Summary

Kvantifisering av etanolnivåer i sebrafiskembryoer ved hjelp av hodeplassgasskromatografi

Published: February 11, 2020
doi:

Summary

Dette arbeidet beskriver en protokoll for å kvantifisere etanolnivåer i et sebrafiskembryo ved hjelp av hodeplassgasskromatografi fra riktige eksponeringsmetoder for embryobehandling og etanolanalyse.

Abstract

Føtal alkoholspektrumforstyrrelser (FASD) beskriver et svært variabelt kontinuum av etanolinduserte utviklingsdefekter, inkludert ansiktsdysmorfologier og nevrologiske funksjonsnedsettelser. Med en kompleks patologi påvirker FASD ca. 1 av 100 barn født i USA hvert år. På grunn av FASDs svært variable natur har dyremodeller vist seg å være kritiske i vår nåværende mekanistiske forståelse av etanolinduserte utviklingsdefekter. Et økende antall laboratorier har fokusert på å bruke sebrafisk for å undersøke etanolinduserte utviklingsdefekter. Sebrafisk produserer et stort antall eksternt befruktede, genetisk tractable, gjennomsiktige embryoer. Dette gjør det mulig for forskere å nøyaktig kontrollere timing og dosering av etanoleksponering i flere genetiske sammenhenger og kvantifisere virkningen av embryonisk etanoleksponering gjennom levende bildeteknikker. Dette, kombinert med den høye graden av bevaring av både genetikk og utvikling med mennesker, har vist sebrafisk å være en kraftig modell for å studere mekanistisk grunnlag av etanol teratogenitet. Etanoleksponeringsregimer har imidlertid variert mellom ulike sebrafiskstudier, som har forvirret tolkningen av sebrafiskdata på tvers av disse studiene. Her er en protokoll for å kvantifisere etanolkonsentrasjoner i sebrafiskembryoer ved hjelp av hodeplassgasskromatografi.

Introduction

Føtal alkoholspektrumforstyrrelser (FASD) beskriver et bredt spekter av nevrologiske funksjonsnedsettelser og kraniofaciale dysmorfologier forbundet med embryonisk etanoleksponering1. Flere faktorer, inkludert timing og dosering av etanoleksponering og genetisk bakgrunn, bidrar til variasjonen av FASD2,3. Hos mennesker gjør det komplekse forholdet mellom disse variablene å studere og forstå etiologien til FASD utfordrende. Dyremodeller har vist seg avgjørende for å utvikle vår forståelse av det mekanistiske grunnlaget for etanolteratogenisitet. Et bredt utvalg av dyremodellsystemer har blitt brukt til å studere flere aspekter av FASD, og resultatene har vært bemerkelsesverdig konsistente med det som finnes i eksponering hos mennesker4. Gnagermodellsystemer brukes til å undersøke mange aspekter av FASD, med mus som den vanligste5,6,7. Mesteparten av dette arbeidet har fokusert på utviklingsdefekter til tidlig etanoleksponering8, men senere eksponering for etanol har vist seg å forårsake utviklingsavvik også9. Videre har de genetiske egenskapene til mus i stor grad hjulpet i vår evne til å undersøke de genetiske fundamentene til FASD10,11. Disse studiene hos mus tyder sterkt på at det er gen-etanol interaksjoner med sonic pinnsvin banen, retinsyre signalering, Superoxide dismutase, Nitrogenoksid synthase I, Aldh2 og Fancd28,10,11,12,13,14,15,16,17,18, 19,20,21. Disse studiene viser at dyremodeller er avgjørende for å fremme vår forståelse av FASD og dens underliggende mekanismer.

Sebrafisken har dukket opp som et kraftig modellsystem for å undersøke mange aspekter av etanol teratogenese22,23. På grunn av deres eksterne befruktning, høy fecundity, genetisk tractability, og levende bildebehandling evner, sebrafisk er ideelt egnet til å studere faktorer som timing, dosering, og genetikk av etanol teratogenese. Etanol kan administreres til nøyaktig iscenesatte embryoer, og embryoene kan deretter avbildet for å undersøke den direkte virkningen av etanol under utviklingsprosesser. Dette arbeidet kan være relatert direkte til mennesker, fordi de genetiske utviklingsprogrammene er høyt bevart mellom sebrafisk og mennesker og kan derfor bidra til å veilede FASD menneskelige studier24. Mens sebrafisk har blitt brukt til å undersøke etanol teratogenese, gjør mangel på konsensus i rapportering av embryonale etanolkonsentrasjoner sammenligning med mennesker vanskelig25. I pattedyrsystemer korrelerer blod-alkoholnivåer direkte med vevsetanolnivåer26. Mange av sebrafiskstudiene behandler embryoer før fullstendig dannelse av sirkulasjonssystemet. Uten maternal prøve å undersøke, er det nødvendig med en prosess for å vurdere etanolkonsentrasjoner for å kvantifisere etanolnivåer i embryoet. Her beskriver vi en prosess for å kvantifisere etanolkonsentrasjoner i et utviklende sebrafiskembryo ved hjelp av hodeplassgasskromatografi.

