Summary

Tuning i Hippocampal Theta Band<em> In Vitro</em>: Metoder för inspelning från den isolerade gnagare septohippocampalkretsen

Published: August 02, 2017
doi:

Summary

Här presenterar vi ett protokoll för inspelning av rytmisk neuronalt nätverk theta och gamma-oscillationer från en isolerad hel hippocampalpreparat. Vi beskriver de experimentella stegen från utvinning av hippocampus till detaljer om fält, enhetliga och helcellsplåsterskärmsinspelningar samt optogenetisk stimulering av theta-rytmen.

Abstract

Detta protokoll beskriver förfarandena för beredning och inspelning från den isolerade hela hippocampusen, av WT och transgena möss, tillsammans med senaste förbättringar av metoder och tillämpningar för studiet av theta-oscillationer. En enkel karakterisering av den isolerade hippocampala beredningen presenteras, varigenom sambandet mellan interna hippocampala teta-oscillatorer undersöks tillsammans med pyramidala cellers aktivitet och GABAerga interneuroner, av majs ammoni-1 (CA1) och subikulum (SUB) områden. Sammantaget visar vi att den isolerade hippocampus kan generera inre teta-oscillationer in vitro och att rytmicitet som genereras inom hippocampus kan manipuleras exakt genom optogenetisk stimulering av parvalbumin-positiva (PV) -interuroner. Den in vitro- isolerade hippocampala beredningen erbjuder ett unikt tillfälle att använda samtidiga fält- och intracellulära patch-clampinspelningar från visuellt identifierade neuRons för att bättre förstå mekanismerna som ligger bakom teta rytmgenerationen.

Introduction

Hippokampala tetaoscillationer (4-12 Hz) är bland de mest dominerande formerna av rytmisk aktivitet i däggdjurshjärnan och tros spela nyckelroller i kognitiva funktioner som behandling av spatiotemporala uppgifter och bildande av episodiska minnen 1 , 2 , 3 . Medan flera in vivo- studier som markerar förhållandet mellan theta-modulerade platsceller med rumsnavigations- och lesionsstudier samt kliniska bevis stöder uppfattningen att hippocampala thetaoscillationer är involverade i minnesbildning 4 , 5 , 6 , de mekanismer som är associerade Med generering av hippocampala thetaoscillationer är fortfarande inte fullständigt förstådda. Tidiga in vivo- undersökningar föreslog att thetaaktivitet huvudsakligen berodde på extrinsiska oscillatorer, i synnerhet rytmisk ingångFrån afferenta hjärnstrukturer såsom septum och entorhinal cortex 7 , 8 , 9 , 10 . En roll för inneboende faktorer – intern anslutning av hippocampala neurala nätverk tillsammans med egenskaperna hos hippocampala neuroner – postulerades också baserat på in vitro- observationer 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 . Men förutom några få landmärkestudier 19 , 20 , 21 , svårigheter att utveckla tillvägagångssätt som skulle kunna replikera fysiologiskt realistiska befolkningsaktiviteter i enkel in vitro- skivberedningS har länge försenat mer detaljerad försöksundersökning av hippocampus och relaterade områdets inbyggda förmåga att själv generera thetaoscillationer.

En viktig nackdel med standard in vitro -tunnskärnings experimentell inställning är att den 3D-cellulära och synaptiska organisationen av hjärnstrukturer vanligtvis kompromissas. Detta innebär att många former av samordnade nätverksaktiviteter baserade på rumsligt fördelade cellaggregat, som sträcker sig från lokaliserade grupper (≤1 mm radie) till populationer av neuroner spridda över ett eller flera hjärnområden (> 1 mm), kan inte stödjas. Med tanke på dessa överväganden behövdes en annan typ av tillvägagångssätt för att studera hur tetaoscillationer uppträder i hippocampusen och sprida sig till relaterade kortikala och subkortiska utgångsstrukturer.

Under de senaste åren har den initiala utvecklingen av "komplett septo-hippocampal" -beredningen för att undersöka tvåriktad interaCtioner av de två strukturerna 22 och den efterföljande utvecklingen av "isolerade hippocampus" -beredningen har visat att intrinsiska tetaoscillationer uppträder spontant i hippocampus som saknar extern rytmisk ingång 23 . Värdet av dessa tillvägagångssätt ligger på den inledande insikten att hela funktionella strukturen i dessa regioner behövdes för att fungera som en teta-rytmgenerator in vitro 22 .

