Summary

Replikering af bestilt, Nonredundant bibliotek af Pseudomonas aeruginosa stamme PA14 Transposon indsættelse mutanter

Published: May 04, 2018
doi:

Summary

Pseudomonas aeruginosa infektion forårsager betydelig sygelighed i sårbare værter. Nonredundant transposon indsættelse mutant bibliotek af P. aeruginosa stamme PA14, udpeget som PA14NR sæt, letter analyse af genet funktionalitet i mange processer. Præsenteres her er en protokol til at skabe høj kvalitet kopier af PA14NR indstillet mutant biblioteket.

Abstract

Pseudomonas aeruginosa er en fænotype og genotypisk forskelligartede og tilpasningsdygtige Gram-negative bakterie allestedsnærværende i menneskeskabte miljøer. P. aeruginosa er i stand til at danne biofilm, udvikle resistens over for antibiotika, producere virulens faktorer og hurtigt udvikler sig i løbet af en kronisk infektion. Dermed kan P. aeruginosa medføre både akutte og kroniske, vanskelige at behandle infektioner, resulterer i betydelig sygelighed i bestemte patientgrupper. P. aeruginosa stamme PA14 er en menneskelig klinisk isolere med et bevaret genom struktur, der inficerer en bred vifte af pattedyr og nonvertebrate værter at gøre PA14 en attraktiv stamme til at studere dette patogen. I 2006, blev en nonredundant transposon indsættelse mutant bibliotek indeholdende 5,459 mutanter svarende til 4,596 forudsagte PA14 gener genereret. Siden da har distribution i biblioteket PA14 tilladt forskersamfundet til bedre at forstå funktionen af enkelte gener og komplekse veje af P. aeruginosa. Vedligeholdelse af bibliotek integritet gennem replikering processen kræver korrekt håndtering og præcise teknikker. Med henblik herpå præsenterer dette manuskript protokoller, der beskriver i detaljer trin involveret i biblioteket replikering, bibliotek kvalitetskontrol og korrekt opbevaring af individuelle mutanter.

Introduction

Pseudomonas aeruginosa er en fænotype og genotypisk forskelligartede og tilpasningsdygtige Gram-negative bakterien findes i jord, vand, og de fleste menneskelige miljøer samt hud mikroflora. Sammenlignet med mange bakteriearter, har P. aeruginosa et relativt stort genom af 5,5-7 Mbp med høj G + C indhold (65-67%). Desuden en betydelig del af dets gener er involveret i metaboliske tilpasningsevne og er en del af regulerende net, giver mulighed for stor fleksibilitet i respons til miljøstress1. P. aeruginosa udtrykker en overflod af virulens faktorer, udstiller hang til form biofilm, besidder evnen til at koordinere svar gennem flere quorum sensing veje og viser en bemærkelsesværdig evne til at udvikle resistens over for antibiotika og tolerance2,3,4,5,6,7,8. Disse attributter præsentere betydelige udfordringer til behandling af infektioner forårsaget af P. aeruginosa.

Kronisk P. aeruginosa infektioner kan opstå i mange sygdomstilstande. Cystisk fibrose (CF), en genetisk sygdom forårsaget af mutation af genet Cystisk fibrose Transmembrane ledningsevne Regulator (CFTR) resulterer i inspissated, inficerede sekret i luftvejene, progressive bronchiectasis og i sidste ende, død fra respirationssvigt9. Af voksenalderen, er størstedelen af patienter med CF kronisk inficeret med P. aeruginosa, som spiller en central rolle i sygelighed og dødelighed forbundet med denne sygdom10. Derudover, er patienter med svær brænde skader11, tracheostomies12, ledalloplastik13eller iboende katetre14 i risiko for P. aeruginosa infektion relateret til bakteriernes evne til at danne biofilm og undslippe vært inflammatoriske respons15. Yderligere, kolonisering opstår uden konkurrence efter en multi antibiotika-resistente eller tolerant befolkning er valgt gennem bredspektret, sekventiel antimikrobiel behandling12,16,17 , 18. bedre forståelse af P. aeruginosa’s patogenese vil få betydelige følger for adskillige sygdomstilstande.

