Une procédure est présentée pour le repliement de la domaine de liaison du ligand périplasmique dCACHE de Campylobacter jejuni zone chémoréceptrice Tlp3 de corps d’inclusion et de la purification pour produire des quantités de milligramme de protéine.
Identification des ligands naturels des chémorécepteurs et études structurelles visant à élucider les bases moléculaires de la spécificité de ligand peut être grandement facilitée par la production de quantités de milligramme de domaines de liaison du ligand pur, plié. Tentatives de façon hétérologue express domaines de liaison du ligand périplasmique de chémorécepteurs bactériennes Escherichia coli (Escherichia coli) souvent entraîner leur ciblage dans les corps d’inclusion. Ici, on présente une méthode pour la récupération de la protéine de corps d’inclusion, son repliement et la purification, le domaine de liaison du ligand dCACHE périplasmique de Campylobacter jejuni (c. jejuni) zone chémoréceptrice Tlp3 en prenant comme exemple. L’approche implique l’expression de la protéine d’intérêt avec un CLIVABLES son6-tag, l’isolement et induite par l’urée solubilisation des corps d’inclusion, protéine de repliement de l’appauvrissement de l’urée et de purification par chromatographie d’affinité, suivi par chromatographie d’enlèvement et d’exclusion stérique tag. La spectroscopie de dichroïsme circulaire est utilisée pour confirmer l’état plié de la protéine pure. Il a été démontré que ce protocole est généralement utile pour la production de quantités de milligramme de domaines de liaison du ligand périplasmique dCACHE des autres chémorécepteurs bactériennes sous forme soluble et cristallisable.
Le chimiotactisme et la motilité ont démontré que jouent un rôle important dans la pathogenèse de Campylobacter jejuni en favorisant la colonisation bactérienne et l’invasion de l’hôte1,2,3. Chimiotaxie permet aux bactéries de s’orienter vers un environnement optimal pour la croissance, que guidés par des signaux chimiques. Ce processus implique la reconnaissance de signaux chimiques intracellulaires et de l’environnement par un ensemble de protéines appelées chémorécepteurs, ou protéines de type transducteur (PLT). La plupart des chémorécepteurs sont des protéines membranaires incorporées avec un ligand extracytoplasmique contraignant (LBD), un domaine transmembranaire et un domaine cytoplasmique de signalisation, laquelle interagit avec les protéines de signalisation cytosoliques qui transmettent le signal pour les moteurs flagellaires4,5,6,7.
Onze des chémorécepteurs différentes ont été identifiées le génome de c. jejuni 4,8. À ce jour, seuls certains de ces chémorécepteurs ont été caractérisées et la spécificité de ligand de Tlp19, Tlp310,11, Tlp411, Tlp712et13 de la Tlp11 est connue. Identification des ligands naturels les chimiorécepteurs restants chez cette espèce, et nombreux chémorécepteurs chez d’autres bactéries, peut être grandement facilitée par la production de la zone chémoréceptrice recombinant plissée et très pure LBDs14, 15 , 16. Toutefois, tentatives de façon hétérologue express périplasmiques LBDs des chémorécepteurs bactériennes Escherichia coli souvent entraîner leur ciblage en inclusions17,18,19 . Néanmoins, ce phénomène peut faciliter isolement facile et récupération de la protéine dans la main. Ici, on présente une méthode pour la récupération des protéines du corps d’inclusion, son repliement et la purification, à l’aide de la LBD périplasmique de la zone chémoréceptrice de c. jejuni Tlp3 à titre d’exemple. Cet exemple a été choisi car Tlp3-LBD appartient à la famille dCACHE20 de télédétection des domaines que l’on retrouve abondamment dans deux composants histidine kinases et de chémorécepteurs dans prokaryotes20,21, 22 , 23.
