Summary

Forberedelse av 3D decellulariserte matriser fra musens skjelettmus for cellekultur

Published: March 03, 2023
doi:

Summary

I dette arbeidet ble en decellulariseringsprotokoll optimalisert for å oppnå decellulariserte matriser av fostermusens skjelettmus. C2C12 myoblaster kan kolonisere disse matrisene, spre seg og differensiere. Denne in vitro-modellen kan brukes til å studere celleadferd i sammenheng med skjelettmuskelsykdommer som muskeldystrofi.

Abstract

Den ekstracellulære matrisen (ECM) spiller en avgjørende rolle i å gi strukturell støtte til celler og formidle signaler som er viktige for ulike cellulære prosesser. Todimensjonale (2D) cellekulturmodeller overforenkler de komplekse interaksjonene mellom celler og ECM, da mangelen på en komplett tredimensjonal (3D) støtte kan endre celleadferd, noe som gjør dem utilstrekkelige for forståelse in vivo-prosesser . Mangler i ECM-sammensetning og celle-ECM-interaksjoner er viktige bidragsytere til en rekke forskjellige sykdommer.

Et eksempel er LAMA2-medfødt muskeldystrofi (LAMA2-CMD), hvor fravær eller reduksjon av funksjonell laminin 211 og 221 kan føre til alvorlig hypotoni, påviselig ved eller kort tid etter fødselen. Tidligere arbeid ved hjelp av en musemodell av sykdommen antyder at utbruddet oppstår under fosterets myogenese. Denne studien hadde som mål å utvikle en 3D in vitro-modell som tillater studiet av samspillet mellom muskelceller og fostermuskelen ECM, som etterligner det opprinnelige mikromiljøet. Denne protokollen bruker dype ryggmuskler dissekert fra E18.5 musefostre, behandlet med en hypoton buffer, et anionisk vaskemiddel og DNase. De resulterende decellulariserte matrisene (dECM) beholdt alle ECM-proteiner som ble testet (laminin α2, totale lamininer, fibronektin, kollagen I og kollagen IV) sammenlignet med det opprinnelige vevet.

Når C2C12-myoblaster ble sådd på toppen av disse dECM-ene, penetrerte og koloniserte de dECM-ene, noe som støttet deres spredning og differensiering. Videre produserte C2C12-cellene ECM-proteiner, noe som bidro til ombyggingen av deres nisje i dECM-ene. Etableringen av denne in vitro-plattformen gir en ny lovende tilnærming til å avdekke prosessene som er involvert i utbruddet av LAMA2-CMD, og har potensial til å bli tilpasset andre skjelettmuskelsykdommer der mangler i kommunikasjon mellom ECM og skjelettmuskelceller bidrar til sykdomsprogresjon.

Introduction

Den ekstracellulære matrisen (ECM) er en viktig bestanddel av vev, som representerer deres ikke-cellulære komponent. Denne tredimensjonale (3D) strukturen gir ikke bare fysisk støtte til celler, men spiller også en avgjørende rolle i de biokjemiske prosessene som er involvert i utviklingen av organismer1. Dannelsen av en vevsspesifikk ECM skjer under utvikling, som et resultat av de komplekse interaksjonene mellom celler og deres nisjer, påvirket av ulike intra- og ekstracellulære stimuli. ECM er en svært dynamisk struktur som gjennomgår kjemiske og mekaniske omorganiseringer på en temporal-romlig måte og direkte påvirker celleskjebne2. En av de mest bemerkelsesverdige egenskapene til ECM er dens funksjonelle mangfold, da hvert vev ECM viser en unik kombinasjon av molekyler som gir forskjellige topologier og egenskaper som er skreddersydd for cellene den inneholder1.