Flere P. aeruginosa kliniske isolater, herunder stammer PAO1, PA103, PA14 og PAK, er blevet grundigt undersøgt for at undersøge forskellige funktioner af P. aeruginosa patogenese. Stamme PA14 er en klinisk isolat, der hører til en af de mest almindelige klonede grupper verden over19,20 og ikke har været omfattende passaged i laboratoriet. PA14is stærkt virulente i hvirveldyr modeller af infektion med en bemærkelsesværdig endotoxin profil21, pili strukturere22, patogenicitet øer23, Skriv III sekretion system (TTSS), cytotoksicitet mod pattedyr celler24 og profiler i antibiotisk resistens og persistens25. Derudover PA14 er også stærkt virulente i talrige vært-patogen modelsystemer, herunder plante blad infiltration modeller26,27,Caenorhabditis elegans infektion modeller28, 29, insekt modeller30,31, samt mus lungebetændelse modeller32,33 og hud brænde modeller34.

Genome-wide mutant biblioteker er samlinger af isogene mutanter i uvæsentlige gener, der udgør meget kraftfulde værktøjer til at forstå i en organisme biologi ved at tillade analyse af genfunktioner på en genomisk skala. To nær-mætning transposon indsættelse mutant biblioteker bygget i P. aeruginosa er i øjeblikket tilgængelig for distribution. Indsættelse lokaliteter af transposoner er blevet fastsat for begge biblioteker. Disse såkaldte nonredundant biblioteker lette genome-wide undersøgelser af bakteriestammer af væsentligt reducere tid og omkostninger, der er involveret i screening uncharacterized tilfældige transposon mutanter. P. aeruginosa PAO1 transposon mutant biblioteket, bygget i MPAO1 isolere stamme PAO1 ved hjælp af transposoner erphoA/ hah og erlacZ/ hah35, er kurateret af Manoil lab, University of Washington. Biblioteket består af en sekvens-verificerede samling af 9,437 transposon mutanter, der giver bred genom dækning og omfatter to mutanter for de fleste gener36. Oplysninger om P. aeruginosa PAO1 transposon mutant biblioteket er tilgængelig på den offentlige, internet-adgang Manoil lab hjemmeside på http://www.gs.washington.edu/labs/manoil/libraryindex.htm. P. aeruginosa stamme PA14 nonredundant transposon indsættelse mutant bibliotek (PA14NR indstille) fremstillet i stammen PA14 ved hjælp af transposoner MAR2xT7 og TnphoA37 er i øjeblikket distribueres af Department of Pediatrics på Massachusetts General Hospital. PA14NR sæt består af en samling af mere end 5.800 mutanter med enkelt transposon indsættelser i uvæsentlige gener37. Detaljer om opførelsen af PA14NR sæt er beskrevet i den offentlige, internet-adgang site http://pa14.mgh.harvard.edu/cgi-bin/pa14/home.cgi?section=NR_LIB, som også indeholder en bred vifte af online værktøjer til at lette anvendelsen af PA14NR Sæt.

Den oprindelige PA14NR Set består 5,459 mutanter, udvalgt fra et omfattende bibliotek af cirka 34.000 tilfældige transposon indsættelse mutanter, der svarer til 4,596 forudsagte PA14 gener der repræsenterer 77% af alle forudsagte PA14 gener37. Siden opførelsen af biblioteket i 2006 blev der tilføjet nye mutanter, og i øjeblikket PA14NR sættet indeholder mere end 5.800 mutanter38 , der repræsenterer ca. 4.600 PA14 gener. Fleste af PA14 transposon mutanter blev genereret i vildtype baggrund37. Oplysninger om hvert medlem af biblioteket mutant, herunder genetiske baggrund, er tilgængelig enten via søgning online database eller ved at downloade Nonredundant bibliotek regnearket, begge funktioner på webstedet PA14 (http:// pa14.MGH.Harvard.edu/cgi-bin/pa14/Home.cgi). Fleste af mutanter var skabt benytter MAR2xT7 (MrT7) transposon, med et lille sæt oprettet ved hjælp af TnPhoA (phoA) transposon37. Hver transposon har en antibiotisk resistens kassette, som giver mulighed for mutant markeringen ved hjælp af gentamicin (MrT7) eller kanamycin (phoA). PA14NR sæt af mutanter er gemt i 63 96-brønd plader og omfatter to yderligere 96-brønd kontrol plader, der består af vildtype PA14 podes og utilsåede wells imidlerid i en forudindstillet mønster. 96-brønd plade format parret med online søgeredskaber høj grad letter den brugerdefinerede udvikling af screening assays, der giver brugerne til nemt at identificere gener forbundet med mutant fænotyper. Online-søgning værktøjer også lette søgning og udvælgelse af yderligere relevante mutanter kræves for yderligere undersøgelser.

