Summary

Venstre atriel ligering i fugleembryoet som model for ændret hæmodynamisk belastning under tidlig vaskulær udvikling

Published: June 16, 2023
doi:

Summary

Her præsenterer vi en detaljeret visuel protokol til udførelse af venstre atriel ligation (LAL) model i fugleembryoet. LAL-modellen ændrer den intrakardiale strømning, som ændrer vægforskydningsspændingsbelastning, efterligner hypoplastisk venstre hjertesyndrom. En tilgang til at overvinde udfordringerne ved denne vanskelige mikrokirurgiske model præsenteres.

Abstract

På grund af sin firekammerede modne ventrikulære konfiguration, lette kultur, billeddannelsesadgang og effektivitet er fugleembryoet en foretrukken hvirveldyrmodel til undersøgelse af kardiovaskulær udvikling. Undersøgelser, der sigter mod at forstå den normale udvikling og medfødt hjertefejlprognose, vedtager i vid udstrækning denne model. Mikroskopiske kirurgiske teknikker introduceres for at ændre de normale mekaniske belastningsmønstre på et specifikt embryonalt tidspunkt og spore den nedstrøms molekylære og genetiske kaskade. De mest almindelige mekaniske indgreb er venstre vitelline veneligering, conotruncal banding og venstre atriel ligering (LAL), modulering af det intramurale vaskulære tryk og vægforskydningsspænding på grund af blodgennemstrømning. LAL, især hvis det udføres i ovo, er den mest udfordrende intervention med meget små prøveudbytter på grund af de ekstremt fine sekventielle mikrokirurgiske operationer. På trods af sin høje risiko er in ovo LAL meget værdifuld videnskabeligt, da det efterligner hypoplastisk venstre hjertesyndrom (HLHS) patogenese. HLHS er en klinisk relevant, kompleks medfødt hjertesygdom observeret hos nyfødte. En detaljeret protokol for in ovo LAL er dokumenteret i dette papir. Kort fortalt blev befrugtede fugleembryoner inkuberet ved 37,5 °C og 60% konstant fugtighed, typisk indtil de nåede Hamburger-Hamilton (HH) trin 20 til 21. Æggeskallerne blev revnet op, og de ydre og indre membraner blev fjernet. Embryoet blev forsigtigt drejet for at udsætte den venstre atriale pære i det fælles atrium. Formonterede mikroknuder fra 10-0 nylonsuturer blev forsigtigt placeret og bundet rundt om venstre atriefnop. Endelig blev embryoet returneret til sin oprindelige position, og LAL blev afsluttet. Normale og LAL-instrumenterede ventrikler viste statistisk signifikante forskelle i vævskomprimering. En effektiv LAL-modelgenereringspipeline vil bidrage til undersøgelser, der fokuserer på synkroniseret mekanisk og genetisk manipulation under embryonal udvikling af kardiovaskulære komponenter. Ligeledes vil denne model give en forstyrret cellekilde til vævskulturforskning og vaskulær biologi.

Introduction

Medfødte hjertefejl (CHD’er) er strukturelle lidelser, der opstår på grund af unormal embryonal udvikling1. Ud over genetiske tilstande påvirkes patogenesen af ændret mekanisk belastning 2,3. Hypoplastisk venstre hjertesyndrom (HLHS), en medfødt hjertesygdom, resulterer i en underudviklet ventrikel / aorta ved fødslen4 med en høj dødelighed 5,6. På trods af de seneste fremskridt i den kliniske styring er den vaskulære vækst og udviklingsdynamik i HLHS stadig uklar7. I normal embryonal udvikling stammer endokardiet i venstre ventrikel (LV) og myokardiet fra hjerteforfædre, efterhånden som dannelsen af det tidlige embryonale hjerte skrider frem. Den gradvise tilstedeværelse af myokardietrabekulation, fortykkelseslag og kardiomyocytproliferation rapporteres2. For HLHS observeres ændret trabekulær remodellering og fladning af venstre ventrikel, hvilket yderligere bidrager til myokardiehypoplasi på grund af unormal kardiomyocytmigration 2,8,9,10