ECM-signalering og støtte er avgjørende for utvikling og homeostase, og når det forstyrres, kan det føre til flere patologiske tilstander 3,4. Et eksempel er LAMA2-mangelfull medfødt dystrofi (LAMA2-CMD), som er den vanligste formen for medfødt muskeldystrofi. LAMA2-genet koder for laminin α2-kjeden, som er tilstede i laminin 211 og laminin 221, og når mutert kan føre til LAMA2-CMD5. Laminin 211 er den viktigste isoformen som finnes i kjellermembranen som omgir skjelettmuskelfibre. Når laminin 211 er unormal eller fraværende, blir koblingen mellom kjellermembranen og muskelcellene forstyrret, noe som fører til sykdomsutbruddet6. Pasienter med LAMA2-CMD viser en mild til alvorlig fenotype avhengig av type mutasjon i LAMA2-genet.

Når funksjonen til laminin α2-proteinet påvirkes, kan pasienter oppleve alvorlig muskelhypotoni ved fødselen og utvikle kronisk betennelse, fibrose og muskelatrofi, noe som fører til redusert forventet levealder. Til dags dato har ingen målrettede behandlinger blitt utviklet, og terapeutiske tilnærminger er begrenset til å lindre symptomene på sykdommen7. Derfor er forståelse av de underliggende molekylære mekanismene som er involvert i utbruddet av denne sykdommen avgjørende for å utvikle hensiktsmessige terapeutiske strategier 6,8. Tidligere arbeid med dyW-mus 9, en modell for LAMA2-CMD, antyder at sykdomsutbruddet starter i utero, spesielt under fostermyogenese10. En bedre forståelse av hvordan fostermyogenesedefekten oppstår, ville være en spillveksler i å generere nye terapeutiske tilnærminger for LAMA2-CMD.

In vitro-systemer gir et kontrollert miljø for å studere celle-celle- og celle-ECM-interaksjoner, men 2D-kulturmodeller mangler kompleksiteten til innfødte vev. Decellularisering av vev produserer vevs- og utviklingsstadiespesifikke acellulære ECM-stillaser som mer nøyaktig etterligner det naturlige cellemikromiljøet sammenlignet med 2D-modeller og konstruerte/syntetiske stillas. Decellulariserte matriser (dECM) har potensial til å bevare de molekylære og mekaniske signalene til vertsvevet, noe som gjør dem til bedre alternative modeller for forståelse in vivo-prosesser 11.

Det finnes ulike teknikker, reagenser og forhold som kan brukes til decellularisering12,13. I denne studien er en decellulariseringsprotokoll for fostermushjertet, beskrevet av Silva et al.14,15, tilpasset fostermusens skjelettmus og funnet å beholde alle testede ECM-komponenter (laminin α2, totale lamininer, fibronektin, kollagen I og kollagen IV). Protokollen inneholder tre trinn: cellelyse ved osmotisk sjokk (hypoton buffer), plasmamembranoppløsning og proteindissosiasjon (0,05% natriumdodecylsulfat [SDS]), og enzymatisk ødeleggelse av DNA (DNase-behandling). Så vidt vi vet, er dette den første etablerte protokollen for decellularisering av mus føtal skjelettmuskulatur.

For å bruke dette 3D in vitro-systemet til å studere LAMA2-CMD, er det avgjørende å opprettholde laminin α2-kjeden etter decellularisering. Derfor ble det implementert en optimaliseringsprotokoll der forskjellige vaskemidler (SDS og Triton X-100) og konsentrasjoner (0,02%, 0,05%, 0,1%, 0,2% og 0,5%) ble testet (data ikke vist). Det optimale valget for cellefjerning og konservering av laminin α2-proteinet ble funnet å være 0,05% SDS. C2C12-celler, en veletablert myoblastcellelinje16,17, ble brukt til å frø dECM. Disse cellene invaderer dECM, sprer seg og differensierer inne i disse stillasene, og syntetiserer nye ECM-proteiner. Den vellykkede produksjonen av denne 3D in vitro-modellen gir en ny tilnærming til å forstå molekylære og cellulære prosesser involvert i fostermyogenese, utbruddet av LAMA2-CMD, og kan utvides til andre muskelsykdommer der kommunikasjonen mellom ECM og skjelettmuskelceller forstyrres.