De PA14 og PAO1 transposon mutant biblioteker er meget vigtige globale ressourcer for forskerverdenen, og de supplerer hinanden i validering af funktionen af ukendt gener og veje på dette bakteriel patogen. Tilfældigvis, siden opførelsen af PAO1 og PA14 transposon mutation bibliotekerne, har fuld-genom DNA-sekventering analyse af mange P. aeruginosa -isolater vist at PAO1 og PA14 tilhører forskellige større subclades af P. aeruginosa fylogeni7,39,40,41. Fordi kliniske P. aeruginosa -isolater findes fordelt i hele fylogeni, det faktum, at PAO1 og PA14 tilhører forskellige P. aeruginosa undergrupper øger værdien af de to transposon mutation biblioteker for sammenlignende undersøgelser.

Publikationer, der beskriver opbygningen og screening af bakteriel mutant biblioteker, herunder P. aeruginosa biblioteker35,er37,42, let tilgængelige i litteraturen. Dog til bedst af vores viden, ingen publicerede protokoller der beskriver detaljerede procedurer og teknikker, der anvendes til replikering, er vedligeholdelse og validering af bakteriel mutant biblioteker tilgængelige.

Den metode, der er skitseret i denne publikation beskriver et sæt af tre protokoller, der letter brug og vedligeholdelse af PA14NR sæt. Den første protokol beskriver replikering af biblioteket som anbefalet til modtagere af PA14NR sæt. Den anden protokol omfatter retningslinjer for striber, voksende, og opbevaring individuelle mutanter identificeret ved hjælp af PA14NR sæt. Den tredje protokol beskriver kvalitetskontrol teknikker, herunder PCR-amplifikation af fragmenter fra transposon mutanter og efterfølgende sekventering at bekræfte mutant identitet. Dette sæt af protokoller kan også tilpasses til replikering og vedligeholdelse af andre bakterielle mutant biblioteker eller samlinger. Replikering af bakteriel mutant biblioteker eller samlinger er stærkt tilrådes at bevare integriteten af “masterkopien” (original kopi modtaget). Replikering af flere kopier af PA14NR angive til rutinemæssige laboratoriebrug minimerer sandsynligheden for interwell kontaminering af masterkopi.

Protocol

Forsigtig: Udnytte standard BSL-2 sikkerhedsforanstaltninger ved håndtering af P. aeruginosa, en menneskelig patogen. Hvis du er privatperson immunkompromitterede eller har en sygdomstilstand, der øger din modtagelighed over for bakteriel infektion, tage særlig forsigtighed, når du arbejder med s. aeruginosa. Kontakt kontoret for Biosikkerhed i din institution og indhente godkendelse fra din læge før du arbejder med den PA14 NR indstillet eller mutant biblioteker af bakterielle patogener. <p c…

Representative Results

Tolv nye kopier af PA14NR Set blev kopieret ved hjælp af protokollen jeg, og en kvalitetskontrol vurdering af de nye kopier genereret blev gennemført ved hjælp af protokollen III. PA14NR sæt mutant plader sammen med kontrol plader, der består af vildtype PA14 podes og utilsåede wells imidlerid i en forudindstillet mønster (figur 4A), blev kopieret efter methology beskrevet i protokollen I. ko…

