Vi beskriver en metode som kombinerer immunmagnetiske perler og fluorescensaktivert cellesortering for å isolere og analysere definerte immuncelleunderpopulasjoner av mononukleære celler i perifert blod (monocytter, CD4+ T-celler, CD8+ T-celler, B-celler og naturlige drepeceller). Ved hjelp av denne metoden kan magnetiske og fluorescerende merkede celler renses og analyseres.
Infeksiøs mononukleose (IM) er et akutt syndrom som hovedsakelig er forbundet med primær Epstein-Barr-virus (EBV) infeksjon. De viktigste kliniske symptomene inkluderer uregelmessig feber, lymfadenopati og signifikant økte lymfocytter i perifert blod. Den patogene mekanismen for IM er fortsatt uklar; Det er ingen effektiv behandlingsmetode for det, med hovedsakelig symptomatisk behandling tilgjengelig. Hovedspørsmålet i EBV-immunbiologi er hvorfor bare en liten delmengde av infiserte individer viser alvorlige kliniske symptomer og til og med utvikler EBV-assosierte maligniteter, mens de fleste individer er asymptomatiske for livet med viruset.
B-celler er først involvert i IM fordi EBV-reseptorer presenteres på overflaten. Natural killer (NK) celler er cytotoksiske medfødte lymfocytter som er viktige for å drepe EBV-infiserte celler. Andelen CD4 + T-celler reduseres mens CD8 + T-celler utvides dramatisk under akutt EBV-infeksjon, og utholdenheten til CD8 + T-celler er viktig for livslang kontroll av IM. Disse immuncellene spiller viktige roller i IM, og deres funksjoner må identifiseres separat. Til dette formål separeres monocytter først fra mononukleære celler i perifert blod (PBMC) av IM-individer ved bruk av CD14-mikroperler, en kolonne og en magnetisk separator.
De resterende PBMCs er farget med peridinin-klorofyll-protein (PerCP) / Cyanine 5.5 anti-CD3, allophycocyanin (APC) / Cyanine 7 anti-CD4, phycoerythrin (PE) anti-CD8, fluoresceinisotiocyanat (FITC) anti-CD19, APC anti-CD56 og APC anti-CD16 antistoffer for å sortere CD4 + T-celler, CD8 + T-celler, B-celler og NK-celler ved hjelp av et flowcytometer. Videre ble transkriptomsekvensering av fem subpopulasjoner utført for å utforske deres funksjoner og patogene mekanismer i IM.
Epstein-Barr-virus (EBV), et γ-herpesvirus også kjent som humant herpesvirus type 4, er allestedsnærværende i den menneskelige befolkningen og etablerer livslang latent infeksjon hos mer enn 90% av den voksne befolkningen1. De fleste EBV primær infeksjon oppstår i barndommen og ungdomsårene, med en brøkdel av pasientene som manifesterer seg med infeksiøs mononukleose (IM) 2, som viser karakteristisk immunpatologi, inkludert en aktivert immunrespons med CD8 + T-celler i blod og en forbigående spredning av EBV-infiserte B-celler i oropharynx3. IM-forløpet kan vare i 2–6 uker, og de fleste pasientene blir friske4. Noen individer utvikler imidlertid vedvarende eller tilbakevendende IM-lignende symptomer med høy morbiditet og dødelighet, som er klassifisert som kronisk aktiv EBV-infeksjon (CAEBV)5. I tillegg er EBV et viktig onkogent virus, som er nært beslektet med en rekke maligniteter, inkludert epiteloid og lymfoide maligniteter som nasopharyngeal karsinom, Burkitts lymfom, Hodgkins lymfom (HL) og T/NK-cellelymfom6. Selv om EBV har blitt studert i over 50 år, har patogenesen og mekanismen som induserer spredning av lymfocytter ikke blitt fullstendig belyst.
Flere studier har undersøkt molekylære signaturer for immunpatologi av EBV-infeksjon ved transkriptomsekvensering. Zhong og medarbeidere analyserte hel-transkriptomprofilering av mononukleære celler i perifert blod (PBMC) fra kinesiske barn med IM eller CAEBV for å finne at CD8+ T-celleutvidelse hovedsakelig ble funnet i IM-gruppe7, noe som tyder på at CD8+ T-celler kan spille en viktig rolle i IM. Tilsvarende fant en annen studie lavere andel EBV-spesifikke cytotoksiske T- og CD19+ B-celler og høyere prosentandel CD8+ T-celler hos pasienter med IM forårsaket av primær EBV-infeksjon enn hos pasienter med IM forårsaket både av EBV-reaktivering og andre midler8. B-celler er først involvert i IM fordi EBV-reseptorer presenteres på overflaten. Al Tabaa og medarbeidere fant at B-celler var polyklonalt aktiverte og differensierte intoplasmablaster (CD19+, CD27+ og CD20−, og CD138−-celler) og plasmaceller (CD19+, CD27+ og CD20−, og CD138+) under IM 9. Videre fant Zhong og medarbeidere at monocyttmarkørene CD14 og CD64 ble oppregulert i CAEBV, noe som tyder på at monocytter kan spille en viktig rolle i den cellulære immunresponsen til CAEBV gjennom antistoffavhengig cellulær cytotoksisitet (ADCC) og hyperaktiv fagocytose7. Alka og medarbeidere karakteriserte transkriptomet til MACS sorterte CD56dim CD16+ NK-celler fra fire pasienter med IM eller HL og fant at NK-celler fra både IM og HL hadde nedregulert medfødt immunitet og kjemokinsignaleringsgener, som kunne være ansvarlig for hyporesponsiviteten til NK-celler10. I tillegg analyserte Greenough og medarbeidere genuttrykk av sorterte CD8+ T-celler fra 10 PBMCs av individer med IM. De rapporterte at en stor andel av CD8 + T-celler i IM var virusspesifikke, aktiverte, delte og primet for å utøve effektoraktiviteter11. Både T-cellemedierte, EBV-spesifikke responser og NK-cellemedierte, uspesifikke responser spiller viktige roller under primær EBV-infeksjon. Imidlertid undersøkte disse studiene bare transkriptomresultatene av den mangfoldige blandingen av immunceller eller bare en viss underpopulasjon av lymfocytter, noe som ikke er tilstrekkelig for den omfattende sammenligningen av molekylære egenskaper og funksjoner av forskjellige immuncelleunderpopulasjoner hos barn med IM ved samme sykdomstilstand.
