Summary

Generación de organoides retinianos a partir de células madre pluripotentes sanas y específicas de la enfermedad retiniana inducida por humanos

Published: December 09, 2022
doi:

Summary

Este protocolo describe un método eficiente para diferenciar las hiPSC en grupos de campo ocular y generar organoides neurorretinianos utilizando condiciones de cultivo simplificadas que involucran sistemas de cultivo adherentes y en suspensión. Otros tipos de células oculares, como el EPR y el epitelio corneal, también se pueden aislar de campos oculares maduros en cultivos de retina.

Abstract

Las células madre pluripotentes pueden generar organoides tisulares complejos que son útiles para estudios de modelado de enfermedades in vitro y para desarrollar terapias regenerativas. Este protocolo describe un método más simple, robusto y gradual para generar organoides retinianos en un sistema de cultivo híbrido que consiste en cultivos monocapa adherentes durante las primeras 4 semanas de diferenciación retiniana hasta la aparición de grupos primordiales de campo ocular (EFP) distintos y autoorganizados. Además, las islas neurorretinianas en forma de rosquilla, circulares y translúcidas dentro de cada EFP se recogen manualmente y se cultivan bajo suspensión utilizando placas de cultivo no adherentes en un medio de diferenciación retiniana durante 1-2 semanas para generar copas ópticas 3D multicapa (OC-1M). Estos organoides retinianos inmaduros contienen precursores retinianos multipotentes proliferantes PAX6+ y ChX10+. Las células precursoras se autoensamblan linealmente dentro de los organoides y aparecen como estrías radiales distintas. A las 4 semanas después del cultivo en suspensión, los progenitores retinianos sufren un paro postmitótico y diferenciación de linaje para formar organoides retinianos maduros (OC-2M). Los precursores comprometidos con el linaje fotorreceptor se desarrollan dentro de las capas más externas de los organoides retinianos. Estas células fotorreceptoras CRX+ y RCVRN+ maduran morfológicamente para mostrar extensiones similares a segmentos internos. Este método se puede adoptar para generar organoides retinianos utilizando células madre embrionarias humanas (hESCs) y células madre pluripotentes inducidas (iPSCs). Todos los pasos y procedimientos están claramente explicados y demostrados para garantizar la replicabilidad y para aplicaciones más amplias en ciencia básica e investigación traslacional.

Introduction

La retina es un tejido sensible a la luz presente en la parte posterior del ojo de los vertebrados que convierte las señales de luz en impulsos nerviosos por un fenómeno bioquímico conocido como la vía de fototransducción. Los impulsos nerviosos iniciales generados en las células fotorreceptoras de la retina se transducen a otras interneuronas retinianas y células ganglionares de la retina (CGR) y llegan a la corteza visual del cerebro, lo que ayuda en la percepción de la imagen y la respuesta visual.

Según la Organización Mundial de la Salud (OMS), se estima que 1,5 millones de niños son ciegos, de los cuales 1 millón están en Asia. La distrofia retiniana hereditaria (IRD) es una enfermedad cegadora importante que afecta a 1 de cada 4.000 individuos en todo el mundo 1,2,3, mientras que la prevalencia de ceguera asociada con la degeneración macular relacionada con la edad (DMAE) oscila entre el 0,6% y el 1,1% en los países en desarrollo 4. Los IRD son causados por defectos genéticos heredados en más de 300 genes diferentes involucrados en el desarrollo y la función de la retina5. Tales cambios genéticos resultan en la interrupción de las funciones normales de la retina y la degeneración gradual de las células de la retina, a saber, las células fotorreceptoras y el epitelio pigmentado de la retina (EPR), lo que conduce a una pérdida severa de la visión y ceguera. Se ha logrado un enorme progreso en otras condiciones de cegamiento que involucran la córnea, el cristalino, etc. Sin embargo, las distrofias de retina y las atrofias del nervio óptico no tienen ninguna terapia probada hasta la fecha. Dado que una retina humana adulta no tiene células madre6, fuentes alternativas como las células madre embrionarias (CES) y las células madre pluripotentes inducidas derivadas del paciente (iPSC) pueden proporcionar un suministro ilimitado de los tipos de células deseados y son muy prometedoras para el desarrollo de organoides tisulares complejos necesarios para estudios de modelado de enfermedades in vitro y para el desarrollo de terapias regenerativas7, 8,9,10.

