I dette arbeidet ble en decellulariseringsprotokoll optimalisert for å oppnå decellulariserte matriser av fostermusens skjelettmus. C2C12 myoblaster kan kolonisere disse matrisene, spre seg og differensiere. Denne in vitro-modellen kan brukes til å studere celleadferd i sammenheng med skjelettmuskelsykdommer som muskeldystrofi.
Den ekstracellulære matrisen (ECM) spiller en avgjørende rolle i å gi strukturell støtte til celler og formidle signaler som er viktige for ulike cellulære prosesser. Todimensjonale (2D) cellekulturmodeller overforenkler de komplekse interaksjonene mellom celler og ECM, da mangelen på en komplett tredimensjonal (3D) støtte kan endre celleadferd, noe som gjør dem utilstrekkelige for forståelse in vivo-prosesser . Mangler i ECM-sammensetning og celle-ECM-interaksjoner er viktige bidragsytere til en rekke forskjellige sykdommer.
Et eksempel er LAMA2-medfødt muskeldystrofi (LAMA2-CMD), hvor fravær eller reduksjon av funksjonell laminin 211 og 221 kan føre til alvorlig hypotoni, påviselig ved eller kort tid etter fødselen. Tidligere arbeid ved hjelp av en musemodell av sykdommen antyder at utbruddet oppstår under fosterets myogenese. Denne studien hadde som mål å utvikle en 3D in vitro-modell som tillater studiet av samspillet mellom muskelceller og fostermuskelen ECM, som etterligner det opprinnelige mikromiljøet. Denne protokollen bruker dype ryggmuskler dissekert fra E18.5 musefostre, behandlet med en hypoton buffer, et anionisk vaskemiddel og DNase. De resulterende decellulariserte matrisene (dECM) beholdt alle ECM-proteiner som ble testet (laminin α2, totale lamininer, fibronektin, kollagen I og kollagen IV) sammenlignet med det opprinnelige vevet.
Når C2C12-myoblaster ble sådd på toppen av disse dECM-ene, penetrerte og koloniserte de dECM-ene, noe som støttet deres spredning og differensiering. Videre produserte C2C12-cellene ECM-proteiner, noe som bidro til ombyggingen av deres nisje i dECM-ene. Etableringen av denne in vitro-plattformen gir en ny lovende tilnærming til å avdekke prosessene som er involvert i utbruddet av LAMA2-CMD, og har potensial til å bli tilpasset andre skjelettmuskelsykdommer der mangler i kommunikasjon mellom ECM og skjelettmuskelceller bidrar til sykdomsprogresjon.
Den ekstracellulære matrisen (ECM) er en viktig bestanddel av vev, som representerer deres ikke-cellulære komponent. Denne tredimensjonale (3D) strukturen gir ikke bare fysisk støtte til celler, men spiller også en avgjørende rolle i de biokjemiske prosessene som er involvert i utviklingen av organismer1. Dannelsen av en vevsspesifikk ECM skjer under utvikling, som et resultat av de komplekse interaksjonene mellom celler og deres nisjer, påvirket av ulike intra- og ekstracellulære stimuli. ECM er en svært dynamisk struktur som gjennomgår kjemiske og mekaniske omorganiseringer på en temporal-romlig måte og direkte påvirker celleskjebne2. En av de mest bemerkelsesverdige egenskapene til ECM er dens funksjonelle mangfold, da hvert vev ECM viser en unik kombinasjon av molekyler som gir forskjellige topologier og egenskaper som er skreddersydd for cellene den inneholder1.
ECM-signalering og støtte er avgjørende for utvikling og homeostase, og når det forstyrres, kan det føre til flere patologiske tilstander 3,4. Et eksempel er LAMA2-mangelfull medfødt dystrofi (LAMA2-CMD), som er den vanligste formen for medfødt muskeldystrofi. LAMA2-genet koder for laminin α2-kjeden, som er tilstede i laminin 211 og laminin 221, og når mutert kan føre til LAMA2-CMD5. Laminin 211 er den viktigste isoformen som finnes i kjellermembranen som omgir skjelettmuskelfibre. Når laminin 211 er unormal eller fraværende, blir koblingen mellom kjellermembranen og muskelcellene forstyrret, noe som fører til sykdomsutbruddet6. Pasienter med LAMA2-CMD viser en mild til alvorlig fenotype avhengig av type mutasjon i LAMA2-genet.