Protocol

Alle metodene som er beskrevet ble godkjent av dyrevelferdskomiteen (ORBEA) ved Det naturvitenskapelige fakultet, Universitetet i Lisboa, og Direção Geral de Veterinária (DGAV; ref. 0421/000/000/2022), og er i samsvar med EU-direktivet 2010/63 / EU. 1. Fremstilling av decellulariseringsbuffere og reagenser MERK: Alle løsninger som brukes under decellulariseringsprotokollen skal steriliseres ved autoklavering og lagres i opptil 3 måneder med mindr…

Representative Results

Målet med decellulariseringsprotokollen er å produsere dECM som ligner sammensetningen av innfødt vev. For å bestemme effektiviteten av decellulariseringsprosessen ble forskjellige metoder anvendt, inkludert undersøkelse av vevsmorfologi, måling av DNA-nivåer, farging for F-aktin og analyse av viktige ECM-komponenter ved bruk av immunhistokjemi og vestlige blottingsteknikker. Spesielt ble fem store ECM-komponenter i skjelettmuskulaturvev analysert. Gjennom hele protokollen endrer prøve…

Discussion

ECM er et komplekst nettverk av makromolekyler som er tilstede i alle vev og spiller en avgjørende rolle i å regulere celleadferd og funksjon2. ECM fungerer som et fysisk stillas for celler å feste seg til og gir signaler som aktivt modulerer cellulære prosesser som spredning, motilitet, differensiering og apoptose. Dermed er riktig dannelse og vedlikehold av ECM avgjørende for både utvikling og homeostase1.

Mens 2D-cellekulturmodeller har …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble finansiert av Association Française contre les Myopathies (AFM-Téléthon; kontrakt nr. 23049), MATRIHEALTH-prosjektet og cE3c enhetsfinansiering UIDB/00329/2020. Vi vil gjerne takke vår giver Henrique Meirelles som valgte å støtte MATRIHEALTH-prosjektet. Dette arbeidet dro nytte av infrastrukturen til Det naturvitenskapelige fakultets mikroskopianlegg, en node i den portugisiske plattformen for BioImaging (referanse PPBI-POCI-01-0145-FEDER-022122), og vi takker Luís Marques for hans hjelp med bildeinnsamling og behandling. Til slutt takker vi Marta Palma for teknisk støtte og vårt forskningsteam for deres sjenerøse bidrag.

Materials

12 Well Cell Culture Plate, Flat, TC, Sterile Abdos Labware P21021
4′,6-Diamidino-2-phenylindole dihydrochloride Merck D8417
4–20% Mini-PROTEAN TGX Precast Gel Bio-Rad 4561093
48 Well Cell Culture Plate, Flat, TC, Sterile Abdos Labware P21023
96 Well Cell Culture Plate, Flat, TC, Sterile Abdos Labware P21024
Bovine Serum Albumin, Fraction V NZYtech MB04601
BX60 fluorescence microscope Olympus
Cryostat CM1860 UV Leica
Dithiothreitol ThermoFisher R0862
DMEM high glucose w/ stable glutamine w/ sodium pyruvate Biowest L0103-500
DNase I PanReac AppliChem A3778
DNeasy Blood & Tissue Kit Qiagen 69506
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Merck 108418
Fetal bovine serum Biowest S1560-500
Fine tip transfer pipette ThermoFisher 15387823
Goat serum Biowest S2000-100
Hera Guard Flow Cabinet Heraeus
Heracell 150 CO2 Incubator Thermo Scientific
HiMark Pre-stained Protein Standard Invitrogen
Horse Serum, New Zealand origin Gibco 16050122
HRP-α- Rabbit IgG abcam ab205718
HRP-α- Rat IgG abcam ab205720
HRP-α-Mouse IgG abcam ab205719
ImageJ v. 1.53t
Methyl Green Sigma-Aldrich 67060
MM400 Tissue Lyser Retsch
NanoDrop ND-1000 Spectrophotometer ThermoFisher
Paraformaldehyde, 16% w/v aq. soln., methanol free Alfa Aesar 043368-9M
Penicillin-Streptomycin (100x) GRiSP GTC05.0100
Phalloidin Alexa 488 Thermo Fisher Sci. A12379
Polystyrene Petri dish 60x15mm with vents (sterile) Greiner Bio-One 628161
Qubit dsDNA HS kit Thermo Scientific Q32851
Qubit™ 3 Fluorometer Invitrogen 15387293
S6E Zoom Stereo microscope Leica
Sodium Dodecyl Sulfate Merck 11667289001
SuperFrost® Plus adhesion slides Thermo Scientific 631-9483
SuperSignal West Pico PLUS Chemiluminescent Substrate Thermo Scientific 15626144
TCS SPE confocal microscope Leica
Tris-(hidroximetil) aminometano (Tris base) ≥99% VWR Chemicals 28811.295
Triton X-100 Sigma-Aldrich X100-100ML
Trypan Blue Solution, 0.4% Gibco 15250061
Trypsin-EDTA (0.05%) in DPBS (1X) GRiSP GTC02.0100
TWEEN 20 (50% Solution) ThermoFisher 3005
WesternBright PVDF-CL membrane roll (0.22µm) Advansta L-08024-001
α-Collagen I abcam ab21286
α-Collagen IV Millipore AB756P
α-Collagen IV Santa Cruz Biotechnology sc-398655
α-Fibronectin Sigma F-3648
α-Laminin α2 Sigma L-0663
α-MHC D.S.H.B. MF20
α-Mouse Alexa 488 Molecular Probes A11017
α-Mouse Alexa 568 Molecular Probes A11019
α-pan-Laminin Sigma L- 9393
α-phospho-histone 3 Merk Millipore 06-570
α-Rabbit Alexa 568 Molecular Probes A21069
α-Rabbit Alexa 488 Molecular Probes A11070
α-Rat Alexa 488 Molecular Probes A11006