Protocol

Alla procedurer har utförts enligt protokoll och riktlinjer godkända av McGill University Animal Care Committee och Canadian Council on Animal Care. 1. Akut Hippocampus In Vitro Preparation OBS: Isolering av den intakta hippocampala preparatet innefattar tre huvudsteg: (1) Förberedelse av lösningar och utrustning, (2) Dippektion av hippocampus och (3) Uppställning av det snabba perfusionshastighetssystemet som är nödvändigt för generering av inneb…

Representative Results

Detta avsnitt illustrerar exempel på resultat som kan erhållas genom att studera theta-oscillationer i det mus-isolerade hippocampala preparatet in vitro . Dissektionsförfarandet för extraktion av den isolerade hippocampusen illustreras i figur 1 . Med hjälp av denna beredning kan intrinsiska thetaoscillationer undersökas vid placering av flera fältelektroder, inspelning av övergripande aktivitet och synkroniserade synaptiska ingångar…

Discussion

Medan elektrofysiologiska inspelningar från akuta hippocampala skivor utgör en standard in vitro- teknik skiljer sig metoderna som presenteras här väsentligen från det klassiska tillvägagångssättet. Till skillnad från de tunna skivberedningarna där specifika cellskikt är synliga vid ytan och kan undersökas direkt, är de intakta hippocampala beredningarna mer besläktade med in vivo- konfigurationer där elektroder sänks ner till riktade hjärnregioner medan de passerar genom enskilda skik…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av de kanadensiska instituten för hälsovetenskap och naturvetenskap.

Materials

Reagents
Sodium Chloride Sigma Aldrich S9625
Sucrose Sigma Aldrich S9378
Sodium Bicarbonate Sigma Aldrich S5761
NaH2PO4 – sodium phosphate monobasic Sigma Aldrich S8282
Magnesium sulfate Sigma Aldrich M7506
Potassium Chloride Sigma Aldrich P3911
D-(+)-Glucose Sigma Aldrich G7528
Calcium chloride dihydrate Sigma Aldrich C5080
Sodium Ascorbate Sigma Aldrich A7631-25G
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
Standard Dissecting Scissors Fisher Scientific 08-951-25 brain extraction
Scalpel Handle #4, 14cm WPI 500237 brain extraction
Filter forceps, flat jaws, straight (11cm) WPI 500456 brain extraction
Paragon Stainless Steel Scalpel Blades #20 Ultident 02-90010-20 brain extraction
Fine Point Curved Dissecting Scissors Thermo Fisher Scientific 711999 brain extraction
Teflon (PTFE) -coated thin spatula VWR 82027-534 hippocampal preparation
Hayman Style Microspatula Fisher Scientific 21-401-25A hippocampal preparation
Lab spoon Fisher Scientific 14-375-20 hippocampal preparation
Borosilicate Glass Pasteur Pipets Fisher Scientific 13-678-20A hippocampal preparation
Droper Fisher Scientific hippocampal preparation
Razor blades Single edged VWR 55411-055 hippocampal preparation
Lens paper (4X6 inch) VWR 52846-001 hippocampal preparation
Glass petri dishes (100 x 20 mm) VWR 25354-080 hippocampal preparation
Plastic tray for ice; size 30 x 20 x 5 cm n.a. n.a. hippocampal preparation
Single Inline Solution Heater Warner Instruments SH-27B perfusion system
Aquarium air stones for bubbling n.a. n.a. perfusion system
Tygon E-3603 tubing (ID 1/16 OD 1/8) Fisherbrand 14-171-129 perfusion system
Electric Skillet Black & Decker n.a. perfusion system
95% O2/5% CO2 gas mixture (carbogen)  Vitalaire SG466204A perfusion system
Glass bottles/flasks (4 x 1 L) n.a. n.a. perfusion system
Submerged recording Chamber custom design (FM) n.a. Commercial alternative may be used
Glass pipettes (1.5 / 0.84 OD/ID (mm) ) WPI 1B150F-4 electrophysiology
Hum Bug 50/60 Hz Noise Eliminator Quest Scientific Q-Humbug electrophysiology
Multiclamp 700B patch-clamp amplifier Molecular devices MULTICLAMP electrophysiology
Multiclamp 700B Commander Program Molecular devices MULTICLAMP electrophysiology
Digital/Analogue converter Molecular devices DDI440 electrophysiology
PCLAMP10 Molecular devices PCLAMP10 electrophysiology
Vibration isolation table  Newport n.a. electrophysiology
Micromanipulators (manually operated ) Siskiyou  MX130 electrophysiology (LFP)
Micromanipulators (automated) Siskiyou  MC1000e electrophysiology (patch)
Audio monitor  A-M Systems Model 3300 electrophysiology
Micropipette/Patch pipette puller Sutter P-97 electrophysiology
Custom-built upright fluorescence microscope Siskiyou n.a. Imaging
Analogue video camera COHU 4912-2000/0000 Imaging
Digital frame grabber with imaging software EPIX, Inc PIXCI-SV7 Imaging
Olympus 2.5x objective Olympus MPLFLN Imaging
Olympus 40x water immersion objective Olympus UIS2 LUMPLFLN Imaging
Custom-made light-emitting diode (LED) system  custom n.a. optogenetic stimulation (Amhilon et al., 2015)
Name Company Catalog Number Comments
Animals
PV::Cre (KI) mice Jackson Laboratory stock number 008069 Allow  Cre-directed gene expression in PV interneurons
Constitutive-conditional Ai9 mice (R26-lox-stop-lox-tdTomato (KI)) Jackson Laboratory stock number 007905 Express TdTomato following Cre-mediated recombination
Ai32 mice (R26-lox-stop-lox-ChR2(H134R)-EYFP Jackson Laboratory stock
number 012569
Express the improved channelrhodopsin-2/EYFP fusion protein following exposure to Cre recombinase
PVChY mice In house breeding n.a. Offspring obtained from cross-breeding the PV-Cre line with Ai32 mice (R26-lox-stop-lox-ChR2(H134R)-EYFP

