Summary

Venstre atrieligering i fugleembryoet som en modell for endret hemodynamisk belastning under tidlig vaskulær utvikling

Published: June 16, 2023
doi:

Summary

Her presenterer vi en detaljert visuell protokoll for å utføre modellen for venstre atrieligering (LAL) i fugleembryoet. LAL-modellen endrer den intrakardiale strømmen, noe som endrer belastningen på veggskjærspenningen, og etterligner hypoplastisk venstre hjertesyndrom. En tilnærming for å overvinne utfordringene i denne vanskelige mikrokirurgimodellen presenteres.

Abstract

På grunn av sin firekammerede modne ventrikkelkonfigurasjon, enkle kultur, bildetilgang og effektivitet, er fugleembryoet en foretrukket virveldyrmodell for å studere kardiovaskulær utvikling. Studier som tar sikte på å forstå normal utvikling og medfødt hjertefeilprognose vedtar i stor grad denne modellen. Mikroskopiske kirurgiske teknikker blir introdusert for å endre de normale mekaniske lastemønstrene på et bestemt embryonalt tidspunkt og spore nedstrøms molekylær og genetisk kaskade. De vanligste mekaniske inngrepene er venstre vitelline veneligering, conotruncal banding og venstre atrieligering (LAL), modulerende intramuralt vaskulært trykk og veggskjærspenning på grunn av blodstrøm. LAL, spesielt hvis det utføres i ovo, er det mest utfordrende inngrepet, med svært små prøveutbytter på grunn av de ekstremt fine sekvensielle mikrokirurgiske operasjonene. Til tross for sin høye risiko, i ovo LAL er svært verdifull vitenskapelig som det etterligner hypoplastisk venstre hjerte syndrom (HLHS) patogenese. HLHS er en klinisk relevant, kompleks medfødt hjertesykdom observert hos nyfødte mennesker. En detaljert protokoll for in ovo LAL er dokumentert i denne artikkelen. Kort fortalt ble befruktede fugleembryoer inkubert ved 37,5 °C og 60 % konstant fuktighet vanligvis til de nådde Hamburger-Hamilton (HH) stadium 20 til 21. Eggeskallene ble sprukket åpne, og ytre og indre membraner ble fjernet. Embryoet ble forsiktig rotert for å eksponere venstre atriepære i det felles atriumet. Ferdigmonterte mikroknuter fra 10-0 nylonsuturer ble forsiktig plassert og bundet rundt venstre atrieknopp. Til slutt ble embryoet returnert til sin opprinnelige posisjon, og LAL ble fullført. Normale og LAL-instrumenterte ventrikler viste statistisk signifikante forskjeller i vevskomprimering. En effektiv rørledning for generering av LAL-modeller vil bidra til studier som fokuserer på synkronisert mekanisk og genetisk manipulasjon under den embryonale utviklingen av kardiovaskulære komponenter. På samme måte vil denne modellen gi en forstyrret cellekilde for vevskulturforskning og vaskulær biologi.

Introduction

Medfødte hjertefeil (CHD) er strukturelle lidelser som oppstår på grunn av unormal embryonal utvikling1. I tillegg til genetiske forhold påvirkes patogenesen av endret mekanisk belastning 2,3. Hypoplastisk venstre hjerte syndrom (HLHS), en medfødt hjertesykdom, resulterer i en underutviklet ventrikkel / aorta ved fødselen4 med høy dødelighet 5,6. Til tross for de siste fremskrittene i den kliniske ledelsen, er den vaskulære veksten og utviklingsdynamikken til HLHS fortsatt uklar7. Ved normal embryonal utvikling stammer venstre ventrikkel (LV) endokard og myokard fra hjerteprogenitorer etter hvert som den tidlige embryonale hjerterørsdannelsen utvikler seg. Gradvis tilstedeværelse av myokardtrabekulasjon, fortykkelseslag og kardiomyocyttproliferasjon er rapportert2. For hemofagocytisk lymfohistiocytose observeres endret trabekulær remodellering og venstre ventrikkelavflatning, noe som ytterligere bidrar til myokardhypoplasi på grunn av unormal kardiomyocyttmigrasjon 2,8,9,10

