Summary

Kwantificering van reactieve zuurstofsoorten met behulp van 2′,7′-dichlorofluoresceïnediacetaatsonde en flowcytometrie in Müller-gliacellen

Published: May 13, 2022
doi:

Summary

Hier stellen we een gesystematiseerd, toegankelijk en reproduceerbaar protocol voor om cellulaire reactieve zuurstofsoorten (ROS) te detecteren met behulp van 2′,7′-dichlorofluorescein diacetate probe (DCFH-DA) in Müller gliacellen (MGC’s). Deze methode kwantificeert de totale cellulaire ROS-niveaus met een flowcytometer. Dit protocol is zeer eenvoudig te gebruiken, geschikt en reproduceerbaar.

Abstract

De redoxbalans speelt een belangrijke rol bij het handhaven van cellulaire homeostase. De verhoogde generatie van reactieve zuurstofsoorten (ROS) bevordert de modificatie van eiwitten, lipiden en DNA, wat uiteindelijk kan leiden tot verandering in cellulaire functie en celdood. Daarom is het gunstig voor cellen om hun antioxidantafweer te verhogen als reactie op schadelijke beledigingen, hetzij door een antioxidantroute zoals Keap1 / Nrf2 te activeren of door redox-aaseters te verbeteren (vitamine A, C en E, β-caroteen en polyfenolen, onder anderen). Ontsteking en oxidatieve stress zijn betrokken bij de pathogenese en progressie van retinopathieën, zoals diabetische retinopathie (DR) en retinopathie van prematuriteit (ROP). Aangezien Müller-gliacellen (MGC’s) een sleutelrol spelen in de homeostase van neuraal netvliesweefsel, worden ze beschouwd als een ideaal model om deze cellulaire beschermende mechanismen te bestuderen. In die zin is het kwantificeren van ROS-niveaus met een reproduceerbare en eenvoudige methode essentieel om de bijdrage van pathways of moleculen die deelnemen aan het antioxidant celafweermechanisme te beoordelen. In dit artikel geven we een volledige beschrijving van de procedures die nodig zijn voor het meten van ROS met DCFH-DA-sonde en flowcytometrie in MGC’s. Belangrijke stappen voor flowcytometriegegevensverwerking met de software worden hier gegeven, zodat de lezers ROS-niveaus (geometrische middelen van FITC) kunnen meten en fluorescentiehistogrammen kunnen analyseren. Deze hulpmiddelen zijn zeer nuttig om niet alleen de toename van ROS na een cellulaire belediging te evalueren, maar ook om het antioxiderende effect van bepaalde moleculen te bestuderen die een beschermend effect op de cellen kunnen hebben.

Introduction

Het neurale netvlies is een zeer georganiseerd weefsel dat goed gedefinieerde neuronale lagen presenteert. Hierin zijn neuronen (ganglion,amacrine, bipolaire, horizontale en fotoreceptorcellen) met elkaar verbonden en ook met Müller-gliacellen (MGC’s) en astrocyten, wat leidt tot adequate fototransductie en verwerking van visuele informatie 1,2. Van MGC’s is bekend dat ze een belangrijke rol spelen bij het onderhoud van retinale homeostase omdat ze het hele retinale gedeelte doorkruisen en dus kunnen interageren met alle celtypen die meerdere beschermende processen moduleren. Er is gemeld dat MGC’s verschillende belangrijke functies hebben voor het onderhoud en de overleving van retinale neuronen, waaronder glycolyse om energie te leveren aan neuronen, de verwijdering van neuronaal afval, de recycling van neurotransmitters en de afgifte van neurotrofe factoren, onder andere 3,4,5.

Aan de andere kant zijn ontsteking, oxidatieve en nitrosatieve stress betrokken bij de pathogenese en progressie van veel menselijke ziekten, waaronder retinopathieën 6,7,8,9,10,11. De redoxbalans in cellen is afhankelijk van een strakke regulering van ROS-niveaus. ROS worden constant gegenereerd onder fysiologische omstandigheden als gevolg van aërobe ademhaling voornamelijk. De belangrijkste leden van de ROS-familie zijn reactieve vrije radicalen zoals het superoxide-anion (O2͘͘͘͘•−), hydroxylradicalen (OH), verschillende peroxiden (ROOR′), hydroperoxiden (ROOH) en het geen radicale waterstofperoxide (H2O2)12,13. In de afgelopen jaren is gebleken dat ROS een belangrijke signaalrol speelt in de cellen door essentiële processen te beheersen. MGC’s hebben een sterke antioxidantafweer door de activering van de transcriptionele nucleaire factor erytroïde-2-gerelateerde factor 2 (Nrf2) en de daaropvolgende expressie van antioxidanteiwitten om de overmatige productie van ROS onder pathologische omstandigheden te elimineren 14,15,16. Wanneer de cellen hun redoxbalans verliezen als gevolg van een overdreven productie van ROS of een defect vermogen om ROS te verwijderen, bevordert de accumulatie van oxidatieve stress schadelijke modificaties in eiwitten, lipiden en DNA, wat leidt tot cellulaire stress of de dood. De toename van het retinale antioxidantafweersysteem verbetert de resolutie en preventie van retinopathieën, zoals ROP en RD 17,18,19,20,21,22,23,24. Daarom is het meten van ROS-productie in real-time een krachtig en nuttig hulpmiddel.

