted tear film modification. Mol Ther Methods Clin Dev. 27, 1-16 (2022).
check_url/pt/66182?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Meneux, L., Caballero, A., Boukhaddaoui, H., Michon, F. Three Strategies to Induce Neurotrophic Keratitis and Nerve Regeneration in Murine Cornea. J. Vis. Exp. (202), e66182, doi:10.3791/66182 (2023).

View Video