Dans cette approche, la construction de l’expression, basée sur un vecteur pET151/D-TOPO, a été conçue pour incorporer un N-terminal son6-tag suivie d’un tabac etch site de clivage de protéase de virus (TEV), pour tag ultérieures enlèvement19. Le protocole décrit la surexpression de la protéine dans e. coli, l’isolement et induite par l’urée solubilisation des corps d’inclusion et protéine de repliement de l’appauvrissement de l’urée. Suite de repliement, l’échantillon est purifié par chromatographie d’affinité, avec chromatographie d’enlèvement et d’exclusion stérique balise facultative. L’état plié de la protéine purifiée est confirmé en utilisant la spectroscopie de dichroïsme circulaire. Il s’agit d’une version modifiée de la méthode qui a été développée pour récupérer et épurer le LBD d’une autre zone chémoréceptrice, Helicobacter pylori TlpC19. Cette procédure, résumée dans la Figure 1, donne 10-20 mg de pure, non balisé Tlp3-LBD par 1 L de culture bactérienne, d’une pureté de la protéine de > 90 % estimé par SDS-PAGE.
Une procédure simple pour l’expression et le repliement de corps d’inclusion de la LBD périplasmique de la zone chémoréceptrice bactérienne Tlp3 est présentée. Préparation de la protéine pure implique la surexpression du gène codées en pET-plasmide dans e. coli, de purification et de solubilisation des corps d’inclusion, repliement de la protéine dénaturée et sa purification par l’affinité consécutive et étapes de la chromatographie d’exclusion stérique. L’urée-facilité de dénatu…
The authors have nothing to disclose.
Nous remercions Yu C. Liu pour ses premiers travaux sur la production Tlp3-LBD. Mayra A. Machuca est redevable à Admistrativo-Departamento de Ciencia, Tecnología e Innovación COLCIENCIAS pour une bourse de doctorat.
Tris base | AMRESCO | 497 | |
Sodium chloride (NaCl) | MERK MILLIPORE | 1064041000 | |
Ampicillin | G-BIOSCIENCES | A051-B | |
Phenylmethanesulfonyl fluoride (PMSF) | MERCK | 52332 | |
Triton x-100 | AMRESCO | 694 | |
Isopropyl β-D-thiogalactoside (IPTG) | ASTRAL SCIENTIFIC PTY LTD | AST0487 | |
Urea | AMRESCO | VWRC0568 | |
Dithiothreitol | ASTRAL SCIENTIFIC PTY LTD | C-1029 | |
L-arginine monohydrochloride | SIGMA-ALDRICH | A5131 | |
Reduced L-glutathione | SIGMA-ALDRICH | G4251 | |
Oxidized L-glutathione | SIGMA-ALDRICH | G4376 | |
Sodium phosphate dibasic (Na2HPO4) | SIGMA-ALDRICH | 7558-79-4 | |
Sodium phosphate monobasic (NaH2PO4) | SIGMA-ALDRICH | 10049-21-5 | |
Ethylenediaminetetraacetic acid disodium salt dehydrate (EDTA) | AMRESCO | VWRC20302.260 | |
Imidazole | SIGMA-ALDRICH | I2399 | |
Glycerol | ASTRAL SCIENTIFIC PTY LTD | BIOGB0232 | |
Nickel chloride (NiCl2) | SIGMA-ALDRICH | 339350 | |
Glycine | AMRESCO | VWRC0167 | |
Sodium dodecyl sulfate (SDS) | SIGMA-ALDRICH | L4509 | |
Unstained Protein Ladder, Broad Range (10-250 kDa) | NEW ENGLAND BIOLABS | P7703 | |
Amicon Ultracel centrifugal concentrator (Millipore) | MERCK | UFC901096 | |
50 mL Falcon tube | FALCON | BDAA352070 | |
Dialysis tubing | LIVINGSTONE INTERNATIONAL PTY | Dialysis | |
Snakeskin dialysis tubing | THERMO SCIENTIFIC™ | 68100 | |
Prepacked HiTrap Chelating HP column | GE HEALTHCARE LIFE SCIENCES | 17-0408-01 | |
EmulsiFlex-C5 high-pressure homogeniser | AVESTIN | EmulsiFlex™ – C5 | |
Peristaltic Pump P-1 | GE HEALTHCARE LIFE SCIENCES | 18-1110-91 | |
Superdex 200 HiLoad 26/60 size-exclusion column | GE HEALTHCARE LIFE SCIENCES | 28989336 | |
JASCO J-815 spectropolarimeter | JASCO | J-815 |