Er zijn verschillende methoden voor het meten van ROS-productie of oxidatieve stress in cellen. Onder deze, 2′,7′-dichlorofluorescein diacetaat (DCFH-DA) sonde is een van de meest gebruikte technieken voor het direct kwantificeren van de redoxtoestand van een cel 25,26,27,28. Deze sonde is lipofiel en niet-fluorescerend. Diffusie van deze sonde over het celmembraan maakt de splitsing mogelijk door intracellulaire esterasen bij de twee esterbindingen, waardoor een relatief polair en celmembraan-ondoordringbaar product ontstaat, 2′,7′-dichlorofluorescein (H2DCF). Dit niet-fluorescerende molecuul accumuleert intracellulair en daaropvolgende oxidatie door ROS levert het zeer fluorescerende product DCF op. De oxidatie van de sonde is het product van de werking van meerdere soorten ROS (peroxynitriet, hydroxylradicalen, stikstofmonoxide of peroxiden), die kunnen worden gedetecteerd door flowcytometrie of confocale microscopie (emissie bij 530 nm en excitatie bij 485 nm). De beperking van deze techniek is dat superoxide en waterstofperoxide niet sterk reageren met H2DCF25,29. In dit artikel gebruiken we DCFH-DA probe om ROS te meten en te kwantificeren door middel van flowcytometrie. Om die reden induceren we ROS-productie door MGC’s te stimuleren met ROS-inductor, A of B, voorafgaand aan het laden van de cellen met de fluorescerende sonde. Daarnaast gebruiken we een antioxidantverbinding. Ten slotte tonen we representatieve en betrouwbare gegevens die met behulp van dit protocol zijn verkregen.

Protocol

OPMERKING: Voor buffersamenstellingen zie tabel 1. 1. Bereiding van de celkweek OPMERKING: Hier beschreven is de kweekvoorbereiding van MIO-M1-cellen, een spontaan vereeuwigde menselijke Müller-gliacellijn (Moorfield’s / Institute of Ophthalmology- Müller 1). Gebruik altijd de juiste aseptische techniek en werk in een laminaire flowkap. Bereid Dulbecco’s gemodificeerd Eagle’s medium (DMEM) complete medium voor. Voeg aan …

Representative Results

Zoals beschreven in de protocolsectie, hebben we representatieve en kwantitatieve gegevens getoond die flowcytometriedetectie van ROS-productie aantonen met de fluorescentiesonde DCFH-DA van MIO-M1-cellen gestimuleerd met ROS-inductor, A of B. Zoals verwacht zagen we veranderingen in FITC-fluorescentie in niet-gestimuleerde cellen boven autofluorescentieniveaus (figuur 1A, vergelijk “basale controle” versus “autofluorescentiecontrole”, puntplotgrafiek). Dit gebeurde als gevolg van een basale…

Discussion

Verschillende pathologische aandoeningen, zoals kanker, ontstekingsziekten, ischemie / reperfusie, ischemische hartziekte, diabetes en retinopathieën, en ook fysiologische situaties zoals veroudering, leiden tot ROS-overproductie 6,7,8,9,10,11. Daarom zijn de detectie, meting en begrip van de route die betrokken is bij de mo…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs willen María Pilar Crespo en Paula Alejandra Abadie van CIBICI (Centro de Investigaciones en Bioquímica Clínica e Inmunología, CONICET-UNC, Córdoba, Argentinië) bedanken voor hulp bij flowcytometrie en Gabriela Furlan en Noelia Maldonado voor hulp bij celkweek. We bedanken ook Victor Diaz (Pro-Secretary of Institutional Communication van FCQ) voor de videoproductie en -montage.

