Este protocolo describe un método eficiente para diferenciar las hiPSC en grupos de campo ocular y generar organoides neurorretinianos utilizando condiciones de cultivo simplificadas que involucran sistemas de cultivo adherentes y en suspensión. Otros tipos de células oculares, como el EPR y el epitelio corneal, también se pueden aislar de campos oculares maduros en cultivos de retina.
Las células madre pluripotentes pueden generar organoides tisulares complejos que son útiles para estudios de modelado de enfermedades in vitro y para desarrollar terapias regenerativas. Este protocolo describe un método más simple, robusto y gradual para generar organoides retinianos en un sistema de cultivo híbrido que consiste en cultivos monocapa adherentes durante las primeras 4 semanas de diferenciación retiniana hasta la aparición de grupos primordiales de campo ocular (EFP) distintos y autoorganizados. Además, las islas neurorretinianas en forma de rosquilla, circulares y translúcidas dentro de cada EFP se recogen manualmente y se cultivan bajo suspensión utilizando placas de cultivo no adherentes en un medio de diferenciación retiniana durante 1-2 semanas para generar copas ópticas 3D multicapa (OC-1M). Estos organoides retinianos inmaduros contienen precursores retinianos multipotentes proliferantes PAX6+ y ChX10+. Las células precursoras se autoensamblan linealmente dentro de los organoides y aparecen como estrías radiales distintas. A las 4 semanas después del cultivo en suspensión, los progenitores retinianos sufren un paro postmitótico y diferenciación de linaje para formar organoides retinianos maduros (OC-2M). Los precursores comprometidos con el linaje fotorreceptor se desarrollan dentro de las capas más externas de los organoides retinianos. Estas células fotorreceptoras CRX+ y RCVRN+ maduran morfológicamente para mostrar extensiones similares a segmentos internos. Este método se puede adoptar para generar organoides retinianos utilizando células madre embrionarias humanas (hESCs) y células madre pluripotentes inducidas (iPSCs). Todos los pasos y procedimientos están claramente explicados y demostrados para garantizar la replicabilidad y para aplicaciones más amplias en ciencia básica e investigación traslacional.
La retina es un tejido sensible a la luz presente en la parte posterior del ojo de los vertebrados que convierte las señales de luz en impulsos nerviosos por un fenómeno bioquímico conocido como la vía de fototransducción. Los impulsos nerviosos iniciales generados en las células fotorreceptoras de la retina se transducen a otras interneuronas retinianas y células ganglionares de la retina (CGR) y llegan a la corteza visual del cerebro, lo que ayuda en la percepción de la imagen y la respuesta visual.
Según la Organización Mundial de la Salud (OMS), se estima que 1,5 millones de niños son ciegos, de los cuales 1 millón están en Asia. La distrofia retiniana hereditaria (IRD) es una enfermedad cegadora importante que afecta a 1 de cada 4.000 individuos en todo el mundo 1,2,3, mientras que la prevalencia de ceguera asociada con la degeneración macular relacionada con la edad (DMAE) oscila entre el 0,6% y el 1,1% en los países en desarrollo 4. Los IRD son causados por defectos genéticos heredados en más de 300 genes diferentes involucrados en el desarrollo y la función de la retina5. Tales cambios genéticos resultan en la interrupción de las funciones normales de la retina y la degeneración gradual de las células de la retina, a saber, las células fotorreceptoras y el epitelio pigmentado de la retina (EPR), lo que conduce a una pérdida severa de la visión y ceguera. Se ha logrado un enorme progreso en otras condiciones de cegamiento que involucran la córnea, el cristalino, etc. Sin embargo, las distrofias de retina y las atrofias del nervio óptico no tienen ninguna terapia probada hasta la fecha. Dado que una retina humana adulta no tiene células madre6, fuentes alternativas como las células madre embrionarias (CES) y las células madre pluripotentes inducidas derivadas del paciente (iPSC) pueden proporcionar un suministro ilimitado de los tipos de células deseados y son muy prometedoras para el desarrollo de organoides tisulares complejos necesarios para estudios de modelado de enfermedades in vitro y para el desarrollo de terapias regenerativas7, 8,9,10.