Dette papiret beskriver en metode som kombinerer immunomagnetiske perler og fluorescensaktivert cellesortering (FACS) for å isolere og analysere definerte immuncelleunderpopulasjoner av PBMCs (monocytter, CD4 + T-celler, CD8 + T-celler, B-celler og NK-celler). Ved hjelp av denne metoden kan magnetiske og fluorescerende merkede celler renses ved hjelp av en magnetisk separator og FACS eller analyseres ved strømningscytometri. RNA kan ekstraheres fra de rensede cellene for transkriptomsekvensering. Denne metoden vil muliggjøre karakterisering og genuttrykk av forskjellige immunceller i samme sykdomstilstander hos personer med IM, noe som vil utvide vår forståelse av immunpatologien til EBV-infeksjon.
Denne protokollen representerer en effektiv måte å sortere underpopulasjoner av perifere immunceller på. I denne studien ble venøse blodprøver fra pasienter med IM, friske EBV-bærere og EBV-uinfiserte barn valgt som forskningsmål. Dette arbeidet ved bruk av perifert blod hos pasienter med IM fokuserer hovedsakelig på å analysere og bestemme proporsjonene av forskjellige celleundergrupper gjennom flerfarget flowcytometri. Transkriptomsekvensering brukes hovedsakelig til påvisning og analyse av en viss underpopul…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble støttet av National Natural Science Foundation of China (82002130), Beijing Natural Science Foundation (7222059) og CAMS Innovation Fund for Medical Sciences (2019-I2M-5-026).
APC anti-human CD16 | Biolegend | 302012 | Fluorescent antibody |
APC anti-human CD56 (NCAM) | Biolegend | 362504 | Fluorescent antibody |
APC/Cyanine7 anti-human CD4 | Biolegend | 344616 | Fluorescent antibody |
Automated cell counter | BIO RAD | TC20 | Cell count |
BD FACSAria fluorescence-activated flow cell sorter-cytometer (BD FACSAria II) | Becton, Dickinson and Company | 644832 | Cell sort |
CD14 MicroBeads, human | Miltenyi Biotec | 130-050-201 | microbeads |
Cell ctng slides | BIO RAD | 1450016 | Cell count |
Centrifuge tubes | Falcon | 35209715 | 15 mL centrifuge tube |
EDTA (≥99%, BioPremium) | Beyotime | ST1303 | EDTA |
Ethylene diamine tetra acetic acid (EDTA) anticoagulant tubes | Becton, Dickinson and Company | 367862 | EDTA anticoagulant tubes |
FITC anti-human CD19 | Biolegend | 302206 | Fluorescent antibody |
Gibco Fetal Bovine Serum | Thermo Fisher Scientific | 16000-044 | Fetal Bovine Serum |
High-speed centrifuge | Sigma | 3K15 | Cell centrifugation for 15 mL centrifuge tube |
High-speed centrifuge | Eppendorf | 5424R | Cell centrifugation for 1.5 mL Eppendorf (EP) tube |
Human lymphocyte separation medium | Dakewe | DKW-KLSH-0100 | Ficoll-Paque |
LS Separation columns | Miltenyi Biotec | 130-042-401 | Separation columns |
Microcentrifuge tubes | Axygen | MCT-150-C | 1.5 mL microcentrifuge tube |
MidiMACS Separator | Miltenyi Biotec | 130-042-302 | Magnetic bead separator |
PE anti-human CD8 | Biolegend | 344706 | Fluorescent antibody |
PerCP/Cyanine5.5 anti-human CD3 | Biolegend | 344808 | Fluorescent antibody |
Phosphate Buffered Saline (PBS) | BI | 02-024-1ACS | PBS |
Polystyrene round bottom tubes | Falcon | 352235 | 5 mL tube for FACS flow cytometer |
TRIzol reagent | Ambion | 15596024 | Lyse cells for RNA extraction |
Trypan Blue Staining Cell Viability Assay Kit | Beyotime | C0011 | Trypan Blue Staining |