Summary

In vitro differentiering af humane pluripotente stamceller til trofoblastceller

Published: March 16, 2017
doi:

Summary

Here, we present a protocol to efficiently generate human trophoblastic cells from human pluripotent stem cells using bone morphogenic protein 4 and inhibitors of the Activin/Nodal pathways. This method is suitable for the efficient differentiation of human pluripotent stem cells and can generate large quantities of cells for genetic manipulation.

Abstract

Placenta er det første organ til at udvikle under embryogenese og er nødvendig for overlevelsen af ​​den udviklende embryo. Moderkagen består af diverse trofoblastiske celler, der adskiller fra de ekstra-embryonale trophectoderm celler i præimplantationsperioden blastocyst. Som sådan er vores forståelse af de tidlige differentiering begivenheder i den menneskelige placenta begrænset på grund af etiske og juridiske begrænsninger på isolation og manipulation af menneskelige embryogenese. Humane pluripotente stamceller (hPSCs) er et robust modelsystem til undersøgelse menneskelig udvikling og kan også differentieres in vitro til trofoblastiske celler, der udtrykker markører for de forskellige trofoblast celletyper. Her præsenterer vi en detaljeret protokol for at differentiere hPSCs i trofoblastiske celler ved hjælp knoglemorfogent protein 4 og inhibitorer af Activin / Nodal signalveje. Denne protokol genererer forskellige trofoblast celletyper, der kan transficeres med siRNAstil undersøgelse tab-of-funktion fænotyper eller kan være inficeret med patogener. Derudover kan hPSCs modificeres genetisk og derefter differentieret til trofoblast progenitorer for gevinst af funktion analyser. Dette in vitro differentiering fremgangsmåde til frembringelse af menneskelige trofoblaster startende fra hPSCs overvinder de etiske og juridiske begrænsninger for at arbejde med tidlige menneskelige embryoner, og dette system kan bruges til en lang række applikationer, herunder forsknings- og stamcelleforskning.

Introduction

Moderkagen er nødvendig for vækst og overlevelse af fosteret under graviditeten og letter udveksling af gasser, næringsstoffer, affaldsprodukter og hormoner mellem mødres og føtale cirkulation. Det første organ dannet under pattedyr embryogenese er placenta, som begynder at udvikle 6-7 dage efter undfangelse og 3,5-4,5 dage i mus 1, 2, 3, 4. Trofoblastiske celler er de vigtigste celler i placenta, og disse celler repræsenterer en af ​​de tidligste afstamning differentieringsfaktorer begivenheder af pattedyr embryo. De opstår fra de ydre ekstra embryonale trophectoderm celler i præimplantationsperioden blastocyst. Vores viden om de tidlige stadier af placenta udvikling er begrænset af etiske og logistiske begrænsninger for modellering tidlig menneskelig udvikling.

Under embryonisk implantation trophoblasterinvadere den maternale epitel og differentiere til specialiserede progenitorceller 5. Cytotrophoblaster (CTBS) er mononukleære, udifferentierede forfædre, der smelter og differentierer i syncytiotrofoblaster (Syns) og extravillous invasive trophoblaster (EVTs), som anker moderkagen til livmoderen. Syns er flerkernede, terminalt differentierede celler, som syntetiserer hormoner er nødvendige for at opretholde graviditet. De tidlige differentiering begivenheder, der genererer EVTs og Syns er afgørende for placenta dannelse, som nedskrivninger i trofoblastiske celler resulterer i abort, præeklampsi, og intrauterin vækst begrænsning 1. De typer af humane trofoblast cellelinier, som er blevet udviklet, indbefatter udødeliggjort CTBS og choriocarcinomas, som producerer placentale hormoner og display invasive egenskaber 6. Primære trofoblastiske celler fra humane første trimester moderkager kan isoleres, men cellerne hurtigt differentiate og stoppe prolifererende in vitro. Vigtigere, transformeret og primære cellelinier har forskellige genekspressionsprofiler, hvilket indikerer, at tumorigene og udødeliggjort trofoblast cellelinjer ikke præcist kan repræsentere primære trophoblaster 7. Derudover disse linjer er usandsynligt at ligne placenta trofoblast stamceller stamfædre, fordi de stammer fra senere fase først gennem tredje trimester.