Protocol

Alle sebrafiskembryoer som ble brukt i denne prosedyren ble hevet og avlet etter etablerte IACUC-protokoller27. Disse protokollene ble godkjent av University of Texas i Austin og University of Louisville. MERK: Sebrafisklinjen Tg(fli1:EGFP)y1 ble brukt i denne studien28. Alt vann som brukes i denne prosedyren er sterilt omvendt osmose vann. Alle statistiske analyser ble utført ved hjelp av Graphpad Prism v8.2.1. <p class…

Representative Results

Blodetanolnivåer kan ikke bestemmes i tidlig embryonale sebrafisk, fordi de mangler et fullt dannet sirkulasjonssystem. For å bestemme nivået av etanolkonsentrasjon i sebrafiskembryoene, måles etanolnivåene direkte fra homogenisert embryonalvev. For å måle de embryonale etanolkonsentrasjonene må det embryonale volumet tas i betraktning. Embryoet (eggeplomme festet) sitter inne i chorion (eggeskall) omgitt av ekstraembryonisk væske (Figur 1). Ethvert volummål på embryoet må gjøre…

Discussion

Som et utviklingsmodellsystem er sebrafisk ideelt egnet til å studere virkningen av miljøfaktorer på utvikling. De produserer et stort antall eksternt befruktede embryoer, noe som gir presis timing og doseringparadigmer i etanolstudier. Dette, kombinert med live imaging evner og genetisk og utviklingsmessig bevaring med mennesker, gjør sebrafisk et kraftig modellsystem for teratologi studier. Beskrevet er en protokoll for måling av embryonale etanolkonsentrasjoner i utviklingen av sebrafiskembryoer ved hjelp av hode…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forskningen som presenteres i denne artikkelen ble støttet av tidligere tilskudd fra National Institutes of Health/National Institute of Dental and Craniofacial Research (NIH/NIDCR) R01DE020884 til J.K.E. og National Institutes of Health/National Institute on Alcohol Abuse and Alcoholism (NIH/NIAAA) F32AA021320 til C.B.L. og ved dagens tilskudd fra National Institutes of Health/National Institute on Alcohol Abuse (NIH/NIAAA) R00AA023560 til C.B.L. Vi takker Rueben Gonzales for å gi og bistå med gasskromatografanalyse. Vi takker Tiahna Ontiveros og Dr. Gina Nobles skrive hjelp.

Materials

Air Provided by contract to the university
Analytical Balance VWR 10204-962
AutoSampler, CP-8400 Varian Gas Chromatograph Autosampler
Calcium Chloride VWR 97062-590
Ethanol Decon Labs 2701
Gas chromatograph vial with polytetrafluoroethylene/silicone septum and plastic cap 2 mL Agilent 8010-0198 Can reuse the vials after cleaning, but not the caps/septa
Gas Chromatograph, CP-3800 Varian
Helium Provided by contract to the university
HP Innowax capillary column Agilent 19095N-123I 30 m x 0.53 mm x 1.0 μm film thick
Hyrdogen Provided by contract to the university
Magnesium Sulfate (Heptahydrate) Fisher Scientific M63-500
Microcentrifuge tube 1.5 mL Fisher Scientific 2682002
Micropipette tips 10 μL Fisher Scientific 13611106
Micropipette tips 1000 μL Fisher Scientific 13611127
Micropipette tips 200 μL Fisher Scientific 13611112
Petri dishes 100 mm Fisher Scientific FB012924
Pipetman L p1000L Micropipette Gilson FA10006M
Pipetman L p200L Micropipette Gilson FA10005M
Pipetman L p2L Micropipette Gilson FA10001M
Polytetrafluoroethylene/silicone septum and plastic cap Agilent 5190-7021 Replacement caps/septa for gas chromatograph vials
Potassium Chloride Fisher Scientific P217-500
Potassium Phosphate (Dibasic) VWR BDH9266-500G
Pronase VWR 97062-916
Silica Beads .5 mm Biospec Products 11079105z
Silica Beads 1.0 mm Biospec Products 11079110z
Sodium Bicarbonate VWR BDH9280-500G
Sodium Chloride Fisher Scientific S271-500
Sodium Phosphate (Dibasic) Fisher Scientific S374-500
Solid-phase microextraction fiber assembly Carboxen/Polydimethylsiloxane Millipore Sigma 57343-U Replacement fibers
Star Chromatography Workstation Varian Chromatography software
Thermogreen Low Bleed (LB-2) Septa Millipore Sigma 23154 Replacement inlet septa