Discussion

P. aeruginosa PA14NR er en værdifuld ressource for det videnskabelige samfund. Ifølge marts 2017 datasæt fra Clarivate Analytics’ væsentlige videnskab Indicators database, Liberati et al. (2006) 37, der beskriver opbygningen af PA14NR sat, er placeret i den øverste 1% af Mikrobiologi publikationer. Google Scholar rapporter over 600 citater af Liberati et al. (2006) originale manuskript fra August 2017. Biblioteket har spillet en vigtig rolle i belyse de und…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gerne takke Lisa Philpotts MGH Treadwell virtuelle bibliotek for hendes vejledning i til databasesøgning. Dette arbejde blev støttet af cystisk fibrose Foundation (YONKER16G0 og HURLEY16G0) og NIH NIAID (BPH og ADE: R01 A1095338).

Materials

Materials for Library Replication
Sterile 96-well Tissue-culture treated, case of 50 Corning Life Sciences 353072 via Fisher Scientific
Sterile 96 Well Clear V-Bottom 2000μL Deep Well Plates, case of 25 Corning Life Sciences 3960 via Fisher Scientific
Nunc OmniTray (rectangular plates), case of 60 Thermo Scientific Rochester 242811 via Fisher Scientific
Rectangular Ice Pan, Midi (4L) Corning Life Sciences 432104 via Fisher Scientific
Secure-Gard Cone Mask, case of 300 Cardinal Health AT7509 via Fisher Scientific
AluminaSeal, pack of 100 Diversified Biotech ALUM-100 via Fisher Scientific
Breathe-Easy membrane, pack of 100 Diversified Biotech BEM-1 via Sigma-Aldrich
Sterile, individually wrapped, 50mL Solution Trough/Reagent Reservoir, case of 100 Sorenson S50100 via Westnet Incorporated
Plate roller VWR 60941-118 via VWR
Cryo Laser Labels – CRYOLAZRTAG 2.64" x 0.277", pack of 16 sheets GA International RCL-11T1-WH via Labtag.com (template for printing also available from Labtag.com)
96-well replicator V & P Scientific, Inc. Custom 407C, 3.18mm pin diameter, 57mm long via V & P Scientific, Inc.
Multitron Pro, 3mm Shaking incubator Infors HT l10003P via Infors HT
Picus 12 Channel 50-1200μL Electronic Pipette Sartorius 735491PR via Sartorius
Filter Tips 50-1200μL, pack of 960 Biohit 14-559-512 via Fisher Scientific; use electronic multichannel-compatible tips
Dry Ice User-specific vendor
Materials for Individual Mutant Storage
Fisherbrand Premium Microcentrifuge Tubes: 1.5mL Fisher Scientific 05-408-130 via Fisher Scientific
Pipettes (P1000, P200, P20, P2) Gilson F167370 via Gilson
Materials for Quality Control PCR
Fisherbrand Premium Microcentrifuge Tubes: 1.5mL Fisher Scientific 05-408-130 via Fisher Scientific
NanoDrop Thermo Scientific ND-2000 via ThermoFisher
PCR Thermocycler
Omnistrips PCR Tubes with domed lids Thermo Scientific AB0404 via Fisher Scientific
ART Barrier low-retention pipette tips (10 uL, 100 uL, 1000 uL) Molecular BioProducts, Inc. Z676543 (10 uL), Z676713 (100 uL), Z676802 (1000 uL) via Sigma-Aldrich
Pipettes (P1000, P200, P20, P2) Gilson F167370 via Gilson
Fisherbrand Premium Microcentrifuge Tubes: 1.5mL Fisher Scientific 05-408-130 via Fisher Scientific
MasterPure DNA Purification Kit Epicentre MCD85201 via Epicentre Technologies Corp
GeneRuler 1 kb Plus DNA Ladder, ready-to-use Thermo Scientific SM1333 via ThermoFisher
RediLoad Loading Buffer Invitrogen 750026 via ThermoFisher
Chemicals
Chemicals for Library and Individual Mutant Storage
Glycerol MB Grade, 1L Sigma Aldrich G5516 via Sigma-Aldrich
LB Broth Per 1L dH2O: 10g tryptone, 5g yeast extract, 5g NaCl, 1ml 1N NaOH (Current Protocols in Molecular Biology.  Wiley, 1994.)
Tryptone Sigma Aldrich T7293 via Sigma-Aldrich
Yeast Extract Sigma Aldrich Y1625 via Sigma-Aldrich
Sodium Chloride Sigma Aldrich S7653 via Sigma-Aldrich
Sodium Hydroxide Sigma Aldrich S8045 via Sigma-Aldrich
LB  agar See preparation above, add 15g Bacto Agar
Bacto Agar Sigma Aldrich A5306 via Sigma-Aldrich
Gentamicin sulfate, 10g BioReagent 1405-41-0 via Sigma-Aldrich
Kanamycin sulfate Gibco 11815024 via ThermoFisher
Ethanol, 190 proof Decon 04-355-221 via Fisher Scientific
Chemicals for Quality Control PCR
Primers User-preferred vendor See primers listed in Table 3
Corning cellgro Molecular Biology Grade Water Corning 46000CV via Fisher Scientific
Taq Polymerase Buffer Invitrogen 10342020 via ThermoFisher
Taq DNA Polymerase, recombinant Invitrogen 10342020 via ThermoFisher
dNTPs Invitrogen 10297018 via ThermoFisher
Agarose Sigma A9539 via Sigma-Aldrich