Varios años de investigación en retina han llevado a una mejor comprensión de los eventos moleculares que orquestan el desarrollo temprano de la retina. La mayoría de los protocolos para generar células retinianas y organoides 3D a partir de PSC tienen como objetivo recapitular estos eventos de desarrollo in vitro, cultivando las células en un complejo cóctel de factores de crecimiento y moléculas pequeñas para modular los procesos biológicos conocidos de manera gradual. Los organoides retinianos así generados están compuestos por las principales células de la retina: células ganglionares de la retina (CGR), interneuronas, fotorreceptores y epitelio pigmentado de la retina (EPR)11,12,13,14,15,16,17,18,19 . A pesar de los intentos exitosos de modelar IRD utilizando organoides retinianos, el requisito del complejo cóctel de factores de crecimiento y moléculas pequeñas durante la diferenciación y la eficiencia relativamente baja de la generación de organoides retinianos plantea un gran desafío con la mayoría de los protocolos. Incluyen principalmente la formación de cuerpos embrioides, seguida de su diferenciación gradual en linajes retinianos utilizando condiciones de cultivo complejas en diferentes etapas de desarrollo in vitro 20,21,22.

Aquí, se informa un método simplificado y robusto para desarrollar organoides neurorretinianos 3D complejos a partir de control sano y hiPSC específicas de la enfermedad retiniana. El protocolo descrito aquí utiliza la diferenciación directa de cultivos hiPSC casi confluentes sin necesidad de formación de cuerpo embrioide. Además, la complejidad del medio de cultivo se simplifica, lo que lo convierte en una técnica rentable y reproducible que puede ser fácilmente adoptada por los nuevos investigadores. Implica un sistema de cultivo híbrido que consiste en cultivos monocapa adherentes durante las primeras 4 semanas de diferenciación retiniana hasta la aparición de grupos primordiales de campo ocular (EFP) distintos y autoorganizados. Además, las islas neurorretinianas circulares dentro de cada EFP se recogen manualmente y se cultivan en cultivos en suspensión durante 1-2 semanas para preparar copas retinianas 3D de múltiples capas u organoides que consisten en precursores neurorretinianos proliferantes PAX6 + y CHX10 +. El cultivo prolongado de organoides retinianos en medio que contiene taurina de 100 μM durante otras 4 semanas dio lugar a la aparición de precursores fotorreceptores RCVRN+ y CRX+ y células maduras con extensiones rudimentarias similares a segmentos internos.

Protocol

Todos los experimentos con hiPSC se llevaron a cabo de forma aséptica, en cumplimiento de las prácticas estándar de laboratorio, las pautas éticas y de bioseguridad, y con las aprobaciones de organismos reguladores como el Comité de Ética Institucional (IEC), el Comité Institucional para la Investigación de Células Madre (IC-SCR) y el Comité Institucional de Bioseguridad (IBSC). 1. Preparación de cultivo de iPSC y medio de diferenciación retiniana y reactivos <ol…

Representative Results

La diferenciación de hiPSCs en linajes oculares se logra cultivando las células en diferentes cócteles de medio de cultivo que contienen suplementos y factores de crecimiento en pasos secuenciales en diferentes puntos de tiempo, como se describe en la Figura 1. Los cultivos de hiPSC se mantienen en medio Essential 8, el medio pluripotente de mantenimiento de células madre. Una vez que alcanzan una confluencia del 70%-80% (Figura 2A), el medio se reemplaza co…

Discussion

Las hiPSC son una herramienta poderosa para estudiar el desarrollo de órganos y tejidos in vitro. Recapitular el fenotipo de la enfermedad diferenciando las hiPSC sanas versus específicas de la enfermedad hacia el linaje retiniano puede ayudar a obtener nuevos conocimientos sobre la fisiopatología de diferentes formas de distrofias retinianas hereditarias. Se han descrito y adoptado varios protocolos para la diferenciación in vitro de PSCs en tipos de células retinianas. La mayoría de ellos implic…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Los autores agradecen el apoyo científico y técnico del Dr. Chitra Kannabiran, genetista; Dr. Subhadra Jalali, Consultor de Retina; Dr. Milind Naik, cirujano oculoplástico; y el Dr. Swathi Kaliki, oncólogo ocular en el LV Prasad Eye Institute, Hyderabad hacia la generación de líneas iPSC normales y específicas del paciente. Los autores reconocen las subvenciones de investigación y desarrollo de la Junta de Investigación de Ciencia e Ingeniería, Departamento de Ciencia y Tecnología (IM), (SB / SO / HS / 177 / 2013), Departamento de Biotecnología (IM), (BT / PR32404 / MED / 30 / 2136 / 2019) y Becas de Investigación Senior de ICMR (SM , D.P.), UGC (T.A.) y CSIR (V.K.P.), Gobierno de la India.