Referências

  1. Elliott, E. J., Payne, J., Morris, A., Haan, E., Bower, C. Fetal alcohol syndrome: a prospective national surveillance study. Archive of Diseases in Childhood. 93 (9), 732-737 (2008).
  2. Cudd, T. A. Animal model systems for the study of alcohol teratology. Experimental Biology and Medicine. 230 (6), 389-393 (2005).
  3. Williams, J. F., Smith, V. C. Committee on Substance Abuse. Fetal Alcohol Spectrum Disorders. Pediatrics. 136 (5), 1395-1406 (2015).
  4. Patten, A. R., Fontaine, C. J., Christie, B. R. A comparison of the different animal models of fetal alcohol spectrum disorders and their use in studying complex behaviors. Frontiers in Pediatrics. 2, 93 (2014).
  5. Petrelli, B., Weinberg, J., Hicks, G. G. Effects of prenatal alcohol exposure (PAE): insights into FASD using mouse models of PAE. Biochemistry and Cell Biology. 96 (2), 131-147 (2018).
  6. Mayfield, J., Arends, M. A., Harris, R. A., Blednov, Y. A. Genes and Alcohol Consumption: Studies with Mutant Mice. International Review Neurobiology. 126, 293-355 (2016).
  7. Marquardt, K., Brigman, J. L. The impact of prenatal alcohol exposure on social, cognitive and affective behavioral domains: Insights from rodent models. Alcohol. 51, 1-15 (2016).
  8. Sulik, K. K. Genesis of alcohol-induced craniofacial dysmorphism. Experimental Biology and Medicine. 230 (6), 366-375 (2005).
  9. Lipinski, R. J., et al. Ethanol-induced face-brain dysmorphology patterns are correlative and exposure-stage dependent. PLoS One. 7 (8), 43067 (2012).
  10. Eberhart, J. K., Parnell, S. The genetics of fetal alcohol spectrum disorders. Alcoholism: Clinical and Experimental Research. 40 (6), 1154-1165 (2016).
  11. Becker, H. C., Diaz-Granados, J. L., Randall, C. L. Teratogenic actions of ethanol in the mouse: a minireview. Pharmacology, Biochemistry and Behavior. 55 (4), 501-513 (1996).
  12. Ahlgren, S. C., Thakur, V., Bronner-Fraser, M. Sonic hedgehog rescues cranial neural crest from cell death induced by ethanol exposure. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (16), 10476-10481 (2002).
  13. Loucks, E. J., Ahlgren, S. C. Deciphering the role of Shh signaling in axial defects produced by ethanol exposure. Birth Defects Research Part A: Clinical and Molecular Teratology. 85 (6), 556-567 (2009).
  14. Hong, M., Krauss, R. S. Cdon mutation and fetal ethanol exposure synergize to produce midline signaling defects and holoprosencephaly spectrum disorders in mice. PLoSGenetics. 8 (10), 1002999 (2012).
  15. Aoto, K., Shikata, Y., Higashiyama, D., Shiota, K., Motoyama, J. Fetal ethanol exposure activates protein kinase A and impairs Shh expression in prechordal mesendoderm cells in the pathogenesis of holoprosencephaly. Birth Defects Research Part A: Clinical and Molecular Teratology. 82 (4), 224-231 (2008).
  16. Deltour, L., Ang, H. L., Duester, G. Ethanol inhibition of retinoic acid synthesis as a potential mechanism for fetal alcohol syndrome. The FASEB Journal. 10 (9), 1050-1057 (1996).
  17. Wentzel, P., Eriksson, U. J. Ethanol-induced fetal dysmorphogenesis in the mouse is diminished by high antioxidative capacity of the mother. Toxicological Sciences. 92 (2), 416-422 (2006).
  18. Karacay, B., Mahoney, J., Plume, J., Bonthius, D. J. Genetic absence of nNOS worsens fetal alcohol effects in mice. II: microencephaly and neuronal losses. Alcoholism: Clinical and Experimental Research. 39 (2), 221-231 (2015).
  19. Bonthius, D. J., Winters, Z., Karacay, B., Bousquet, S. L., Bonthius, D. J. Importance of genetics in fetal alcohol effects: null mutation of the nNOS gene worsens alcohol-induced cerebellar neuronal losses and behavioral deficits. Neurotoxicology. 46, 60-72 (2015).
  20. Bonthius, D. J., et al. Deficiency of neuronal nitric oxide synthase (nNOS) worsens alcohol-induced microencephaly and neuronal loss in developing mice. Brain Research. Developmental Brain Research. 138 (1), 45-59 (2002).
  21. Langevin, F., Crossan, G. P., Rosado, I. V., Arends, M. J., Patel, K. J. Fancd2 counteracts the toxic effects of naturally produced aldehydes in mice. Nature. 475 (7354), 53-58 (2011).