Når funksjonen til laminin α2-proteinet påvirkes, kan pasienter oppleve alvorlig muskelhypotoni ved fødselen og utvikle kronisk betennelse, fibrose og muskelatrofi, noe som fører til redusert forventet levealder. Til dags dato har ingen målrettede behandlinger blitt utviklet, og terapeutiske tilnærminger er begrenset til å lindre symptomene på sykdommen7. Derfor er forståelse av de underliggende molekylære mekanismene som er involvert i utbruddet av denne sykdommen avgjørende for å utvikle hensiktsmessige terapeutiske strategier 6,8. Tidligere arbeid med dyW-mus 9, en modell for LAMA2-CMD, antyder at sykdomsutbruddet starter i utero, spesielt under fostermyogenese10. En bedre forståelse av hvordan fostermyogenesedefekten oppstår, ville være en spillveksler i å generere nye terapeutiske tilnærminger for LAMA2-CMD.
In vitro-systemer gir et kontrollert miljø for å studere celle-celle- og celle-ECM-interaksjoner, men 2D-kulturmodeller mangler kompleksiteten til innfødte vev. Decellularisering av vev produserer vevs- og utviklingsstadiespesifikke acellulære ECM-stillaser som mer nøyaktig etterligner det naturlige cellemikromiljøet sammenlignet med 2D-modeller og konstruerte/syntetiske stillas. Decellulariserte matriser (dECM) har potensial til å bevare de molekylære og mekaniske signalene til vertsvevet, noe som gjør dem til bedre alternative modeller for forståelse in vivo-prosesser 11.
Det finnes ulike teknikker, reagenser og forhold som kan brukes til decellularisering12,13. I denne studien er en decellulariseringsprotokoll for fostermushjertet, beskrevet av Silva et al.14,15, tilpasset fostermusens skjelettmus og funnet å beholde alle testede ECM-komponenter (laminin α2, totale lamininer, fibronektin, kollagen I og kollagen IV). Protokollen inneholder tre trinn: cellelyse ved osmotisk sjokk (hypoton buffer), plasmamembranoppløsning og proteindissosiasjon (0,05% natriumdodecylsulfat [SDS]), og enzymatisk ødeleggelse av DNA (DNase-behandling). Så vidt vi vet, er dette den første etablerte protokollen for decellularisering av mus føtal skjelettmuskulatur.
For å bruke dette 3D in vitro-systemet til å studere LAMA2-CMD, er det avgjørende å opprettholde laminin α2-kjeden etter decellularisering. Derfor ble det implementert en optimaliseringsprotokoll der forskjellige vaskemidler (SDS og Triton X-100) og konsentrasjoner (0,02%, 0,05%, 0,1%, 0,2% og 0,5%) ble testet (data ikke vist). Det optimale valget for cellefjerning og konservering av laminin α2-proteinet ble funnet å være 0,05% SDS. C2C12-celler, en veletablert myoblastcellelinje16,17, ble brukt til å frø dECM. Disse cellene invaderer dECM, sprer seg og differensierer inne i disse stillasene, og syntetiserer nye ECM-proteiner. Den vellykkede produksjonen av denne 3D in vitro-modellen gir en ny tilnærming til å forstå molekylære og cellulære prosesser involvert i fostermyogenese, utbruddet av LAMA2-CMD, og kan utvides til andre muskelsykdommer der kommunikasjonen mellom ECM og skjelettmuskelceller forstyrres.
ECM er et komplekst nettverk av makromolekyler som er tilstede i alle vev og spiller en avgjørende rolle i å regulere celleadferd og funksjon2. ECM fungerer som et fysisk stillas for celler å feste seg til og gir signaler som aktivt modulerer cellulære prosesser som spredning, motilitet, differensiering og apoptose. Dermed er riktig dannelse og vedlikehold av ECM avgjørende for både utvikling og homeostase1.
Mens 2D-cellekulturmodeller har …
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble finansiert av Association Française contre les Myopathies (AFM-Téléthon; kontrakt nr. 23049), MATRIHEALTH-prosjektet og cE3c enhetsfinansiering UIDB/00329/2020. Vi vil gjerne takke vår giver Henrique Meirelles som valgte å støtte MATRIHEALTH-prosjektet. Dette arbeidet dro nytte av infrastrukturen til Det naturvitenskapelige fakultets mikroskopianlegg, en node i den portugisiske plattformen for BioImaging (referanse PPBI-POCI-01-0145-FEDER-022122), og vi takker Luís Marques for hans hjelp med bildeinnsamling og behandling. Til slutt takker vi Marta Palma for teknisk støtte og vårt forskningsteam for deres sjenerøse bidrag.