Blant de mye brukte modellorganismer for å studere hjerteutvikling og forstå hemodynamiske forhold 11, er fugleembryoet foretrukket på grunn av dets firekammerede modne hjerte og dets enkle kultur11,12,13,14. På den annen side gir avansert bildetilgang av sebrafiskembryoer og transgene/knockout-mus klare fordeler11,12. Ulike mekaniske inngrep har blitt testet for fugleembryoet som endrer det intramurale trykket og veggskjærspenningen ved utvikling av kardiovaskulære komponenter. Disse modellene inkluderer venstre vitelline ligering, conotruncal banding15 og venstre atrieligering (LAL) 11,12,16. Den resulterende fenotypen på grunn av den endrede mekaniske belastningen kan observeres ca. 24-48 timer etter kirurgisk inngrep i studier med fokus på tidlig prognose11,13. LAL-intervensjonen er en populær teknikk for å begrense det funksjonelle volumet av venstre atrium (LA) ved å plassere en sutursløyfe rundt den atrioventrikulære åpningen. På samme måte er det også utført mikrokirurgiske inngrep som retter seg mot høyre atrieligering (RAL)17,18. På samme måte retter noen forskere seg mot venstre atrievedheng (LAA) ved hjelp av mikroklipp for å redusere volumet av LA19,20. I noen studier påføres en kirurgisk nylontråd på den atrioventrikulære noden19,21. Et av inngrepene som brukes er LAL, som kan etterligne HLHS, men som også er den vanskeligste modellen å utføre, med svært små prøveutbytter på grunn av de ekstremt fine mikrokirurgiske operasjonene som kreves. I vårt laboratorium utføres LAL i ovo mellom Hamburger-Hamilton (HH) trinn 20 og 21, før det felles atriumet er fullt septat 6,14,22,23. En kirurgisk sutur er plassert rundt LA, som endrer de intrakardiale blodstrømstrømmene. I LAL-modeller av HLHS observeres økt ventrikkelveggstivhet, endrede myofibervinkler og redusert LV-hulromsstørrelse14,24.

I denne videoartikkelen er det gitt en detaljert protokoll og tilnærming for in ovo LAL. Kort fortalt ble de befruktede fugleembryoene inkubert for mikrokirurgi, eggeskallet ble sprukket åpent, og ytre og indre membraner ble ryddet. Embryoet ble deretter sakte rotert slik at LA var tilgjengelig. En 10-0 nylon kirurgisk sutur ble bundet til atrieknoppen, og embryoet ble returnert til sin opprinnelige orientering, og fullførte LAL-prosedyren25. LAL og normale ventrikler sammenlignes for vevskomprimering og ventrikkelvolum via optisk koherenstomografi og basal histologi.

En vellykket utført LAL-modellrørledning, som beskrevet her, vil bidra til grunnleggende studier med fokus på embryonal utvikling av kardiovaskulære komponenter. Denne modellen kan også brukes sammen med genetiske manipulasjoner og avanserte avbildningsmodaliteter. På samme måte er den akutte LAL-modellen en stabil kilde til syke vaskulære celler for vevskultureksperimenter.

Protocol

Fruktbare hvite leghornegg er hentet fra pålitelige leverandører og inkuberes i henhold til universitetsgodkjente retningslinjer. Chick embryoer, stadier 18 (dag 3) til 24 (dag 4) (stadiene presentert i denne artikkelen) anses ikke som levende virveldyr av EU-direktiv 2010/63 / EU og retningslinjene for institusjonell dyrepleie og bruk (IACUC) i USA. Kyllingembryoer regnes som “levende dyr” etter dag 19 av inkubasjon i henhold til amerikanske lover, men ikke for EU. Hvert egg er merket med startdato for klekking og er …

Representative Results

Avanserte tidsoppløste avbildningsteknikker kan brukes til å observere strukturelle og morfologiske endringer på grunn av LAL-intervensjon10. Videre er LAL-prøver også egnet til molekylære og biologiske metoder19,28. I tabell 1 er utvalgsstudier som benyttet LAL-modellresultater gitt. I denne sammenheng ble LAL-intervensjon utført i kyllingembryoer som nådde HH20-21. Både kontroll- (friske) og LAL-hjerter ble fjer…

Discussion

Ved hemofagocytisk lymfohistiocytose endres blodstrømmen på grunn av strukturelle defekter, noe som fører til unormal morfologi på venstre side 4,6. Den nåværende modellen gir et praktisk eksperimentelt system for bedre å forstå utviklingen av HLHS og kan til og med etterligne patogenesen8. Det er imidlertid utfordrende å etablere en fullt klinisk ekvivalent dyremodell for hemofagocytisk lymfohistiocytose. I tillegg til den aviær…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi anerkjenner Tubitak 2247A lead researcher award 120C139 som gir finansiering. Forfatterne vil også takke PakTavuk Gıda. AS, Istanbul, Tyrkia, for å gi fruktbare egg og støtte kardiovaskulær forskning.

