Summary

생체 내에서 처리되는 신경 칼슘의 세포 내 이미징

Published: March 17, 2023
doi:

Summary

현재 방법은 쉽게 사용할 수 있는 유전적으로 암호화된 칼슘 지표를 사용하여 예쁜꼬마선충에서 생체 내 고해상도 하위 구획 칼슘 이미징을 위한 비비율계량 접근 방식을 설명합니다.

Abstract

칼슘(Ca2+) 이미징은 뉴런 활동을 조사하는 데 주로 사용되어 왔지만, 세포내Ca2+ 처리가 세포내 신호전달의 중요한 구성 요소라는 것이 점점 더 분명해지고 있습니다. 생체 내에서 세포 내 Ca2+ 역학의 시각화는 뉴런이 원래의 온전한 회로에서 연구될 수 있으며, 복잡한 신경계에서 기술적으로 어려운 것으로 입증되었습니다. 선충 Caenorhabditis elegans의 투명성과 비교적 단순한 신경계는 형광 태그 및 지표의 세포 특이적 발현 및 생체 내 시각화를 가능하게 합니다. 이들 중에는 세포질뿐만 아니라 미토콘드리아와 같은 다양한 세포 내 구획에서 사용하도록 변형 된 형광 지표가 있습니다. 이 프로토콜은 개별 수지상 가시 및 미토콘드리아 수준까지 Ca 2+ 역학을 분석할 수 있는 세포 내 분해능으로 생체 내에서 비비율계량 Ca2+ 이미징을 가능하게 합니다. 여기서, 상이한 Ca2+ 친화도를 갖는 2개의 이용가능한 유전적으로 암호화된 지표가 단일 쌍의 흥분성 중간 뉴런 (AVA)에서 세포질 또는 미토콘드리아 매트릭스 내의 상대적Ca2+ 수준을 측정하기 위한 이 프로토콜의 사용을 입증하기 위해 사용된다. 예쁜꼬마선충에서 가능한 유전자 조작 및 종단 관찰과 함께 이 이미징 프로토콜은 Ca2+ 처리가 신경 기능과 가소성을 조절하는 방법에 관한 질문에 답하는 데 유용할 수 있습니다.

Introduction

칼슘 이온(Ca2+)은 많은 세포 유형에서 매우 다재다능한 정보 전달체입니다. 뉴런에서,Ca2+는 신경전달물질의 활성-의존적 방출, 세포골격 운동성의 조절, 대사 과정의 미세 조정, 그리고 적절한 뉴런 유지와 기능에 필요한 다른 많은 기전을 담당한다 1,2. 효과적인 세포내 신호전달을 보장하기 위해, 뉴런은 세포질에서 낮은 기저 Ca2+ 수준을 유지해야 한다3. 이것은 소포체(ER) 및 미토콘드리아와 같은 세포 기관으로의 Ca2+ 흡수를 포함하는 협력적 Ca2+ 처리 메커니즘에 의해 달성됩니다. 이러한 과정은, 원형질막에서 Ca2+-투과성 이온 채널의 배열에 더하여, 뉴런 전체에 걸쳐 이질적인 수준의 세포질Ca2+ 초래한다.

휴지기 및 뉴런 활성화 동안 Ca2+ 이질성은Ca2+-의존적 메카니즘의 다양한, 위치-특이적조절을 허용한다1. Ca2+의 농도-특이적 효과의 한 예는 이노시톨 1,4,5-삼인산(InsP3) 수용체를 통해 ER로부터Ca2+의 방출이다. InsP3와 조합된 낮은 Ca2+ 수준은 수용체의 칼슘 투과성 기공을 여는 데 필요합니다. 대안적으로, 높은Ca2+ 수준은 수용체4를 직접 및 간접적으로 억제한다. 적절한 뉴런 기능을 위한 Ca2+ 항상성의 중요성은 세포내Ca2+ 처리 및 신호전달의 중단이 신경퇴행성 장애 및 자연노화의 발병기전의 초기 단계임을 시사하는 증거에 의해 뒷받침된다 5,6. 특히, ER 및 미토콘드리아에 의한 비정상적인 Ca2+ 흡수 및 방출은 알츠하이머병, 파킨슨병 및 헌팅턴병에서 뉴런 기능 장애의 발병과 관련이 있다 6,7.