Blandt de meget anvendte modelorganismer til at studere hjerteudvikling og forstå hæmodynamiske forhold 11 foretrækkes fugleembryoet på grund af dets modne hjerte med fire kamre og dets lette dyrkning11,12,13,14. På den anden side giver avanceret billeddannelse af zebrafiskembryoner og transgene / knockout-mus klare fordele11,12. Forskellige mekaniske indgreb er blevet testet for fugleembryoet, der ændrer det intramurale tryk og vægforskydningsspænding ved udvikling af kardiovaskulære komponenter. Disse modeller omfatter venstre vitelline ligation, conotruncal banding15 og venstre atriel ligation (LAL) 11,12,16. Den resulterende fænotype på grund af den ændrede mekaniske belastning kan observeres ca. 24-48 timer efter det kirurgiske indgreb i studier med fokus på tidlig prognose11,13. LAL-interventionen er en populær teknik til at indsnævre det funktionelle volumen af venstre atrium (LA) ved at placere en sutursløjfe omkring den atrioventrikulære åbning. Ligeledes er der også udført mikrokirurgiske indgreb, der er målrettet mod højre atriel ligering (RAL)17,18. På samme måde målretter nogle forskere det venstre atriale vedhæng (LAA) ved hjælp af mikroklip for at reducere volumenet af LA19,20. I nogle undersøgelser påføres en kirurgisk nylontråd på den atrioventrikulære knude19,21. Et af de anvendte indgreb er LAL, som kan efterligne HLHS, men som også er den sværeste model at udføre, med meget små prøveudbytter på grund af de ekstremt fine mikrokirurgiske operationer, der kræves. I vores laboratorium udføres LAL i ovo mellem Hamburger-Hamilton (HH) trin 20 og 21, før det fælles atrium er fuldt septat 6,14,22,23. En kirurgisk sutur er placeret omkring LA, som ændrer de intrakardiale blodgennemstrømningsstrømme. I LAL-modeller af HLHS observeres øget ventrikelvægsstivhed, ændrede myofibervinkler og nedsat LV-hulrumsstørrelse14,24.

I denne videoartikel gives en detaljeret protokol og tilgang til in ovo LAL. Kort fortalt blev de befrugtede fugleembryoner inkuberet til mikrokirurgi, æggeskallen blev revnet åben, og de ydre og indre membraner blev ryddet. Embryoet blev derefter langsomt roteret, så LA var tilgængeligt. En 10-0 nylonkirurgisk sutur blev bundet til atrieknoppen, og embryoet blev returneret til sin oprindelige orientering og afsluttede LAL-proceduren25. LAL og normale ventrikler sammenlignes for vævskomprimering og ventrikelvolumen via optisk kohærenstomografi og grundlæggende histologi.

En succesfuldt udført LAL-modelpipeline, som beskrevet her, vil bidrage til grundlæggende studier med fokus på embryonal udvikling af kardiovaskulære komponenter. Denne model kan også bruges sammen med genetiske manipulationer og avancerede billeddannelsesmetoder. Ligeledes er den akutte LAL-model en stabil kilde til syge vaskulære celler til vævskulturforsøg.

Protocol

Frugtbare hvide leghorn æg fås fra pålidelige leverandører og inkuberes i henhold til universitetets godkendte retningslinjer. Chick embryoner, stadier 18 (dag 3) til 24 (dag 4) (stadierne præsenteret i denne artikel) betragtes ikke som levende hvirveldyr i henhold til Den Europæiske Unions (EU) direktiv 2010/63 / EU og retningslinjerne fra Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) i USA. Chick embryoner betragtes som “levende dyr” efter dag 19 af inkubation i henhold til amerikansk lovgivning, men ikke f…

Representative Results

Avancerede tidsopløste billeddannelsesteknikker kan anvendes til at observere de strukturelle og morfologiske ændringer på grund af LAL-intervention10. Desuden er LAL-prøver også modtagelige for molekylære og biologiske metoder 19,28. I tabel 1 gives stikprøveundersøgelser, der anvendte LAL-modelresultater. I denne sammenhæng blev LAL-intervention udført i kyllingembryoner, der nåede HH20-21. Både kontrol (sund…

Discussion

I HLHS ændres blodgennemstrømningen på grund af strukturelle defekter, hvilket fører til unormal morfologi på venstre side 4,6. Den nuværende model giver et praktisk eksperimentelt system til bedre at forstå udviklingen af HLHS og kan endda efterligne dets patogenese8. Det er imidlertid en udfordrende opgave at etablere en fuldt klinisk ækvivalent HLHS-dyremodel. Ud over den fugle-LAL-model, der præsenteres her, har nylige unders?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi anerkender Tubitak 2247A lead researcher award 120C139, der yder finansiering. Forfatterne vil også gerne takke PakTavuk Gıda. A. S., Istanbul, Tyrkiet, for at levere frugtbare æg og støtte den kardiovaskulære forskning.