Materials

10-0 nylon surgical suture Ethicon
Elastica van Gieson staining kit Sigma-Aldrich 115974 For staining connective tissues in histological sections
Ethanol absolute Interlab 64-17-5 For the sterilization step, 70% ethanol was obtained by diluting absolute ethanol with distilled water.
Incubator KUHL, Flemington, New Jersey-U.S.A AZYSS600-110
Kimwipes Interlab 080.65.002
Microscissors World Precision Instruments (WPI), Sarasota FL 555640S Vannas STR 82 mm
Parafilm M Sigma-Aldrich P7793-1EA Sealing stage for egg reincubation
Paraplast Bulk Leica Biosystems  39602012 Tissue embedding medium
Stereo Microscope Zeiss Stemi 508  Stemi 508 Used at station 1
Stereo Microscope Zeiss Stemi 2000-C Stemi 2000-C Used at station 2
Tweezer (Dumont 4 INOX #F4) Adumont & Fils, Switzerland Used to return the embryo
Tweezer (Super Fine Dumont #5SF)  World Precision Instruments (WPI), Sarasota FL 501985 Used to remove the membranes on the embryo

Referências

  1. Wang, T., et al. Congenital heart disease and risk of cardiovascular disease: A meta-analysis of cohort studies. Journal of the American Heart Association. 8 (10), e012030 (2019).
  2. Chaudhry, B., et al. The left ventricular myocardium in hypoplastic left heart syndrome. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 9 (8), 279 (2022).
  3. Lashkarinia, S. S., Çoban, G., Ermek, E., Çelik, M., Pekkan, K. Spatiotemporal remodeling of embryonic aortic arch: stress distribution, microstructure, and vascular growth in silico. Biomechanics and Modeling in Mechanobiology. 19 (5), 1897-1915 (2020).
  4. Ho, S., Chan, W. X., Yap, C. H. Fluid mechanics of the left atrial ligation chick embryonic model of hypoplastic left heart syndrome. Biomechanics and Modeling in Mechanobiology. 20 (4), 1337-1351 (2021).
  5. Gordon, B. M., Rodriguez, S., Lee, M., Chang, R. K. Decreasing number of deaths of infants with hypoplastic left heart syndrome. The Journal of Pediatrics. 153 (3), 354-358 (2008).
  6. Salman, H. E., et al. Effect of left atrial ligation-driven altered inflow hemodynamics on embryonic heart development: clues for prenatal progression of hypoplastic left heart syndrome. Biomechanics and Modeling in Mechanobiology. 20 (2), 733-750 (2021).
  7. Fruitman, D. S. Hypoplastic left heart syndrome: Prognosis and management options. Paediatrics & Child Health. 5 (4), 219-225 (2000).
  8. Rahman, A., Chaturvedi, R. R., Sled, J. G. Flow-mediated factors in the pathogenesis of hypoplastic left heart syndrome. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 9 (5), 154 (2022).
  9. Henderson, D. J., Anderson, R. H. The development and structure of the ventricles in the human heart. Pediatric Cardiology. 30 (5), 588-596 (2009).
  10. Kowalski, W. J., Pekkan, K., Tinney, J. P., Keller, B. B. Investigating developmental cardiovascular biomechanics and the origins of congenital heart defects. Frontiers in Physiology. 5, 408 (2014).
  11. Midgett, M., Rugonyi, S. Congenital heart malformations induced by hemodynamic altering surgical interventions. Frontiers in Physiology. 5, 287 (2014).
  12. Kowalski, W. J., et al. Left atrial ligation alters intracardiac flow patterns and the biomechanical landscape in the chick embryo. Developmental Dynamics. 243 (5), 652-662 (2014).
  13. Bruneau, B. G. The developmental genetics of congenital heart disease. Nature. 451 (7181), 943-948 (2008).
  14. Sedmera, D., et al. Cellular changes in experimental left heart hypoplasia. The Anatomical Record. 267 (2), 137-145 (2002).
  15. Celik, M., et al. Microstructure of early embryonic aortic arch and its reversibility following mechanically altered hemodynamic load release. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 318 (5), H1208-H1218 (2020).
  16. Tobita, K., Schroder, E. A., Tinney, J. P., Garrison, J. B., Keller, B. B. Regional passive ventricular stress-strain relations during development of altered loads in chick embryo. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 282 (6), H2386-H2396 (2002).
  17. Alser, M., Shurbaji, S., Yalcin, H. C. Mechanosensitive pathways in heart development: findings from chick embryo studies. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 8 (4), 32 (2021).
  18. Alser, M., et al. Blood flow disturbance and morphological alterations following the right atrial ligation in the chick embryo. Frontiers in Physiology. 13, 849603 (2022).