12 Well Cell Culture Plate, Flat, TC, Sterile | Abdos Labware | P21021 | |
4′,6-Diamidino-2-phenylindole dihydrochloride | Merck | D8417 | |
4–20% Mini-PROTEAN TGX Precast Gel | Bio-Rad | 4561093 | |
48 Well Cell Culture Plate, Flat, TC, Sterile | Abdos Labware | P21023 | |
96 Well Cell Culture Plate, Flat, TC, Sterile | Abdos Labware | P21024 | |
Bovine Serum Albumin, Fraction V | NZYtech | MB04601 | |
BX60 fluorescence microscope | Olympus | ||
Cryostat CM1860 UV | Leica | ||
Dithiothreitol | ThermoFisher | R0862 | |
DMEM high glucose w/ stable glutamine w/ sodium pyruvate | Biowest | L0103-500 | |
DNase I | PanReac AppliChem | A3778 | |
DNeasy Blood & Tissue Kit | Qiagen | 69506 | |
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | Merck | 108418 | |
Fetal bovine serum | Biowest | S1560-500 | |
Fine tip transfer pipette | ThermoFisher | 15387823 | |
Goat serum | Biowest | S2000-100 | |
Hera Guard Flow Cabinet | Heraeus | ||
Heracell 150 CO2 Incubator | Thermo Scientific | ||
HiMark Pre-stained Protein Standard | Invitrogen | ||
Horse Serum, New Zealand origin | Gibco | 16050122 | |
HRP-α- Rabbit IgG | abcam | ab205718 | |
HRP-α- Rat IgG | abcam | ab205720 | |
HRP-α-Mouse IgG | abcam | ab205719 | |
ImageJ v. 1.53t | |||
Methyl Green | Sigma-Aldrich | 67060 | |
MM400 Tissue Lyser | Retsch | ||
NanoDrop ND-1000 Spectrophotometer | ThermoFisher | ||
Paraformaldehyde, 16% w/v aq. soln., methanol free | Alfa Aesar | 043368-9M | |
Penicillin-Streptomycin (100x) | GRiSP | GTC05.0100 | |
Phalloidin Alexa 488 | Thermo Fisher Sci. | A12379 | |
Polystyrene Petri dish 60x15mm with vents (sterile) | Greiner Bio-One | 628161 | |
Qubit dsDNA HS kit | Thermo Scientific | Q32851 | |
Qubit™ 3 Fluorometer | Invitrogen | 15387293 | |
S6E Zoom Stereo microscope | Leica | ||
Sodium Dodecyl Sulfate | Merck | 11667289001 | |
SuperFrost® Plus adhesion slides | Thermo Scientific | 631-9483 | |
SuperSignal West Pico PLUS Chemiluminescent Substrate | Thermo Scientific | 15626144 | |
TCS SPE confocal microscope | Leica | ||
Tris-(hidroximetil) aminometano (Tris base) ≥99% | VWR Chemicals | 28811.295 | |
Triton X-100 | Sigma-Aldrich | X100-100ML | |
Trypan Blue Solution, 0.4% | Gibco | 15250061 | |
Trypsin-EDTA (0.05%) in DPBS (1X) | GRiSP | GTC02.0100 | |
TWEEN 20 (50% Solution) | ThermoFisher | 3005 | |
WesternBright PVDF-CL membrane roll (0.22µm) | Advansta | L-08024-001 | |
α-Collagen I | abcam | ab21286 | |
α-Collagen IV | Millipore | AB756P | |
α-Collagen IV | Santa Cruz Biotechnology | sc-398655 | |
α-Fibronectin | Sigma | F-3648 | |
α-Laminin α2 | Sigma | L-0663 | |
α-MHC | D.S.H.B. | MF20 | |
α-Mouse Alexa 488 | Molecular Probes | A11017 | |
α-Mouse Alexa 568 | Molecular Probes | A11019 | |
α-pan-Laminin | Sigma | L- 9393 | |
α-phospho-histone 3 | Merk Millipore | 06-570 | |
α-Rabbit Alexa 568 | Molecular Probes | A21069 | |
α-Rabbit Alexa 488 | Molecular Probes | A11070 | |
α-Rat Alexa 488 | Molecular Probes | A11006 |