자연 노화 또는 신경변성 동안 Ca2+ 항상성 이상에 대한 연구는 천연 세포 구조(즉, 시냅스의 배열 및 이온 채널의 분포)가 유지되는 살아 있는 온전한 유기체에서 세포하 분해능을 갖는Ca2+ 수준의 종단적 관찰을 필요로 한다. 이를 위해, 이 프로토콜은 높은 공간 및 시간 분해능으로 생체 내에서 Ca2+ 역학을 기록하기 위해 쉽게 이용가능한, 유전적으로 인코딩된 2개의 Ca2+ 센서의 사용에 대한 지침을 제공한다. 예쁜꼬마선충(C. elegans)에 기술된 방법을 사용하여 얻은 대표적인 결과는 단일 뉴런의 세포질 또는 미토콘드리아 기질에서Ca2+ 지표의 발현이 단일 척추 유사 구조 및 개별 미토콘드리아 내에서 Ca2+ 수준을 식별하는 추가 능력과 함께 Ca2+ 역학을 설명하는 형광 이미지(최대 50Hz)의 신속한 획득을 허용할 수 있는 방법을 보여줍니다.

Protocol

1. 형질전환 균주 생성 선택8,9의 클로닝 방법을 사용하여, 발현 벡터를 복제하여 Pflp-18 또는 Prig-3 프로모터(복부 신경줄의 AVA 특이적 신호에 대해), 선택의Ca2+ 지표, 그 다음 3′ UTR(자세한 내용은 논의 참조)10. 플라스미드 및 그 공급원의 목록은 보충 표 1에서 찾을 수 있습니다. …

Representative Results

이 두 가지 프로토콜은 높은 공간 분해능으로 생체 내 개별 신경돌기의 세포 내 영역 및 세포 기관 내에서 차등 Ca2+ 수준을 빠르게 획득할 수 있도록 합니다. 첫 번째 프로토콜은 높은 시간적 및 공간적 분해능으로 세포질Ca2+의 측정을 허용합니다. 이것은 신경돌기가 복부 신경줄의 전체 길이를 달리는 글루타메이트성 AVA 명령 중간 뉴런15에서 GCaMP6f의 세포…

Discussion

설명된 방법을 구현할 때 첫 번째 고려 사항은 주어진 연구 질문에 대해 이상적인 특성을 가진Ca2+ 지표를 선택하는 것입니다. 세포질 Ca2+ 지표는 전형적으로 Ca2+에 대해 높은 친화도를 가지며,Ca2+에 대한 이들 지표의 민감도는 동역학(on/off rate)16,17과 반비례한다. 이는 Ca2+ 감도 또는 동역학이 관심 현상에 따라 우…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 작업은 국립 보건원 (NIH) (R01-NS115947이 F. Hoerndli에게 수여됨)의 지원을 받았습니다. 또한 pAS1 플라스미드에 대해 Attila Stetak 박사에게도 감사드립니다.

Materials

100x/1.40 Oil objective   Olympus   UPlanSApo
10x/0.40 Objective  Olympus   UPlanSApo
22 mm x 22 mm Cover glass  VWR  48366-227 
Agarose SFR  VWR  J234-100G 
Beam homogenizer Andor Technologies Borealis upgrade to CSU-X1
CleanBench laboratory table  TMC  With vibration control
Disposable culture tubes VWR  47729-572  13 mm x 100 mm
Environmental chamber Thermo Scientific 3940 Set to 20 °C
Filter wheel or slider ASI For 25 mm diameter filters
FJH 185 Caenorhabditis Genetics Center  FJH 185 Worm strain
FJH 597 Caenorhabditis Genetics Center FJH 597 Worm strain
GFP bandpass emission filter  Chroma  525 ± 50 nm (25 mm diameter)
ILE laser combiner  Andor Technologies  4 laser lines 
ILE solid state 488 nm laser Andor Technologies  50 mW
ImageJ National Institutes of Health Version 1.52a
IX83 Spinning disk confocal microscope  Olympus  With Yokogawa CSU-X1 spinning disc
iXon Ultra EMCCD camera  Andor Technologies 
Low auto-fluorescence immersion oil  Olympus  Z-81226
MetaMorph  Molecular Devices  Version 7.10.1 
Microscope control box Olympus IX3-CBH
Muscimol  MP Biomedical / Sigma 02195336-CF 
pAS1 AddGene 194970 Plasmid
pBSKS Stratagene
pCT61 Plasmid available from Hoerndli/Maricq lab upon request
pJM23 Plasmid available from Hoerndli/Maricq lab upon request
pKK1  AddGene  194969 Plasmid
Polybead microspheres  Polysciences Inc.  00876-15  0.094 µm
Stability chamber Norlake Scientific NSRI241WSW/8H Set to 15 °C
Stage controller ASI With filter wheel control
Standard microscope slide Premiere 9108W-E 75 mm x 25 mm x 1 mm
Touch panel controller Olympus I3-TPC
Z-drift corrector  Olympus  IX3-ZDC2

Referências

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Citar este artigo
Doser, R., Knight, K. M., Deihl, E., Hoerndli, F. Subcellular Imaging of Neuronal Calcium Handling In Vivo. J. Vis. Exp. (193), e64928, doi:10.3791/64928 (2023).

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