  22. Lovely, C. B., Fernandes, Y., Eberhart, J. K. Fishing for Fetal Alcohol Spectrum Disorders: Zebrafish as a Model for Ethanol Teratogenesis. Zebrafish. 13 (5), 391-398 (2016).
  23. Fernandes, Y., Buckley, D. M., Eberhart, J. K. Diving into the world of alcohol teratogenesis: a review of zebrafish models of fetal alcohol spectrum disorder. Biochemistry and Cell Biology. 96 (2), 88-97 (2018).
  24. McCarthy, N., et al. Pdgfra protects against ethanol-induced craniofacial defects in a zebrafish model of FASD. Development. 140 (15), 3254-3265 (2013).
  25. Lovely, C. B., Nobles, R. D., Eberhart, J. K. Developmental age strengthens barriers to ethanol accumulation in zebrafish. Alcohol. 48 (6), 595-602 (2014).
  26. Harris, R. A., Trudell, J. R., Mihic, S. J. Ethanol’s molecular targets. Science Signaling. 1 (28), (2008).
  27. Westerfield, M. . The Zebrafish Book: A guide for the laboratory use of zebrafish Danio (Brachydanio) rerio. , (1993).
  28. Lawson, N. D., Weinstein, B. M. In vivo imaging of embryonic vascular development using transgenic zebrafish. Biologia do Desenvolvimento. 248 (2), 307-318 (2002).
  29. Hagedorn, M., Kleinhans, F. W., Artemov, D., Pilatus, U. Water Distribution and permeability of zebrafish embryos, Brachydanio rerio. Journal of Experimental Zoology. 278 (6), 356-371 (1997).
  30. Lippi, G., et al. The alcohol used for cleansing the venipuncture site does not jeopardize blood and plasma alcohol measurement with head-space gas chromatography and an enzymatic assay. Biochemia Medica. 27 (2), 398-403 (2017).
  31. Poklis, J. L., Wolf, C. E., Peace, M. R. Ethanol concentration in 56 refillable electronic cigarettes liquid formulations determined by headspace gas chromatography with flame ionization detector (HS-GC-FID). Drug Testing and Analysis. 9 (10), 1637-1640 (2017).
  32. Heit, C., et al. Quantification of Neural Ethanol and Acetaldehyde Using Headspace GC-MS. Alcoholism: Clinical and Experimental Research. 40 (9), 1825-1831 (2016).
  33. Chun, H. J., Poklis, J. L., Poklis, A., Wolf, C. E. Development and Validation of a Method for Alcohol Analysis in Brain Tissue by Headspace Gas Chromatography with Flame Ionization Detector. Journal of Analytical Toxicology. 40 (8), 653-658 (2016).
  34. Schlatter, J., Chiadmi, F., Gandon, V., Chariot, P. Simultaneous determination of methanol, acetaldehyde, acetone, and ethanol in human blood by gas chromatography with flame ionization detection. Human and Experimental Toxicology. 33 (1), 74-80 (2013).
  35. Schier, C. J., Mangieri, R. A., Dilly, G. A., Gonzales, R. A. Microdialysis of ethanol during operant ethanol self-administration and ethanol determination by gas chromatography. Journal of Visualized Experiments. (67), e4142 (2012).
  36. Adalsteinsson, E., Sullivan, E. V., Mayer, D., Pfefferbaum, A. In vivo quantification of ethanol kinetics in rat brain. Neuropsychopharmacology. 31 (12), 2683-2691 (2006).
  37. Quertemont, E., Green, H. L., Grant, K. A. Brain ethanol concentrations and ethanol discrimination in rats: effects of dose and time. Psychopharmacology. 168 (3), 262-270 (2003).
  38. Flentke, G. R., Klinger, R. H., Tanguay, R. L., Carvan, M. J., Smith, S. M. An evolutionarily-conserved mechanism of calcium-dependent neurotoxicity. Alcoholism: Clinical and Experimental Research. 38 (5), 1255-1265 (2014).
  39. Reimers, M. J., Flockton, A. R., Tanguay, R. L. Ethanol- and acetaldehyde-mediated developmental toxicity in zebrafish. Neurotoxicology and Teratology. 26 (6), 769-781 (2004).
  40. Zhang, C., Ojiaku, P., Cole, G. J. Forebrain and hindbrain development in zebrafish is sensitive to ethanol exposure involving agrin, Fgf, and sonic hedgehog function. Birth Defects Research Part A: Clinical and Molecular Teratology. 97 (1), 8-27 (2013).

Play Video

Citar este artigo
Lovely, C. B. Quantification of Ethanol Levels in Zebrafish Embryos Using Head Space Gas Chromatography. J. Vis. Exp. (156), e60766, doi:10.3791/60766 (2020).

View Video