Materials

10-0 nylon surgical suture Ethicon
Elastica van Gieson staining kit Sigma-Aldrich 115974 For staining connective tissues in histological sections
Ethanol absolute Interlab 64-17-5 For the sterilization step, 70% ethanol was obtained by diluting absolute ethanol with distilled water.
Incubator KUHL, Flemington, New Jersey-U.S.A AZYSS600-110
Kimwipes Interlab 080.65.002
Microscissors World Precision Instruments (WPI), Sarasota FL 555640S Vannas STR 82 mm
Parafilm M Sigma-Aldrich P7793-1EA Sealing stage for egg reincubation
Paraplast Bulk Leica Biosystems  39602012 Tissue embedding medium
Stereo Microscope Zeiss Stemi 508  Stemi 508 Used at station 1
Stereo Microscope Zeiss Stemi 2000-C Stemi 2000-C Used at station 2
Tweezer (Dumont 4 INOX #F4) Adumont & Fils, Switzerland Used to return the embryo
Tweezer (Super Fine Dumont #5SF)  World Precision Instruments (WPI), Sarasota FL 501985 Used to remove the membranes on the embryo

Referências

  1. Wang, T., et al. Congenital heart disease and risk of cardiovascular disease: A meta-analysis of cohort studies. Journal of the American Heart Association. 8 (10), e012030 (2019).
  2. Chaudhry, B., et al. The left ventricular myocardium in hypoplastic left heart syndrome. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 9 (8), 279 (2022).
  3. Lashkarinia, S. S., Çoban, G., Ermek, E., Çelik, M., Pekkan, K. Spatiotemporal remodeling of embryonic aortic arch: stress distribution, microstructure, and vascular growth in silico. Biomechanics and Modeling in Mechanobiology. 19 (5), 1897-1915 (2020).
  4. Ho, S., Chan, W. X., Yap, C. H. Fluid mechanics of the left atrial ligation chick embryonic model of hypoplastic left heart syndrome. Biomechanics and Modeling in Mechanobiology. 20 (4), 1337-1351 (2021).
  5. Gordon, B. M., Rodriguez, S., Lee, M., Chang, R. K. Decreasing number of deaths of infants with hypoplastic left heart syndrome. The Journal of Pediatrics. 153 (3), 354-358 (2008).
  6. Salman, H. E., et al. Effect of left atrial ligation-driven altered inflow hemodynamics on embryonic heart development: clues for prenatal progression of hypoplastic left heart syndrome. Biomechanics and Modeling in Mechanobiology. 20 (2), 733-750 (2021).
  7. Fruitman, D. S. Hypoplastic left heart syndrome: Prognosis and management options. Paediatrics & Child Health. 5 (4), 219-225 (2000).
  8. Rahman, A., Chaturvedi, R. R., Sled, J. G. Flow-mediated factors in the pathogenesis of hypoplastic left heart syndrome. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 9 (5), 154 (2022).
  9. Henderson, D. J., Anderson, R. H. The development and structure of the ventricles in the human heart. Pediatric Cardiology. 30 (5), 588-596 (2009).
  10. Kowalski, W. J., Pekkan, K., Tinney, J. P., Keller, B. B. Investigating developmental cardiovascular biomechanics and the origins of congenital heart defects. Frontiers in Physiology. 5, 408 (2014).
  11. Midgett, M., Rugonyi, S. Congenital heart malformations induced by hemodynamic altering surgical interventions. Frontiers in Physiology. 5, 287 (2014).
  12. Kowalski, W. J., et al. Left atrial ligation alters intracardiac flow patterns and the biomechanical landscape in the chick embryo. Developmental Dynamics. 243 (5), 652-662 (2014).
  13. Bruneau, B. G. The developmental genetics of congenital heart disease. Nature. 451 (7181), 943-948 (2008).
  14. Sedmera, D., et al. Cellular changes in experimental left heart hypoplasia. The Anatomical Record. 267 (2), 137-145 (2002).
  15. Celik, M., et al. Microstructure of early embryonic aortic arch and its reversibility following mechanically altered hemodynamic load release. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 318 (5), H1208-H1218 (2020).
  16. Tobita, K., Schroder, E. A., Tinney, J. P., Garrison, J. B., Keller, B. B. Regional passive ventricular stress-strain relations during development of altered loads in chick embryo. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 282 (6), H2386-H2396 (2002).
  17. Alser, M., Shurbaji, S., Yalcin, H. C. Mechanosensitive pathways in heart development: findings from chick embryo studies. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 8 (4), 32 (2021).
  18. Alser, M., et al. Blood flow disturbance and morphological alterations following the right atrial ligation in the chick embryo. Frontiers in Physiology. 13, 849603 (2022).