Referências

  1. Moradali, M. F., Ghods, S., Rehm, B. H. Pseudomonas aeruginosa lifestyle: A paradigm for adaptation, survival, and persistence. Front Cell Infect Microbiol. 7, 39 (2017).
  2. Bleves, S., et al. Protein secretion systems in Pseudomonas aeruginosa: A wealth of pathogenic weapons. Int J Med Microbiol. 300 (8), 534-543 (2010).
  3. Breidenstein, E. B., de la Fuente-Nunez, C., Hancock, R. E. Pseudomonas aeruginosa: all roads lead to resistance. Trends Microbiol. 19 (8), 419-426 (2011).
  4. Flynn, K. M., et al. Evolution of ecological diversity in biofilms of Pseudomonas aeruginosa by altered cyclic diguanylate signaling. J Bacteriol. 198 (19), 2608-2618 (2016).
  5. Hazan, R., Maura, D., Que, Y. A., Rahme, L. G. Assessing Pseudomonas aeruginosa persister/antibiotic tolerant cells. Methods Mol Biol. 1149, 699-707 (2014).
  6. Klockgether, J., et al. Genome diversity of Pseudomonas aeruginosa PAO1 laboratory strains. J Bacteriol. 192 (4), 1113-1121 (2010).
  7. Mathee, K., et al. Dynamics of Pseudomonas aeruginosa genome evolution. Proc Natl Acad Sci U S A. 105 (8), 3100-3105 (2008).
  8. Taylor, P. K., Yeung, A. T., Hancock, R. E. Antibiotic resistance in Pseudomonas aeruginosa biofilms: towards the development of novel anti-biofilm therapies. J Biotechnol. 191, 121-130 (2014).
  9. Flume, P. A., Van Devanter, D. R. State of progress in treating cystic fibrosis respiratory disease. BMC Med. 10, 88 (2012).
  10. . Cystic Fibrosis Foundation Patient Registry 2015 Annual Data Report Available from: https://www.cff.org/Our-Research/CF-Patient-Registry/2015-Patient-Registry-Annual-Data-Report.pdf (2016)
  11. Church, D., Elsayed, S., Reid, O., Winston, B., Lindsay, R. Burn wound infections. Clin Microbiol Rev. 19 (2), 403-434 (2006).
  12. Sadikot, R. T., Blackwell, T. S., Christman, J., Prince, A. Pathogen-host interactions in Pseudomonas aeruginosa pneumonia. Am J Respir Crit Care Med. 171 (11), 1209-1223 (2005).
  13. Song, Z., et al. Prosthesis infections after orthopedic joint replacement: the possible role of bacterial biofilms. Orthop Rev (Pavia). 5 (2), 65-71 (2013).
  14. National Nosocomial Infections Surveillance, S. National Nosocomial Infections Surveillance (NNIS) System Report, data summary from January 1992 through June 2004, issued October 2004. Am J Infect Control. 32 (8), 470-485 (2004).
  15. Cohen, T. S., Parker, D., Prince, A. . Pseudomonas aeruginosa Host Immune Evasion. 7, 3-23 (2014).
  16. Fernandes, A., Dias, M. The microbiological profiles of infected prosthetic implants with an emphasis on the organisms which form biofilms. J Clin Diagn Res. 7 (2), 219-223 (2013).
  17. Khosravi, A. D., Ahmadi, F., Salmanzadeh, S., Dashtbozorg, A., Montazeri, E. A. Study of Bacteria Isolated from Orthopedic Implant Infections and their Antimicrobial Susceptibility Pattern. Res J of Microbiol. 4 (4), 6 (2009).
  18. Roemhild, R., Barbosa, C., Beardmore, R. E., Jansen, G., Schulenburg, H. Temporal variation in antibiotic environments slows down resistance evolution in pathogenic Pseudomonas aeruginosa. Evol Appl. 8 (10), 945-955 (2015).