Varios años de investigación en retina han llevado a una mejor comprensión de los eventos moleculares que orquestan el desarrollo temprano de la retina. La mayoría de los protocolos para generar células retinianas y organoides 3D a partir de PSC tienen como objetivo recapitular estos eventos de desarrollo in vitro, cultivando las células en un complejo cóctel de factores de crecimiento y moléculas pequeñas para modular los procesos biológicos conocidos de manera gradual. Los organoides retinianos así generados están compuestos por las principales células de la retina: células ganglionares de la retina (CGR), interneuronas, fotorreceptores y epitelio pigmentado de la retina (EPR)11,12,13,14,15,16,17,18,19 . A pesar de los intentos exitosos de modelar IRD utilizando organoides retinianos, el requisito del complejo cóctel de factores de crecimiento y moléculas pequeñas durante la diferenciación y la eficiencia relativamente baja de la generación de organoides retinianos plantea un gran desafío con la mayoría de los protocolos. Incluyen principalmente la formación de cuerpos embrioides, seguida de su diferenciación gradual en linajes retinianos utilizando condiciones de cultivo complejas en diferentes etapas de desarrollo in vitro 20,21,22.
Aquí, se informa un método simplificado y robusto para desarrollar organoides neurorretinianos 3D complejos a partir de control sano y hiPSC específicas de la enfermedad retiniana. El protocolo descrito aquí utiliza la diferenciación directa de cultivos hiPSC casi confluentes sin necesidad de formación de cuerpo embrioide. Además, la complejidad del medio de cultivo se simplifica, lo que lo convierte en una técnica rentable y reproducible que puede ser fácilmente adoptada por los nuevos investigadores. Implica un sistema de cultivo híbrido que consiste en cultivos monocapa adherentes durante las primeras 4 semanas de diferenciación retiniana hasta la aparición de grupos primordiales de campo ocular (EFP) distintos y autoorganizados. Además, las islas neurorretinianas circulares dentro de cada EFP se recogen manualmente y se cultivan en cultivos en suspensión durante 1-2 semanas para preparar copas retinianas 3D de múltiples capas u organoides que consisten en precursores neurorretinianos proliferantes PAX6 + y CHX10 +. El cultivo prolongado de organoides retinianos en medio que contiene taurina de 100 μM durante otras 4 semanas dio lugar a la aparición de precursores fotorreceptores RCVRN+ y CRX+ y células maduras con extensiones rudimentarias similares a segmentos internos.
Las hiPSC son una herramienta poderosa para estudiar el desarrollo de órganos y tejidos in vitro. Recapitular el fenotipo de la enfermedad diferenciando las hiPSC sanas versus específicas de la enfermedad hacia el linaje retiniano puede ayudar a obtener nuevos conocimientos sobre la fisiopatología de diferentes formas de distrofias retinianas hereditarias. Se han descrito y adoptado varios protocolos para la diferenciación in vitro de PSCs en tipos de células retinianas. La mayoría de ellos implic…
The authors have nothing to disclose.
Los autores agradecen el apoyo científico y técnico del Dr. Chitra Kannabiran, genetista; Dr. Subhadra Jalali, Consultor de Retina; Dr. Milind Naik, cirujano oculoplástico; y el Dr. Swathi Kaliki, oncólogo ocular en el LV Prasad Eye Institute, Hyderabad hacia la generación de líneas iPSC normales y específicas del paciente. Los autores reconocen las subvenciones de investigación y desarrollo de la Junta de Investigación de Ciencia e Ingeniería, Departamento de Ciencia y Tecnología (IM), (SB / SO / HS / 177 / 2013), Departamento de Biotecnología (IM), (BT / PR32404 / MED / 30 / 2136 / 2019) y Becas de Investigación Senior de ICMR (SM , D.P.), UGC (T.A.) y CSIR (V.K.P.), Gobierno de la India.
