Tidsforeltigt proteininduceret fluorescensforbedring med et enkeltmolekyle er en nyttig fluorescensspektspekter, der er følsom over for lokale strukturelle ændringer i proteiner. Her viser vi, at det kan bruges til at afdække stabile lokale konformationer i α-Synuclein, som ellers er kendt som kugleformet ustruktureret og ustabil, når den måles ved hjælp af den længere rækkevidde FRET lineal.
Brug af spektroskopiske linealer til at spore flere konformationer af enkelte biomolekyler og deres dynamik har revolutioneret forståelsen af strukturelle dynamikker og dens bidrag til biologi. Mens den FRET-baserede lineal rapporterer om interfarveafstande i 3-10 nm-området, rapporterer andre spektroskopiske teknikker, såsom proteininduceret fluorescensforbedring (PIFE), om nærheden mellem et farvestof og en proteinoverflade i det kortere 0-3 nm-interval. Uanset valgmetoden henter dens anvendelse til måling af frit diffust biomolekyler en ad gangen histogrammer af forsøgsparameteren, der giver separate centralt fordelte underpopulationer af biomolekyler, hvor hver underpopulation enten repræsenterer en enkelt kropsbygning, der forblev uændret inden for millisekunder, eller flere konformationer, der interkonverterer meget hurtigere end millisekunder og dermed en gennemsnitlig subpopulation. I enkeltmolekyle FRET, hvor den rapporterede parameter i histogrammer er inter-dye FRET effektivitet, en iboende uordnet protein, såsom α-Synuclein monomer i buffer, blev tidligere rapporteret som udviser en enkelt gennemsnitlig-out delpopulation af flere konformationer inter konvertering hurtigt. Mens disse tidligere fund afhænger af 3-10 nm rækkevidde af FRET-baserede lineal, vi forsøgte at sætte dette protein på prøve ved hjælp af enkelt-molekyle PIFE, hvor vi spor fluorescens levetid stedspecifikke sCy3-mærket α-Synuclein proteiner én ad gangen. Interessant, ved hjælp af denne kortere rækkevidde spektroskopisk nærhed sensor, sCy3-mærket α-Synuclein udstiller flere levetid subpopulationer med tydeligt forskellige gennemsnitlige levetider, interkonvertere i 10-100 ms. Disse resultater viser, at mens α-Synuclein kan være uorden globalt, det ikke desto mindre opnår stabile lokale strukturer. Sammenfattende fremhæver vi i dette arbejde fordelen ved at bruge forskellige spektroskopiske nærhedssensorer, der sporer lokale eller globale strukturelle ændringer en biomolekyle ad gangen.
I løbet af de sidste to årtier er fluorescensbaserede metoder med enkeltmolekyler blevet et kraftfuldt værktøj til måling af biomolekyler1,2, hvilket undersøger, hvordan forskellige biomolekylære parametre fordelersig,samt hvordan de dynamisk interkonverterer mellem forskellige underpopulationer af disse parametre ved sub millisekunders opløsning3,4,5. Parametrene i disse teknikker omfatter energieffektivitet i FRET målinger 6,7, fluorescens anisotropi8,9, fluorescens quantum udbytter oglevetider 10,11, som en funktion af forskellige fluorescens slukke12 eller ekstraudstyr13 mekanismer. En af disse mekanismer, bedre kendt som protein-induceret fluorescens ekstraudstyr (PIFE)14 introducerer forbedring af fluorescens quantum udbytte og levetid som en funktion af sterisk obstruktion til fri isomerisering af fluorophore når i ophidset tilstand, forårsaget af proteinoverflader i nærheden af farvestoffet14,15,16,17,18,19 . Både FRET og PIFE betragtes som spektroskopiske linealer eller nærhedssensorer, da deres målte parameter er direkte forbundet med en rumlig foranstaltning inden for den mærkede biomolekyle under måling. Mens FRET-effektiviteten er relateret til afstanden mellem et par farvestoffer inden for en rækkevidde på 3-10 nm20, øger PIFE-spor i fluorescens quantum udbytter eller levetider relateret til afstanden mellem farvestoffet og en overflade af et nærliggende protein i intervallet 0-3 nm19.
Enkeltmolekyle FRET har været meget udbredt til at give strukturel indsigt i mange forskellige proteinsystemer, herunder iboende uorganiseret proteiner (IIV’er)21, såsom α-Synuclein (α-Syn)22. α-Syn kan danne ordnede strukturer efter binding til forskellige biomolekyler og under forskellige forhold23,24,25,26,27,28,29,30. Men når den er ubundet, er α-Syn-monomer karakteriseret ved høj kropsbygnings heterogenitet med hurtigt interkonverterende konformationer31,32.