  19. Fischer, S., et al. Intraclonal genome diversity of the major Pseudomonas aeruginosa clones C and PA14. Environ Microbiol Rep. 8 (2), 227-234 (2016).
  20. Wiehlmann, L., et al. Population structure of Pseudomonas aeruginosa. Proc Natl Acad Sci U S A. 104 (19), 8101-8106 (2007).
  21. Lam, J. S., Taylor, V. L., Islam, S. T., Hao, Y., Kocincova, D. Genetic and functional diversity of Pseudomonas aeruginosa lipopolysaccharide. Front Microbiol. 2, 118 (2011).
  22. Choi, J. Y., et al. Identification of virulence genes in a pathogenic strain of Pseudomonas aeruginosa by representational difference analysis. J Bacteriol. 184 (4), 952-961 (2002).
  23. He, J., et al. The broad host range pathogen Pseudomonas aeruginosa strain PA14 carries two pathogenicity islands harboring plant and animal virulence genes. Proc Natl Acad Sci U S A. 101 (8), 2530-2535 (2004).
  24. Mikkelsen, H., McMullan, R., Filloux, A. The Pseudomonas aeruginosa reference strain PA14 displays increased virulence due to a mutation in ladS. PLoS One. 6 (12), e29113 (2011).
  25. Drenkard, E., Ausubel, F. M. Pseudomonas biofilm formation and antibiotic resistance are linked to phenotypic variation. Nature. 416 (6882), 740-743 (2002).
  26. Rahme, L. G., et al. Common virulence factors for bacterial pathogenicity in plants and animals. Science. 268 (5219), 1899-1902 (1995).
  27. Rahme, L. G., et al. Use of model plant hosts to identify Pseudomonas aeruginosa virulence factors. Proc Natl Acad Sci U S A. 94 (24), 13245-13250 (1997).
  28. Kirienko, N. V., Cezairliyan, B. O., Ausubel, F. M., Powell, J. R. Pseudomonas aeruginosa PA14 pathogenesis in Caenorhabditis elegans. Methods Mol Biol. 1149, 653-669 (2014).
  29. Mahajan-Miklos, S., Tan, M. W., Rahme, L. G., Ausubel, F. M. Molecular mechanisms of bacterial virulence elucidated using a Pseudomonas aeruginosa-Caenorhabditis elegans pathogenesis model. Cell. 96 (1), 47-56 (1999).
  30. Limmer, S., et al. Pseudomonas aeruginosa RhlR is required to neutralize the cellular immune response in a Drosophila melanogaster oral infection model. Proc Natl Acad Sci U S A. 108 (42), 17378-17383 (2011).
  31. Miyata, S., Casey, M., Frank, D. W., Ausubel, F. M., Drenkard, E. Use of the Galleria mellonella caterpillar as a model host to study the role of the type III secretion system in Pseudomonas aeruginosa pathogenesis. Infect Immun. 71 (5), 2404-2413 (2003).
  32. Coleman, F. T., et al. Hypersusceptibility of cystic fibrosis mice to chronic Pseudomonas aeruginosa oropharyngeal colonization and lung infection. Proc Natl Acad Sci U S A. 100 (4), 1949-1954 (2003).
  33. Pazos, M. A., et al. Pseudomonas aeruginosa ExoU augments neutrophil transepithelial migration. PLoS Pathog. 13 (8), e1006548 (2017).
  34. Maura, D., Hazan, R., Kitao, T., Ballok, A. E., Rahme, L. G. Evidence for direct control of virulence and defense gene circuits by the Pseudomonas aeruginosa quorum sensing regulator, MvfR. Sci Rep. 6, 34083 (2016).