  19. Sedmera, D. HLHS: Power of the chick model. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 9 (4), 113 (2022).
  20. Rychter, Z., Rychterová, V., Lemez, L. Formation of the heart loop and proliferation structure of its wall as a base for ventricular septation. Herz. 4 (2), 86-90 (1979).
  21. Harh, J. Y., Paul, M. H., Gallen, W. J., Friedberg, D. Z., Kaplan, S. Experimental production of hypoplastic left heart syndrome in the chick embryo. The Americal Journal of Cardiology. 31 (1), 51-56 (1973).
  22. Sedmera, D., Pexieder, T., Rychterova, V., Hu, N., Clark, E. B. Remodeling of chick embryonic ventricular myoarchitecture under experimentally changed loading conditions. The Anatomical Record. 254 (2), 238-252 (1999).
  23. Karakaya, C., et al. Asymmetry in mechanosensitive gene expression during aortic arch morphogenesis. Scientific Reports. 8 (1), 16948 (2018).
  24. Trinidad, F., et al. Effect of blood flow on cardiac morphogenesis and formation of congenital heart defects. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 9 (9), 303 (2022).
  25. Tobita, K., Keller, B. B. Right and left ventricular wall deformation patterns in normal and left heart hypoplasia chick embryos. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 279 (3), H959-H969 (2000).
  26. Bortecine, S., Merve Nur, C., Faruk, K., Kerem, P. Auxiliary humidifier system design and construction for research grade egg incubators. Zenodo. , (2023).
  27. Schroder, E. A., Tobita, K., Tinney, J. P., Foldes, J. K., Keller, B. B. Microtubule involvement in the adaptation to altered mechanical load in developing chick myocardium. Circulation Research. 91 (4), 353-359 (2002).
  28. Rufaihah, A. J., Chen, C. K., Yap, C. H., Mattar, C. N. Z. Mending a broken heart: In vitro, in vivo and in silico models of congenital heart disease. Disease Models & Mechanisms. 14 (3), (2021).
  29. Siddiqui, H. B., Dogru, S., Lashkarinia, S. S., Pekkan, K. Soft-tissue material properties and mechanogenetics during cardiovascular development. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 9 (2), 64 (2022).
  30. Pesevski, Z., et al. Endocardial fibroelastosis is secondary to hemodynamic alterations in the chick embryonic model of hypoplastic left heart syndrome. Developmental Dynamics. 247 (3), 509-520 (2018).
  31. Hu, N., et al. Dependence of aortic arch morphogenesis on intracardiac blood flow in the left atrial ligated chick embryo. Anatomical Record. 292 (5), 652-660 (2009).
  32. Lashkarinia, S. S., et al. Myocardial biomechanics and the consequent differentially expressed genes of the left atrial ligation chick embryonic model of hypoplastic left heart syndrome. Annals of Biomedical Engineering. 51 (5), 1063-1078 (2023).
  33. Krejčí, E., et al. Microarray analysis of normal and abnormal chick ventricular myocardial development. Physiological Research. 61, S137-S144 (2012).
  34. Rahman, A., et al. A mouse model of hypoplastic left heart syndrome demonstrating left heart hypoplasia and retrograde aortic arch flow. Disease Models & Mechanisms. 14 (11), (2021).
  35. Fishman, N. H., Hof, R. B., Rudolph, A. M., Heymann, M. A. Models of congenital heart disease in fetal lambs. Circulation. 58 (2), 354-364 (1978).
  36. Wong, F. Y., et al. Induction of left ventricular hypoplasia by occluding the foramen ovale in the fetal lamb. Scientific Reports. 10 (1), 880 (2020).
  37. Nie, S. Use of frogs as a model to study the etiology of HLHS. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 10 (2), 51 (2023).
  38. Vilches-Moure, J. G. Embryonic chicken (Gallus gallus domesticus) as a model of cardiac biology and development. Comparative Medicine. 69 (3), 184-203 (2019).
  39. Kain, K. H., et al. The chick embryo as an expanding experimental model for cancer and cardiovascular research. Developmental Dynamics. 243 (2), 216-228 (2014).
  40. Sukparangsi, W., Thongphakdee, A., Intarapat, S. Avian embryonic culture: A perspective of in ovo to ex ovo and in vitro studies. Frontiers in Physiology. 13, 903491 (2022).

Play Video

Citar este artigo
Sevgin, B., Coban, M. N., Karatas, F., Pekkan, K. Left Atrial Ligation in the Avian Embryo as a Model for Altered Hemodynamic Loading During Early Vascular Development. J. Vis. Exp. (196), e65330, doi:10.3791/65330 (2023).

View Video