Materials

0.22 µm Syringe filters TPP 99722 
15 mL centrifuge tube TPP 91015
50 mL centrifuge tube TPP 91050
6 well plates TPP 92006
Anti-Chx10 Antibody; Mouse monoclonal Santa Cruz SC365519 1:50 dilution
Anti-CRX antibody; Rabbit monoclonal Abcam ab140603 1:300 dilution
Anti-MiTF antibody, Mouse monoclonal Abcam ab3201 1:250 dilution
Anti-Recoverin Antibody; Rabbit polyclonal      Millipore AB5585 1:300 dilution
B-27 Supplement (50x), serum free Thermo Fisher 17504044
Basic Fibroblast growth factor (bFGF) Sigma Aldrich F0291
Centrifuge 5810R Eppendorf
Coplin Jar (50 mL) Tarson
Corning Matrigel hESC-Qualified Matrix Corning 354277
CryoTubes Thermo Fisher V7884
DMEM/F-12, GlutaMAX supplement (basal medium) Thermo Fisher 10565-018
DreamTaq DNA polymerase Thermo Fisher EP0709
Dulbeco’s Phosphate Buffered Saline Thermo Fisher 14190144
Essential 8 medium kit Thermo Fisher A1517001
Ethylene diamine tetraaceticacid disodium salt dihydrate (EDTA) Sigma Aldrich E5134
Falcon Not TC-treated Treated Petri Dish, 60 mm  Corning 351007
Fetal Bovine Serum, qualified, United States  Gibco 26140079
GelDocXR+ with Image lab software BIO-RAD Agarose Gel documentation system 
GlutaMAX Supplement Thermo Fisher 35050061
Goat anti-Mouse IgG (H+L), Alexa Fluor 488 Invitrogen A11001 1:300 dilution
Goat anti-Mouse IgG (H+L), Alexa Fluor 546 Invitrogen A11030 1:300 dilution
Goat anti-Rabbit IgG (H+L), Alexa Fluo 546 Invitrogen A11035 1:300 dilution
Goat anti-Rabbit- IgG (H+L), Alexa Fluor 488 Invitrogen A11008 1:300 dilution
HistoCore MULTICUT Leica For sectioning
KnockOut Serum Replacement Thermo Fisher 10828028
L-Acsorbic acid Sigma Aldrich A92902
MEM Non-Essential Amino Acids Solution (100x) Thermo Fisher 11140-050
N2 supplement (100x) Thermo Fisher 17502048
NanoDrop 2000 Thermo Fisher To quantify RNA
Paraformaldehyde Qualigens 23995
Pasteur Pipets, 9 inch, Non-Sterile, Unplugged Corning 7095D-9
Penicillin-Streptomycin  Thermo Fisher 15140-122
Recombinant Anti-Otx2 antibody , Rabbit monoclonal Abcam ab183951 1:300 dilution
Recombinant Anti-PAX6 antibody; Rabbit Monoclonal Abcam ab195045 1:300 dilution
Recombinant Anti-RPE65 antibody, Rabbit Monoclonal Abcam ab231782 1:300 dilution
Recombinant Human Noggin Protein R&D Systems 6057-NG
SeaKem LE Agarose Lonza 50004
Serological pipettes 10 mL TPP 94010
Serological pipettes 5 mL TPP 94005
Sodium Chloride Sigma Aldrich S7653
Sodium Citrate Tribasic dihydrate Sigma Aldrich S4641
Starfrost (silane coated) microscopic slides Knittel
SuperScript III First-Strand Synthesis System Thermo Fisher 18080051
SuperScript III First-Strand Synthesis System for RT-PCR Invitrogen 18080051
Triton X-100 Sigma Aldrich T8787
TRIzol Reagent Invitrogen 15596026
UltraPure 0.5 M EDTA, pH 8.0 Thermo Fisher 15575020
VECTASHIELD Antifade Mounting Medium with DAPI  Vector laboratories H-1200 
Vitronectin Thermo Fisher A27940
Y-27632 dihydrochloride (Rho-kinase inhibitor) Sigma Aldrich Y0503
Zeiss LSM 880 Zeiss Confocal microscope

Referências

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Citar este artigo
Mahato, S., Agrawal, T., Pidishetty, D., Maddileti, S., Pulimamidi, V. K., Mariappan, I. Generation of Retinal Organoids from Healthy and Retinal Disease-Specific Human-Induced Pluripotent Stem Cells. J. Vis. Exp. (190), e64509, doi:10.3791/64509 (2022).

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