  19. Sedmera, D. HLHS: Power of the chick model. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 9 (4), 113 (2022).
  20. Rychter, Z., Rychterová, V., Lemez, L. Formation of the heart loop and proliferation structure of its wall as a base for ventricular septation. Herz. 4 (2), 86-90 (1979).
  21. Harh, J. Y., Paul, M. H., Gallen, W. J., Friedberg, D. Z., Kaplan, S. Experimental production of hypoplastic left heart syndrome in the chick embryo. The Americal Journal of Cardiology. 31 (1), 51-56 (1973).
  22. Sedmera, D., Pexieder, T., Rychterova, V., Hu, N., Clark, E. B. Remodeling of chick embryonic ventricular myoarchitecture under experimentally changed loading conditions. The Anatomical Record. 254 (2), 238-252 (1999).
  23. Karakaya, C., et al. Asymmetry in mechanosensitive gene expression during aortic arch morphogenesis. Scientific Reports. 8 (1), 16948 (2018).
  24. Trinidad, F., et al. Effect of blood flow on cardiac morphogenesis and formation of congenital heart defects. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 9 (9), 303 (2022).
  25. Tobita, K., Keller, B. B. Right and left ventricular wall deformation patterns in normal and left heart hypoplasia chick embryos. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 279 (3), H959-H969 (2000).
  26. Bortecine, S., Merve Nur, C., Faruk, K., Kerem, P. Auxiliary humidifier system design and construction for research grade egg incubators. Zenodo. , (2023).
  27. Schroder, E. A., Tobita, K., Tinney, J. P., Foldes, J. K., Keller, B. B. Microtubule involvement in the adaptation to altered mechanical load in developing chick myocardium. Circulation Research. 91 (4), 353-359 (2002).
  28. Rufaihah, A. J., Chen, C. K., Yap, C. H., Mattar, C. N. Z. Mending a broken heart: In vitro, in vivo and in silico models of congenital heart disease. Disease Models & Mechanisms. 14 (3), (2021).
  29. Siddiqui, H. B., Dogru, S., Lashkarinia, S. S., Pekkan, K. Soft-tissue material properties and mechanogenetics during cardiovascular development. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 9 (2), 64 (2022).
  30. Pesevski, Z., et al. Endocardial fibroelastosis is secondary to hemodynamic alterations in the chick embryonic model of hypoplastic left heart syndrome. Developmental Dynamics. 247 (3), 509-520 (2018).
  31. Hu, N., et al. Dependence of aortic arch morphogenesis on intracardiac blood flow in the left atrial ligated chick embryo. Anatomical Record. 292 (5), 652-660 (2009).
  32. Lashkarinia, S. S., et al. Myocardial biomechanics and the consequent differentially expressed genes of the left atrial ligation chick embryonic model of hypoplastic left heart syndrome. Annals of Biomedical Engineering. 51 (5), 1063-1078 (2023).
  33. Krejčí, E., et al. Microarray analysis of normal and abnormal chick ventricular myocardial development. Physiological Research. 61, S137-S144 (2012).
  34. Rahman, A., et al. A mouse model of hypoplastic left heart syndrome demonstrating left heart hypoplasia and retrograde aortic arch flow. Disease Models & Mechanisms. 14 (11), (2021).
  35. Fishman, N. H., Hof, R. B., Rudolph, A. M., Heymann, M. A. Models of congenital heart disease in fetal lambs. Circulation. 58 (2), 354-364 (1978).
  36. Wong, F. Y., et al. Induction of left ventricular hypoplasia by occluding the foramen ovale in the fetal lamb. Scientific Reports. 10 (1), 880 (2020).
  37. Nie, S. Use of frogs as a model to study the etiology of HLHS. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 10 (2), 51 (2023).
  38. Vilches-Moure, J. G. Embryonic chicken (Gallus gallus domesticus) as a model of cardiac biology and development. Comparative Medicine. 69 (3), 184-203 (2019).
  39. Kain, K. H., et al. The chick embryo as an expanding experimental model for cancer and cardiovascular research. Developmental Dynamics. 243 (2), 216-228 (2014).
  40. Sukparangsi, W., Thongphakdee, A., Intarapat, S. Avian embryonic culture: A perspective of in ovo to ex ovo and in vitro studies. Frontiers in Physiology. 13, 903491 (2022).

Play Video

Citar este artigo
Sevgin, B., Coban, M. N., Karatas, F., Pekkan, K. Left Atrial Ligation in the Avian Embryo as a Model for Altered Hemodynamic Loading During Early Vascular Development. J. Vis. Exp. (196), e65330, doi:10.3791/65330 (2023).

View Video