Der er behov for et robust in vitro kultursystem for early stage humane trofoblaster for at studere de tidlige begivenheder af placental dannelse og funktion. Humane embryonale stamceller (hESCs), som deler egenskaber med den indre cellemasse af embryo præimplantationsperioden, anvendes ofte til at modellere tidlig menneskelig udvikling, herunder dannelsen af ​​den tidlige placenta. Både humane inducerede pluripotente stamceller (hiPSCs) og hESCs kan opdeles i trophoblaster in vitro under anvendelse Bone Morphogenic Protein 4 (BMP4) 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15. Denne omdannelse af pluripotente celler til trofoblastiske celler under anvendelse BMP4 er specifikt for humane celler og er almindeligt anvendt til at undersøge udviklingen af den tidlige humane placenta fordi det ikke kræver adgang til tidlige humane embryoner 9, 16. For nylig blev det opdaget, at tilsætning af inhibitorerne A83-01 (A) og PD173074 (P), som blokerer SMAD2 / 3 og MEK1 / 2 signalveje, øger effektiviteten af ​​hPSC differentiering til trophectoderm-lignende progenitorer, primært Syns og EVTs, uden den omfattende generation af mesoderm, endoderm eller ektoderm celler 9, 17 </sup>. Ved hjælp af disse mellemstore betingelser, hESCs differentieret i 12 dage har lignende genekspressionsprofiler som trophectoderm celler isoleret fra blastocyst-trins embryoner menneskelige og udskiller forskellige placenta-specifikke væksthormoner, støtte gyldigheden af denne in vitro-modelsystem 9, 11. Her præsenterer vi en detaljeret protokol til in vitro differentiering af hPSCs i humane trofoblast stamfædre hjælp BMP4 / A / P dyrkningsmedium. Disse betingelser producere rigelige antal celler til en lang række anvendelser, herunder RNA-sekventering, genafbrydelse hjælp siRNA'er, patogene infektioner, og genetisk modifikation under anvendelse af lipofektion-medieret transfektion.

Protocol

BEMÆRK: differentieringen af ​​enten hESCs eller hiPSCs i trofoblast stamceller hPSCs dyrket på muse embryonale fibroblaster (MEF'er) er skiftet til fødefri betingelser for to passager inden initiering differentiering med BMP4 / A / P. Denne proces eliminerer MEF kontaminering af differentierede celler. Her præsenterer vi en protokol for embryonale differentiering, og den samme protokol kan anvendes på hiPSCs. 1. Kultur og Recovery af hESCs på bestrålede mus embryonale fibroblaster (MEF) (præparate…

Representative Results

Oversigt over In Vitro Differentiering af hPSCs Dette in vitro-differentiering protokol begynder med udifferentierede hESCs dyrket på MEF'er, der er skiftet til fødefri betingelser for en passage (figur 1A). Mens vi beskrev differentieringen af ​​hESCs i denne protokol, brugte vi denne protokol med succes differentiere hiPSCs i trofoblastiske celler. Overgangen til ekstracellulær matr…

Discussion

Vi præsenterede de grundlæggende trin for at differentiere hESCs i trofoblast stamfædre. Denne protokol er for nylig blevet optimeret til hurtigt differentiere hESCs med tilsætning af activin / Nodal signaling inhibitorer, øge differentieringen til trofoblastiske celler og undgå dannelsen af ​​mesoderm progenitorer, som typisk observeres med BMP4 behandling alene. Det BMP4 model system giver mulighed for undersøgelse af de tidligste stadier af menneskets trofoblast afstamning specifikation og ekspansion. Deru…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by a Pennsylvania Health Research Formula Fund.

Materials

DMEM/F12 Invitrogen 11330-057
Knock Out Serum Replacement Invitrogen 10828-028 This is referred to as "serum replacement" in this protocol.
NEAA Invitrogen 11140-050
FBS Invitrogen 16000-044
L-Glutamine Invitrogen 10828-028
Penicillin/Streptomycin Invitrogen 15140-155
2-Mercaptoethanol Sigma M-7522
B-FGF Millipore GF-003
DMEM Invitrogen 11965-118
Dispase Invitrogen 17105-041
Collagenase Type IV Invitrogen 17104-019
Rock inhibitor Y27632 Calbiochem 688000
Irradiated CF1 MEFs GlobalStem 6001G MEFs can be generated from embryonic day 13.5 embyos and irradiated.
0.22 um syringe filter Millipore SLGS033SS
Heracell 150i low oxygen incubator Heracell/VWR 89187-192 Any tissue culture incubator with capacity to regulate oxygen concentrations is sufficient.
BMP4 R&D Systems 314-BP-01M
A 83-01 R&D Systems 2939/10
PD173074 R&D Systems 3044/10
RNAiMax Invitrogen 13778150
Trizol ThermoFisher 15596026 Trizol is used to isolate total RNA.
X-tremeGENE 9 Roche 6365779001
Matrigel Corning 356231 This is referred to as "extracellular matrix" in this protocol.