Referências

  1. Buzsaki, G. Theta rhythm of navigation: link between path integration and landmark navigation, episodic and semantic memory. Hippocampus. 15 (7), 827-840 (2005).
  2. Sanders, H., Renno-Costa, C., Idiart, M., Lisman, J. Grid Cells and Place Cells: An Integrated View of their Navigational and Memory Function. Trends Neurosci. 38 (12), 763-775 (2015).
  3. O’Keefe, J., Recce, M. L. Phase relationship between hippocampal place units and the EEG theta rhythm. Hippocampus. 3 (3), 317-330 (1993).
  4. Winson, J. Loss of hippocampal theta rhythm results in spatial memory deficit in the rat. Science. 201 (4351), 160-163 (1978).
  5. M’Harzi, M., Jarrard, L. E. Strategy selection in a task with spatial and nonspatial components: effects of fimbria-fornix lesions in rats. Behav Neural Biol. 58 (3), 171-179 (1992).
  6. Osipova, D., et al. Theta and gamma oscillations predict encoding and retrieval of declarative memory. J Neurosci. 26 (28), 7523-7531 (2006).
  7. Stumpf, C., Petsche, H., Gogolak, G. The significance of the rabbit’s septum as a relay station between the midbrain and the hippocampus. II. The differential influence of drugs upon both the septal cell firing pattern and the hippocampus theta activity. Electroencephalogr Clin Neurophysiol. 14, 212-219 (1962).
  8. Mitchell, S. J., Ranck, J. B. Generation of theta rhythm in medial entorhinal cortex of freely moving rats. Brain Res. 189 (1), 49-66 (1980).
  9. Alonso, A., Garcia-Austt, E. Neuronal sources of theta rhythm in the entorhinal cortex of the rat. I. Laminar distribution of theta field potentials. Exp Brain Res. 67 (3), 493-501 (1987).
  10. Vertes, R. P., Kocsis, B. Brainstem-diencephalo-septohippocampal systems controlling the theta rhythm of the hippocampus. Neurociência. 81 (4), 893-926 (1997).
  11. Bland, B. H., Colom, L. V., Konopacki, J., Roth, S. H. Intracellular records of carbachol-induced theta rhythm in hippocampal slices. Brain Res. 447 (2), 364-368 (1988).
  12. Cobb, S. R., Buhl, E. H., Halasy, K., Paulsen, O., Somogyi, P. Synchronization of neuronal activity in hippocampus by individual GABAergic interneurons. Nature. 378 (6552), 75-78 (1995).
  13. Williams, J. H., Kauer, J. A. Properties of carbachol-induced oscillatory activity in rat hippocampus. J Neurophysiol. 78 (5), 2631-2640 (1997).
  14. Chapman, C. A., Lacaille, J. C. Cholinergic induction of theta-frequency oscillations in hippocampal inhibitory interneurons and pacing of pyramidal cell firing. J Neurosci. 19 (19), 8637-8645 (1999).
  15. Strata, F. Intrinsic oscillations in CA3 hippocampal pyramids: physiological relevance to theta rhythm generation. Hippocampus. 8 (6), 666-679 (1998).