Dit artikel werd gefinancierd door subsidies van Secretaría de Ciencia y Tecnología, Universidad Nacional de Córdoba (SECyT-UNC) Consolidar 2018-2021, Fondo para la Investigación Científica y Tecnológica (FONCyT) en Proyecto de Investigación en Ciencia y Tecnología (PICT) 2015 N° 1314 (allemaal naar M.C.S.).

Materials

2′,7′-DCFH-DA Sigma 35845-1G
4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonic acid (HEPES) Gibco by life technologies 15630-080
BD FACSCanto II flow cytometer BD Biosciences FACSCanto
BD FACSDiva software BD Biosciences
Cell Culture Dishes 100×20 mm Cell Star- Greiner Bio-One 664 160
Centrifuge Thermo Sorvall legend micro 17 R
Centrifuge Tubes (15 ml) BIOFIL CFT011150
Centrifuge Tubes (50 ml) BIOFIL CFT011500
Cryovial CRYO.S – Greiner Bio-One 126263
Dimethyl Sulfoxide Sigma-Aldrich W387520-1KG
Disodium-hydrogen-phosphate heptahydrate Merck 106575
DMEM without phenol red Gibco by life technologies 31053-028
Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM) Gibco by life technologies 11995065
Ethylenediamine Tetraacetic Acid (EDTA), Disodium Salt, Dihydrate Merck 324503
Fetal Bovine Serum Internegocios
FlowJo v10 Software BD Biosciences
Glucose Merck 108337
hemocytometer, Neubauer chamber BOECO,Germany
Laminar flow hood ESCO AC2-6E8
L-glutamine (GlutaMAX) Gibco by life technologies A12860-01
MitoSOX Red Invitrogen  M36008
Penicillin/Streptomycin Gibco by life technologies 15140-122
Potassium Chloride Merck 104936
Potassium-dihydrogen phosphate Merck 4878
Round polystyrene tubes 5 ml (flow cytometry tubes) Falcon – Corning BD-352008
Sodium Azide Merck 822335
Sodium Chloride Merck 106404
Sodium Hydroxide Merck 106462
SPINWIN Micro Centrifuge Tube 1.5 ml Tarson 500010-N
Tissue Culture Plate 6 well BIOFIL TCP011006
Trypan Blue Merck 111732
Trypsin-EDTA 0.5% 10X Gibco by life technologies 15400-054
Vortex Mixer Labnet International, Inc.