Referências

  1. Mecham, R. P. Overview of extracellular matrix. Current Protocols in Cell Biology. 10, 1-16 (2012).
  2. Frantz, C., Stewart, K. M., Weaver, V. M. The extracellular matrix at a glance. Journal of Cell Science. 123 (24), 4195-4200 (2010).
  3. Lamandé, S. R., Bateman, J. F. Genetic disorders of the extracellular matrix. Anatomical Record. 303 (6), 1527-1542 (2020).
  4. Ahmad, K., Shaikh, S., Ahmad, S. S., Lee, E. J., Choi, I. Cross-talk between extracellular matrix and skeletal muscle: implications for myopathies. Frontiers in Pharmacology. 11, 142 (2020).
  5. Tome, F. M., et al. Congenital muscular dystrophy with merosin deficiency. Comptes Rendus de l’Academie des Sciences. Serie III, Sciences de la Vie. 317 (4), 351-357 (1994).
  6. Gawlik, K. I., Durbeej, M. Skeletal muscle laminin and MDC1A: pathogenesis and treatment strategies. Skeletal Muscle. 1 (1), 9 (2011).
  7. van Ry, P. M., et al. ECM-related myopathies and muscular dystrophies: pros and cons of protein therapies. Comprehensive Physiology. 7 (4), 1519-1536 (2017).
  8. Gawlik, K. I., Durbeej, M. A family of laminin α2 chain-deficient mouse mutants: advancing the research on LAMA2-CMD. Frontiers in Molecular Neuroscience. 13, 59 (2020).
  9. Kuang, W., et al. Merosin-deficient congenital muscular dystrophy. Partial genetic correction in two mouse models. Journal of Clinical Investigation. 102 (4), 844-852 (1998).
  10. Nunes, A. M., et al. Impaired fetal muscle development and JAK-STAT activation mark disease onset and progression in a mouse model for merosin-deficient congenital muscular dystrophy. Human Molecular Genetics. 26 (11), 2018-2033 (2017).
  11. McCrary, M. W., Bousalis, D., Mobini, S., Song, Y. H., Schmidt, C. E. Decellularized tissues as platforms for in vitro modeling of healthy and diseased tissues. Acta Biomaterialia. 111, 1-19 (2020).
  12. Crapo, P. M., Gilbert, T. W., Badylak, S. F. An overview of tissue and whole organ decellularization processes. Biomaterials. 32 (12), 3233-3243 (2011).
  13. Philips, C., Terrie, L., Thorrez, L. Decellularized skeletal muscle: A versatile biomaterial in tissue engineering and regenerative medicine. Biomaterials. 283, 121436 (2022).
  14. Silva, A. C., et al. Comparable decellularization of fetal and adult cardiac tissue explants as 3D-like platforms for in vitro studies. Journal of Visualized Experiments. (145), e56924 (2019).
  15. Silva, A. C., et al. Three-dimensional scaffolds of fetal decellularized hearts exhibit enhanced potential to support cardiac cells in comparison to the adult. Biomaterials. 104, 52-64 (2016).
  16. Yaffe, D., Saxel, O. Serial passaging and differentiation of myogenic cells isolated from dystrophic mouse muscle. Nature. 270 (5639), 725-727 (1977).