Overensstemmelserne mellem α-Syn er tidligere blevet undersøgt ved hjælp af forskellige teknikker, der hjælper med at identificere kropsbygningsdynamikken i sådanne meget heterogene og dynamiske proteinsystemer33,34,35,36,37,38,39. Interessant, enkelt-molekyle FRET (smFRET) målinger af α-Syn i buffer rapporterede en enkelt FRET befolkning39,40, der er et resultat af tid-gennemsnit af konformationer dynamisk interkonvertere til tider meget hurtigere end den typiske diffusion tid α-Syn gennem confocal stedet (gange så hurtigt som få mikrosekunder og endnu hurtigere end det, i forhold til typiske millisekunder diffusion gange)40, 41. Men ved hjælp af en FRET spektroskopisk lineal med 3-10 nm afstand følsomhed undertiden rapporterer kun om generelle strukturelle ændringer i et lille protein som α-Syn. Målinger med enkeltmolekyler, der anvender spektroskopiske nærhedssensorer med kortere afstandsfølsomhed, har potentiale til at rapportere om dynamikken i lokale strukturer. Heri udfører vi enkeltmolekylet PIFE-målinger af α-Syn og identificerer forskellige underpopulationer af fluorescens levetid kortlægning til forskellige lokale strukturer med overgange mellem dem så langsomt som 100 ms. Dette arbejde opsummerer tidsforbestemte smPIFE-målinger af frit diffuserende α-Syn-molekyler en ad gangen, i buffer og når de er bundet til SDS-baserede membraner som en kortrækkende enkeltmolekylespektroskopisk nærhedssensor.
Omfattende biokemiske og biofysiske undersøgelser blev udført for at studere de strukturelle egenskaber ved α-Syn og dens uordnede natur33,34,35,36,37,38. Flere værker har allerede brugt frit diffuserende smFRET til at undersøge den intra-molekylære dynamik i α-Syn monomer fri for binding. Disse værker rapporterede de…
The authors have nothing to disclose.
Den pT-t7 plasmid kodning A56C α-Syn mutant blev givet til os som en gave fra Dr. Asaf Grupi, Dr. Dan Amir og Dr. Elisha Haas. Dette papir blev støttet af National Institutes of Health (NIH, tilskud R01 GM130942 til E.L. som en subaward), Israel Science Foundation (tilskud 3565/20 inden for KillCorona – Curbing Coronavirus Research Program), Milner Fonden og Hebrew University of Jerusalem (start midler).
Amicon Ultra-15 Centrifugal Filter Units | Merc | C7715 | cutoff: 100 kDa |
ammonium sulfate | Sigma-Aldrich | A4418 | |
BSA | Sigma-Aldrich | A9647 | |
cysteamine | Sigma-Aldrich | 30070 | |
dialysis bags – MEGA GeBaFlex-tube | Gene Bio-Application | MEGA320 | |
dithiothreitol (DTT) | Sigma-Aldrich | 43815 | |
ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | Sigma-Aldrich | E5134 | |
Fast SeeBand staining solution | Gene Bio-Application | SB050 | |
Glycine | Sigma-Aldrich | 50046 | |
D-Glucose | Sigma-Aldrich | G7021 | |
HEPES | Sigma-Aldrich | 54457 | |
HiTrap Desalting 5 mL | Sigma-Aldrich | GE17-1408 | |
6-hydroxy-2,5,7,8-tetramethylchroman-2-carboxylic acid (TROLOX) | Sigma-Aldrich | 238813 | |
isopropyl β-d-1-thiogalactopyranoside (IPTG) | Sigma-Aldrich | I5502 | |
LB broth | Sigma-Aldrich | L3152 | |
Magnesium chloride | Sigma-Aldrich | 63068 | |
MonoQ column | Sigma-Aldrich | 54807 | |
protein LoBind tube | Sigma-Aldrich | EP0030108094 | 0.5 mL |
Rinse a µ-slide 18 | Ibidi | 81816 | |
SDS | Sigma-Aldrich | 75746 | |
Sodium acetate | Sigma-Aldrich | S2889 | |
Sodium hydroxide | Sigma-Aldrich | S8045 | |
Sodium phosphate monobasic monohydrate | Sigma-Aldrich | 71507 | |
Sterile Cell spreaders, Drigalski spatulas | mini-plast | 815-004-05-001 | |
streptomycin sulfate | Sigma-Aldrich | S9137 | |
sulfo-Cy3 maleimide | abcam | ab146493 | |
Tris(2-carboxyethyl)phosphine hydrochloride (TCEP) | Sigma-Aldrich | 75259 | |
Tris-HCl | Sigma-Aldrich | 93363 | |
Tryptone | Sigma-Aldrich | T7293 | |
Yeast Extract | Sigma-Aldrich | Y1625 |