  16. Kocsis, B., Bragin, A., Buzsaki, G. Interdependence of multiple theta generators in the hippocampus: a partial coherence analysis. J Neurosci. 19 (14), 6200-6212 (1999).
  17. Fellous, J. M., Sejnowski, T. J. Cholinergic induction of oscillations in the hippocampal slice in the slow (0.5-2 Hz), theta (5-12 Hz), and gamma (35-70 Hz) bands. Hippocampus. 10 (2), 187-197 (2000).
  18. Gillies, M. J., et al. A model of atropine-resistant theta oscillations in rat hippocampal area CA1. J Physiol. 543 (Pt 3), 779-793 (2002).
  19. Gloveli, T., et al. Orthogonal arrangement of rhythm-generating microcircuits in the hippocampus. Proc Natl Acad Sci U S A. 102 (37), 13295-13300 (2005).
  20. Konopacki, J., Eckersdorf, B., Kowalczyk, T., Golebiewski, H. Firing cell repertoire during carbachol-induced theta rhythm in rat hippocampal formation slices. Eur J Neurosci. 23 (7), 1811-1818 (2006).
  21. Hajos, N., et al. Maintaining network activity in submerged hippocampal slices: importance of oxygen supply. Eur J Neurosci. 29 (2), 319-327 (2009).
  22. Manseau, F., Goutagny, R., Danik, M., Williams, S. The hippocamposeptal pathway generates rhythmic firing of GABAergic neurons in the medial septum and diagonal bands: an investigation using a complete septohippocampal preparation in vitro. J Neurosci. 28 (15), 4096-4107 (2008).
  23. Goutagny, R., Jackson, J., Williams, S. Self-generated theta oscillations in the hippocampus. Nat Neurosci. 12 (12), 1491-1493 (2009).
  24. Jackson, J., Goutagny, R., Williams, S. Fast and slow gamma rhythms are intrinsically and independently generated in the subiculum. J Neurosci. 31 (34), 12104-12117 (2011).
  25. Amilhon, B., et al. Parvalbumin Interneurons of Hippocampus Tune Population Activity at Theta Frequency. Neuron. 86 (5), 1277-1289 (2015).
  26. Huh, C. Y., et al. Excitatory Inputs Determine Phase-Locking Strength and Spike-Timing of CA1 Stratum Oriens/Alveus Parvalbumin and Somatostatin Interneurons during Intrinsically Generated Hippocampal Theta Rhythm. J Neurosci. 36 (25), 6605-6622 (2016).
  27. Gu, N., et al. NMDA-dependent phase synchronization between septal and temporal CA3 hippocampal networks. J Neurosci. 33 (19), 8276-8287 (2013).
  28. Jackson, J., et al. Reversal of theta rhythm flow through intact hippocampal circuits. Nat Neurosci. 17 (10), 1362-1370 (2014).
  29. Gonzalez-Burgos, G., Lewis, D. A. GABA neurons and the mechanisms of network oscillations: implications for understanding cortical dysfunction in schizophrenia. Schizophr Bull. 34 (5), 944-961 (2008).

Play Video

Citar este artigo
Manseau, F., Williams, S. Tuning in the Hippocampal Theta Band In Vitro: Methodologies for Recording from the Isolated Rodent Septohippocampal Circuit. J. Vis. Exp. (126), e55851, doi:10.3791/55851 (2017).

View Video