В этой рукописи мы описываем простой метод роста, очистки и титрования онколитического вируса простого герпеса для доклинического использования.
Онколитические вирусы (ОВ), такие как онколитический вирус простого герпеса (oHSV), являются быстро растущей стратегией лечения в области иммунотерапии рака. ОВ, включая oHSV, избирательно реплицируются и убивают раковые клетки (щадя здоровые / нормальные клетки), одновременно индуцируя противоопухолевый иммунитет. Из-за этих уникальных свойств стратегии лечения на основе oHSV все чаще используются для лечения рака, доклинически и клинически, включая одобренный FDA талимоген лагерпаревек (T-Vec). Рост, очистка и титрование являются тремя основными лабораторными методами для любых ОВ, включая oHSV, прежде чем их можно будет использовать для экспериментальных исследований. В этой статье описывается простой пошаговый метод усиления oHSV в клетках Vero. Когда oHSV размножаются, они производят цитопатический эффект (CPE) в клетках Vero. Как только 90-100% инфицированных клеток показывают CPE, их аккуратно собирают, обрабатывают бензоназой и хлоридом магния (MgCl2),фильтруют и подвергают очистке с использованием метода сахарозы-градиента. После очистки количество инфекционных oHSV (обозначенных как бляшеобразующие единицы или PФУ) определяется с помощью «анализа бляшек» в клетках Vero. Протокол, описанный в настоящем описании, может быть использован для получения высокотитерного запаса oHSV для исследований in vitro в клеточной культуре и экспериментов in vivo на животных.
Онколитические вирусы (ОВ) являются новой и уникальной формой иммунотерапии рака. ОВ избирательно реплицируются и лизируют опухолевые клетки (щадя нормальные/здоровые клетки)1, индуцируя противоопухоляющий иммунитет2. Онколитический вирус простого герпеса (oHSV) является одним из наиболее широко изученных вирусов среди всех ОВ. Он находится дальше всего в клинике, причем Talimogene laherparepvec (T-VEC) является первым и единственным OV, получившим одобрение FDA в США для лечения прогрессирующей меланомы3. В дополнение к T-VEC, многие другие генетически модифицированные oHSV тестируются доклинически и клинически при различных типах рака3,4,5,6,7,8. Современная передовая рекомбинантная биотехнология ДНК еще больше повысила возможность разработки новых oHSV-кодирования для терапевтических трансгенов3,5. Эффективная система распространения, очистки и определения титра oHSV имеет решающее значение до того, как любой (недавно разработанный) oHSV может быть протестирован для исследований in vitro и in vivo. В данной работе описывается простой пошаговый метод роста oHSV (в клетках Vero), очистки (методом сахарозы-градиента) и титрования (путем анализа oHSV-бляшек в клетках Vero)(рисунок 1). Он может быть легко принят в любых лабораторных условиях уровня биобезопасности 2 (BSL2) для достижения высококачественного вирусного запаса для доклинических исследований.
Vero, африканская зеленая обезьянья клеточная линия почек, является наиболее часто используемой клеточной линией для распространения oHSV9,10,11,12,13, поскольку клетки Vero имеют дефектный противовирусный интерфероновый сигнальныйпуть 14. Другие клеточные линии с инактивированным стимулятором передачи сигналов генов интерферона (STING) также могут быть использованы для роста oHSV12,13. Этот протокол использует клетки Vero для роста oHSV и анализа бляшек. После размножения oHSV-инфицированные клетки собирают, литизируют и подвергают очистке, при этом лизированные клетки сначала обрабатывают нуклеазой бензоназы для деградации ДНК клеток-хозяев, предотвращения агрегации нуклеиновых кислот-белков и снижения вязкости клеточного лизата. Поскольку правильная активация бензоназы часто требуетMg 2+,1-2 мМ MgCl2 используется в этомпротоколе 15. Обломки клеток-хозяев из обработанного бензоназой клеточного лизата дополнительно удаляются путем последовательной фильтрации перед высокоскоростным центрифугированием градиента сахарозы. Вязкая подушка из 25% раствора сахарозы помогает обеспечить более медленную скорость миграции вируса через слой сахарозы, оставляя компоненты, связанные с клетками-хозяевами, в супернатанте, тем самым улучшая очистку и ограничивая потерю вируса в грануле16. Очищенный oHSV затем титруется на клетках Vero, а вирусные бляшки визуализируются окрашиванием Giemsa17 или окрашиванием X-gal (для LacZ, кодирующей oHSV)18.