0.22 µm Syringe filters | TPP | 99722 | |
15 mL centrifuge tube | TPP | 91015 | |
50 mL centrifuge tube | TPP | 91050 | |
6 well plates | TPP | 92006 | |
Anti-Chx10 Antibody; Mouse monoclonal | Santa Cruz | SC365519 | 1:50 dilution |
Anti-CRX antibody; Rabbit monoclonal | Abcam | ab140603 | 1:300 dilution |
Anti-MiTF antibody, Mouse monoclonal | Abcam | ab3201 | 1:250 dilution |
Anti-Recoverin Antibody; Rabbit polyclonal | Millipore | AB5585 | 1:300 dilution |
B-27 Supplement (50x), serum free | Thermo Fisher | 17504044 | |
Basic Fibroblast growth factor (bFGF) | Sigma Aldrich | F0291 | |
Centrifuge 5810R | Eppendorf | ||
Coplin Jar (50 mL) | Tarson | ||
Corning Matrigel hESC-Qualified Matrix | Corning | 354277 | |
CryoTubes | Thermo Fisher | V7884 | |
DMEM/F-12, GlutaMAX supplement (basal medium) | Thermo Fisher | 10565-018 | |
DreamTaq DNA polymerase | Thermo Fisher | EP0709 | |
Dulbeco’s Phosphate Buffered Saline | Thermo Fisher | 14190144 | |
Essential 8 medium kit | Thermo Fisher | A1517001 | |
Ethylene diamine tetraaceticacid disodium salt dihydrate (EDTA) | Sigma Aldrich | E5134 | |
Falcon Not TC-treated Treated Petri Dish, 60 mm | Corning | 351007 | |
Fetal Bovine Serum, qualified, United States | Gibco | 26140079 | |
GelDocXR+ with Image lab software | BIO-RAD | Agarose Gel documentation system | |
GlutaMAX Supplement | Thermo Fisher | 35050061 | |
Goat anti-Mouse IgG (H+L), Alexa Fluor 488 | Invitrogen | A11001 | 1:300 dilution |
Goat anti-Mouse IgG (H+L), Alexa Fluor 546 | Invitrogen | A11030 | 1:300 dilution |
Goat anti-Rabbit IgG (H+L), Alexa Fluo 546 | Invitrogen | A11035 | 1:300 dilution |
Goat anti-Rabbit- IgG (H+L), Alexa Fluor 488 | Invitrogen | A11008 | 1:300 dilution |
HistoCore MULTICUT | Leica | For sectioning | |
KnockOut Serum Replacement | Thermo Fisher | 10828028 | |
L-Acsorbic acid | Sigma Aldrich | A92902 | |
MEM Non-Essential Amino Acids Solution (100x) | Thermo Fisher | 11140-050 | |
N2 supplement (100x) | Thermo Fisher | 17502048 | |
NanoDrop 2000 | Thermo Fisher | To quantify RNA | |
Paraformaldehyde | Qualigens | 23995 | |
Pasteur Pipets, 9 inch, Non-Sterile, Unplugged | Corning | 7095D-9 | |
Penicillin-Streptomycin | Thermo Fisher | 15140-122 | |
Recombinant Anti-Otx2 antibody , Rabbit monoclonal | Abcam | ab183951 | 1:300 dilution |
Recombinant Anti-PAX6 antibody; Rabbit Monoclonal | Abcam | ab195045 | 1:300 dilution |
Recombinant Anti-RPE65 antibody, Rabbit Monoclonal | Abcam | ab231782 | 1:300 dilution |
Recombinant Human Noggin Protein | R&D Systems | 6057-NG | |
SeaKem LE Agarose | Lonza | 50004 | |
Serological pipettes 10 mL | TPP | 94010 | |
Serological pipettes 5 mL | TPP | 94005 | |
Sodium Chloride | Sigma Aldrich | S7653 | |
Sodium Citrate Tribasic dihydrate | Sigma Aldrich | S4641 | |
Starfrost (silane coated) microscopic slides | Knittel | ||
SuperScript III First-Strand Synthesis System | Thermo Fisher | 18080051 | |
SuperScript III First-Strand Synthesis System for RT-PCR | Invitrogen | 18080051 | |
Triton X-100 | Sigma Aldrich | T8787 | |
TRIzol Reagent | Invitrogen | 15596026 | |
UltraPure 0.5 M EDTA, pH 8.0 | Thermo Fisher | 15575020 | |
VECTASHIELD Antifade Mounting Medium with DAPI | Vector laboratories | H-1200 | |
Vitronectin | Thermo Fisher | A27940 | |
Y-27632 dihydrochloride (Rho-kinase inhibitor) | Sigma Aldrich | Y0503 | |
Zeiss LSM 880 | Zeiss | Confocal microscope |