Referências

  1. Hoon, M., Okawa, H., Della Santina, L., Wong, R. O. L. Functional architecture of the retina: Development and disease. Progress in Retinal and Eye Research. 42, 44-84 (2014).
  2. Cowan, C. S., et al. Cell types of the human retina and its organoids at single-cell resolution. Cell. 182 (6), 1623-1640 (2020).
  3. Subirada, P. V., et al. A journey into the retina: Müller glia commanding survival and death. European Journal of Neuroscience. 47 (12), 1429-1443 (2018).
  4. Coughlin, B. A., Feenstra, D. J., Mohr, S. Müller cells and diabetic retinopathy. Vision Research. 139, 93-100 (2017).
  5. Goldman, D. Müller glial cell reprogramming and retina regeneration. Nature Reviews Neurosciences. 15 (7), 431-442 (2014).
  6. Kamalden, T. A., et al. Exosomal microRNA-15a transfer from the pancreas augments diabetic complications by inducing oxidative stress. Antioxidation Redox Signaling. 27 (13), 913-930 (2017).
  7. Feng, Y., et al. Transcription of inflammatory cytokine TNFα is upregulated in retinal angiogenesis under hyperoxia. Cell Physiology and Biochemistry. 39 (2), 573-583 (2016).
  8. Rojas, M., et al. NOX2-induced activation of arginase and diabetes-induced retinal endothelial cell senescence. Antioxidants. 6 (2), 43 (2017).
  9. Sennlaub, F., Courtois, Y., Goureau, O. Inducible nitric oxide synthase mediates retinal apoptosis in ischemic proliferative retinopathy. Journal of Neuroscience. 22 (10), 3987-3993 (2002).
  10. Wilkinson-Berka, J. L., et al. NADPH oxidase, NOX1, mediates vascular injury in ischemic retinopathy. Antioxidation and Redox Signaling. 20 (17), 2726-2740 (2014).
  11. Wang, H., Zhang, S. X., Hartnett, M. E. Signaling pathways triggered by oxidative stress that mediate features of severe retinopathy of prematurity. JAMA Ophthalmology. 131 (1), 80-85 (2013).
  12. Sies, H. Oxidative stress: a concept in redox biology and medicine. Redox Biology. 4, 180-183 (2015).
  13. Zorov, D. B., Juhaszova, M., Sollott, S. J. Mitochondrial reactive oxygen species (ROS) and ROS-induced ROS release. Physiological Reviews. 94 (3), 909-950 (2014).
  14. Navneet, S., et al. Excess homocysteine upregulates the NRF2-antioxidant pathway in retinal Müller glial cells. Experiments in Eye Research. 178, 228-237 (2019).
  15. Navneet, S., et al. Hyperhomocysteinemia-induced death of retinal ganglion cells: The role of Müller glial cells and NRF2. Redox Biology. 24, 101199 (2019).
  16. Wang, J., et al. Sigma 1 receptor regulates the oxidative stress response in primary retinal Müller glial cells via NRF2 signaling and system xc(-), the Na(+)-independent glutamate-cystine exchanger. Free Radical Biology and Medicine. 86, 25-36 (2015).
  17. Nakamura, S., et al. Nrf2 activator RS9 suppresses pathological ocular angiogenesis and hyperpermeability. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 60 (6), 1943-1952 (2019).
  18. Xu, Z., et al. NRF2 plays a protective role in diabetic retinopathy in mice. Diabetologia. 57 (1), 204-213 (2014).
  19. Chen, W. J., et al. Nrf2 protects photoreceptor cells from photo-oxidative stress induced by blue light. Experiments in Eye Research. 154, 151-158 (2017).
  20. Wei, Y., et al. Nrf2 in ischemic neurons promotes retinal vascular regeneration through regulation of semaphorin 6A. Proceedings of the National Academy of Science of the United States of America. 112 (50), 6927-6936 (2015).
  21. Wei, Y., et al. Nrf2 has a protective role against neuronal and capillary degeneration in retinal ischemia-reperfusion injury. Free Radical Biology and Medicine. 51 (1), 216-224 (2011).
  22. Wei, Y., et al. Nrf2 acts cell-autonomously in endothelium to regulate tip cell formation and vascular branching. Proceedings of the National Academy of Science of the United States of America. 110 (41), 3910-3918 (2013).
  23. Wei, Y., Gong, J., Xu, Z., Duh, E. J. Nrf2 promotes reparative angiogenesis through regulation of NADPH oxidase-2 in oxygen-induced retinopathy. Free Radical Biology and Medicine. 99, 234-243 (2016).
  24. Xu, Z., et al. Neuroprotective role of Nrf2 for retinal ganglion cells in ischemia-reperfusion. Journal of Neurochemistry. 133 (2), 233-241 (2015).
  25. Armstrong, D. Advanced protocols in oxidative stress III. Methods in Molecular Biology. 1208, (2015).
  26. Shehat, M. G., Tigno-Aranjuez, J. Flow cytometric measurement of ROS production in macrophages in response to FcγR cross-linking. Journal of Visualized Experiments. (145), e59167 (2019).
  27. Wu, D., Yotnda, P. Production and detection of reactive oxygen species (ROS) in cancers. Journal of Visualized Experiments. (57), e3357 (2011).
  28. Halliwell, B., Whiteman, M. Measuring reactive species and oxidative damage in vivo and in cell culture: how should you do it and what do the results mean. British Journal of Pharmacology. 142 (2), 231-255 (2004).
  29. Kalyanaraman, B., et al. Measuring reactive oxygen and nitrogen species with fluorescent probes: challenges and limitations. Free Radical Biology and Medicine. 52 (1), 1-6 (2012).
  30. Fernandes, D. C. Analysis of DHE-derived oxidation products by HPLC in the assessment of superoxide production and NADPH oxidase activity in vascular systems. American Journal of Physiology and Cell Physiology. 292 (1), 413-422 (2007).
  31. Zielonka, J., Kalyanaraman, B. Hydroethidine- and MitoSOX-derived red fluorescence is not a reliable indicator of intracellular superoxide formation: another inconvenient truth. Free Radical Biology and Medicine. 48 (8), 983-1001 (2010).
  32. Roelofs, B. A., Ge, S. X., Studlack, P. E., Polster, B. M. Low micromolar concentrations of the superoxide probe MitoSOX uncouple neural mitochondria and inhibit complex IV. Free Radical Biology and Medicine. 86, 250-258 (2015).

Play Video

Citar este artigo
Vaglienti, M. V., Subirada, P. V., Barcelona, P. F., Bonacci, G., Sanchez, M. C. Quantification of Reactive Oxygen Species Using 2′,7′-Dichlorofluorescein Diacetate Probe and Flow-Cytometry in Müller Glial Cells. J. Vis. Exp. (183), e63337, doi:10.3791/63337 (2022).

View Video