  35. Jacobs, M. A., et al. Comprehensive transposon mutant library of Pseudomonas aeruginosa. Proc Natl Acad Sci U S A. 100 (24), 14339-14344 (2003).
  36. Held, K., Ramage, E., Jacobs, M., Gallagher, L., Manoil, C. Sequence-verified two-allele transposon mutant library for Pseudomonas aeruginosa PAO1. J Bacteriol. 194 (23), 6387-6389 (2012).
  37. Liberati, N. T., et al. An ordered, nonredundant library of Pseudomonas aeruginosa strain PA14 transposon insertion mutants. Proc Natl Acad Sci U S A. 103 (8), 2833-2838 (2006).
  38. Feinbaum, R. L., et al. Genome-wide identification of Pseudomonas aeruginosa virulence-related genes using a Caenorhabditis elegans infection model. PLoS Pathog. 8 (7), e1002813 (2012).
  39. Stewart, L., et al. Draft genomes of 12 host-adapted and environmental isolates of Pseudomonas aeruginosa and their positions in the core genome phylogeny. Pathog Dis. 71 (1), 20-25 (2014).
  40. Thrane, S. W., et al. The widespread multidrug-resistant serotype O12 Pseudomonas aeruginosa clone emerged through concomitant horizontal transfer of serotype antigen and antibiotic resistance gene clusters. MBio. 6 (5), e01396-e01315 (2015).
  41. van Belkum, A., et al. Phylogenetic Distribution of CRISPR-Cas Systems in Antibiotic-Resistant Pseudomonas aeruginosa. MBio. 6 (6), e01796-e01715 (2015).
  42. Lewenza, S., et al. Construction of a mini-Tn5-luxCDABE mutant library in Pseudomonas aeruginosa PAO1: a tool for identifying differentially regulated genes. Genome Res. 15 (4), 583-589 (2005).
  43. . . Current Protocols in Molecular Biology. , (1994).
  44. Breidenstein, E. B., Khaira, B. K., Wiegand, I., Overhage, J., Hancock, R. E. Complex ciprofloxacin resistome revealed by screening a Pseudomonas aeruginosa mutant library for altered susceptibility. Antimicrob Agents Chemother. 52 (12), 4486-4491 (2008).
  45. Musken, M., Di Fiore, S., Dotsch, A., Fischer, R., Haussler, S. Genetic determinants of Pseudomonas aeruginosa biofilm establishment. Microbiology. 156 (Pt 2), 431-441 (2010).
  46. Schurek, K. N., et al. Novel genetic determinants of low-level aminoglycoside resistance in Pseudomonas aeruginosa. Antimicrob Agents Chemother. 52 (12), 4213-4219 (2008).
  47. Oumeraci, T., et al. Comprehensive MALDI-TOF biotyping of the non-redundant Harvard Pseudomonas aeruginosa PA14 transposon insertion mutant library. PLoS One. 10 (2), e0117144 (2015).
  48. Yeung, A. T., et al. Swarming of Pseudomonas aeruginosa is controlled by a broad spectrum of transcriptional regulators, including MetR. J Bacteriol. 191 (18), 5592-5602 (2009).
check_url/pt/57298?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Drenkard, E., Hibbler, R. M., Gutu, D. A., Eaton, A. D., Silverio, A. L., Ausubel, F. M., Hurley, B. P., Yonker, L. M. Replication of the Ordered, Nonredundant Library of Pseudomonas aeruginosa strain PA14 Transposon Insertion Mutants. J. Vis. Exp. (135), e57298, doi:10.3791/57298 (2018).

View Video