Протокол начинается с роста oHSV в низкопролетных клетках Vero. Слияние монослоя клеток Vero должно составлять ~ 80% во время инокуляции вируса, так как разросшиеся клетки могут развивать плотные волокнистые структуры, которые могут уменьшить проникновение oHSV в клетки Vero20. После ?…
The authors have nothing to disclose.
Исследования в лаборатории Saha частично поддерживались средствами DoD (W81XWH-20-1-0702) и Dodge Jones Foundation-Abilene. Сэмюэл Д. Рабкин и Мелисса Р.M. Хамфри были частично поддержаны NIH (R01 CA160762).
1.7 mL centrifuge tubes | Sigma | CLS3620 | |
15 mL polypropylene centrifuge tubes | Falcon | 352097 | |
5 mL polypropylene tubes | Falcon | 352063 | |
50 mL polypropylene centrifuge tubes | Falcon | 352098 | |
6-well cell culture plates | Falcon | 353046 | |
Benzonase Nuclease | Sigma | E8263-25KU | |
Cell scraper | Fisher Scientific | 179693 | |
Dimethyl sulfoxide | Sigma | D2650-100ML | |
Dulbecco’s Modified Eagle Medium | Corning | MT-10-013-CV | |
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline | Corning | MT-21-031-CV | |
Fetal Bovine Serum | Hyclone | SH3007003 | |
Giemsa Stain | Sigma | G3032 | |
Glutaraldehyde | Fisher Scientific | 50-262-23 | |
Glycerol | Sigma | G5516 | |
Hank's Balanced Salt Solution (HBSS) | Corning | MT-21-021-CV | |
High-Glucose Dulbecco’s Phosphate-buffered Saline | Sigma | D4031 | |
Human immune globulin | Gamastan | NDC 13533-335-12 | |
Magnesium chloride | Fisher Chemical | M33-500 | |
Media Sterilization filter, 250 mL | Nalgene, Fisher Scientific | 09-740-25E | |
Media Sterilization filter, 500 mL | Nalgene, Fisher Scientific | 09-740-25C | |
Neutral Red solution | Sigma | N4638 | |
Paraformaldehyde | Fisher scientific | 15710S | |
Plate rocker | Fisher | 88861043 | |
Potassium Ferricyanide | Sigma | P8131 | |
Potassium Ferrocyanide | Sigma | P9387 | |
Sodium chloride | Fisher Chemical | S271-3 | |
Sorvall ST 16R Centrifuge | ThermoFisher Scientific | 75004381 | |
Sorvall ST 21R Centrifuge | ThermoFisher Scientific | 75002446 | |
Sterile Microcentrifuge Tubes with Screw Caps | Fisher Scientific | 02-681-371 | |
Sucrose | Fisher Scientific | BP220-1 | |
Syringe Filter, 0.45 PVDF | MilliporeSigma | SLHV033RS | |
Syringe Filter, 0.8 MCE | MilliporeSigma | SLAA033SS | |
Syringe filter, 5 µm PVDF | MilliporeSigma | SLSV025LS | |
T150 culture flask | Falcon | 355001 | |
Tris-HCl | MP Biomedicals LLC | 816116 | |
Ultrasonic water bath | Branson | CPX-952-116R | |
X-gal | Corning | 46-101-RF |