  17. Burattini, S., et al. C2C12 murine myoblasts as a model of skeletal muscle development: morpho-functional characterization. European Journal of Histochemistry. 48 (3), 223-233 (2004).
  18. Murphy, D. Caesarean section and fostering. Methods in Molecular Biology. 18, 177-178 (1993).
  19. Prieto, D., Aparicio, G., Machado, M., Zolessi, F. R. Application of the DNA-specific stain methyl green in the fluorescent labeling of embryos. Journal of Visualized Experiments. (99), e52769 (2015).
  20. Lichtman, J. W., Conchello, J. -. A. Fluorescence microscopy. Nature Methods. 2 (12), 910-919 (2005).
  21. Jonkman, J., Brown, C. M., Wright, G. D., Anderson, K. I., North, A. J. Tutorial: guidance for quantitative confocal microscopy. Nature Protocols. 15 (5), 1585-1611 (2020).
  22. Paulsson, M. A.T.S. Biosynthesis, tissue distribution and isolation of laminins. The Laminins. , 1-26 (1994).
  23. Fedecostante, M., et al. Recellularized native kidney scaffolds as a novel tool in nephrotoxicity screening. Drug Metabolism and Disposition: the Biological Fate of Chemicals. 46 (9), 1338-1350 (2018).
  24. Wagner, D. E., et al. Comparative decellularization and recellularization of normal versus emphysematous human lungs. Biomaterials. 35 (10), 3281-3297 (2014).
  25. Brouki Milan, P., et al. Decellularization and preservation of human skin: A platform for tissue engineering and reconstructive surgery. Methods. 171, 62-67 (2020).
  26. Lamandé, S. R., Bateman, J. F. Collagen VI disorders: Insights on form and function in the extracellular matrix and beyond. Matrix Biology. 71, 348-367 (2018).
  27. Baptista, P. M., et al. The use of whole organ decellularization for the generation of a vascularized liver organoid. Hepatology. 53 (2), 604-617 (2011).
  28. White, L. J., et al. The impact of detergents on the tissue decellularization process: a ToF-SIMS study. Acta Biomaterialia. 50, 207-219 (2017).
  29. Nakayama, K. H., Batchelder, C. A., Lee, C. I., Tarantal, A. F. Renal tissue engineering with decellularized rhesus monkey kidneys: age-related differences. Tissue Engineering. Part A. 17 (23-24), 2891-2901 (2011).
  30. Ma, X., et al. Development and in vivo validation of tissue-engineered, small-diameter vascular grafts from decellularized aortae of fetal pigs and canine vascular endothelial cells. Journal of Cardiothoracic Surgery. 12 (1), 101 (2017).
  31. Wu Young, M. Y., et al. Decellularized fetal matrix suppresses fibrotic gene expression and promotes myogenesis in a rat model of volumetric muscle loss. Plastic and Reconstructive Surgery. 146 (3), 552-562 (2020).

Play Video

Citar este artigo
Gameiro dos Santos, P., Soares, A. R., Thorsteinsdóttir, S., Rodrigues, G. Preparation of 3D Decellularized Matrices from Fetal Mouse Skeletal Muscle for Cell Culture. J. Vis. Exp. (193), e65069, doi:10.3791/65069 (2023).

View Video