Referências

  1. Rugg-Gunn, P. J. Epigenetic features of the mouse trophoblast. Reproductive biomedicine online. 25 (1), 21-30 (2012).
  2. Rossant, J., Cross, J. C. Placental development: lessons from mouse mutants. Nature reviews. Genetics. 2 (7), 538-548 (2001).
  3. Hertig, A. T., Rock, J., Adams, E. C., Menkin, M. C. Thirty-four fertilized human ova, good, bad and indifferent, recovered from 210 women of known fertility; a study of biologic wastage in early human pregnancy. Pediatrics. 23 (1 Part 2), 202-211 (1959).
  4. Steptoe, P. C., Edwards, R. G., Purdy, J. M. Human blastocysts grown in culture. Nature. 229 (5280), 132-133 (1971).
  5. Delorme-Axford, E., Sadovsky, Y., Coyne, C. B. The placenta as a barrier to viral infections. Annual Review of Virology. 1, 133-146 (2014).
  6. Ji, L., et al. Placental trophoblast cell differentiation: physiological regulation and pathological relevance to preeclampsia. Molecular aspects of medicine. 34 (5), 981-1023 (2013).
  7. Bilban, M., et al. Identification of novel trophoblast invasion-related genes: heme oxygenase-1 controls motility via peroxisome proliferator-activated receptor gamma. Endocrinology. 150 (2), 1000-1013 (2009).
  8. Xu, R. H., et al. BMP4 initiates human embryonic stem cell differentiation to trophoblast. Nature biotechnology. 20 (12), 1261-1264 (2002).
  9. Amita, M., et al. Complete and unidirectional conversion of human embryonic stem cells to trophoblast by BMP4. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (13), E1212-E1221 (2013).
  10. Genbacev, O., et al. Establishment of human trophoblast progenitor cell lines from the chorion. Stem Cells. 29 (9), 1427-1436 (2011).
  11. Marchand, M., et al. Transcriptomic signature of trophoblast differentiation in a human embryonic stem cell model. Biology of reproduction. 84 (6), 1258-1271 (2011).
  12. Hyslop, L., et al. Downregulation of NANOG induces differentiation of human embryonic stem cells to extraembryonic lineages. Stem cells. 23 (8), 1035-1043 (2005).
  13. Harun, R., et al. Cytotrophoblast stem cell lines derived from human embryonic stem cells and their capacity to mimic invasive implantation events. Human reproduction. 21 (6), 1349-1358 (2006).
  14. Lichtner, B., Knaus, P., Lehrach, H., Adjaye, J. BMP10 as a potent inducer of trophoblast differentiation in human embryonic and induced pluripotent stem cells. Biomaterials. 34 (38), 9789-9802 (2013).
  15. Chen, Y., Wang, K., Chandramouli, G. V., Knott, J. G., Leach, R. Trophoblast lineage cells derived from human induced pluripotent stem cells. Biochemical and biophysical research communications. , (2013).
  16. Roberts, R. M., et al. Differentiation of trophoblast cells from human embryonic stem cells: to be or not to be?. Reproduction. 147 (5), D1-D12 (2014).
  17. Sarkar, P., et al. Activin/nodal signaling switches the terminal fate of human embryonic stem cell-derived trophoblasts. The Journal of biological chemistry. 290 (14), 8834-8848 (2015).
  18. Penkala, I., et al. lncRHOXF1, a Long Noncoding RNA from the X Chromosome That Suppresses Viral Response Genes during Development of the Early Human Placenta. Mol Cell Biol. 36 (12), 1764-1775 (2016).
  19. Penkala, I., et al. lncRHOXF1, a Long Noncoding RNA from the X Chromosome That Suppresses Viral Response Genes during Development of the Early Human Placenta. Molecular and cellular biology. 36 (12), 1764-1775 (2016).
  20. Hockemeyer, D., et al. Genetic engineering of human pluripotent cells using TALE nucleases. Nature biotechnology. 29 (8), 731-734 (2011).
  21. Bernardo, A. S., et al. BRACHYURY and CDX2 mediate BMP-induced differentiation of human and mouse pluripotent stem cells into embryonic and extraembryonic lineages. Cell stem cell. 9 (2), 144-155 (2011).
  22. Zhang, P., et al. Short-term BMP-4 treatment initiates mesoderm induction in human embryonic stem cells. Blood. 111 (4), 1933-1941 (2008).
  23. Vallier, L., et al. Early cell fate decisions of human embryonic stem cells and mouse epiblast stem cells are controlled by the same signalling pathways. PloS one. 4 (6), e6082 (2009).
  24. Arman, E., Haffner-Krausz, R., Chen, Y., Heath, J. K., Lonai, P. Targeted disruption of fibroblast growth factor (FGF) receptor 2 suggests a role for FGF signaling in pregastrulation mammalian development. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 95 (9), 5082-5087 (1998).
  25. Yu, P., Pan, G., Yu, J., Thomson, J. A. FGF2 sustains NANOG and switches the outcome of BMP4-induced human embryonic stem cell differentiation. Cell stem cell. 8 (3), 326-334 (2011).
  26. Sudheer, S., Bhushan, R., Fauler, B., Lehrach, H., Adjaye, J. FGF inhibition directs BMP4-mediated differentiation of human embryonic stem cells to syncytiotrophoblast. Stem cells and development. 21 (16), 2987-3000 (2012).
  27. Bischof, P., Irminger-Finger, I. The human cytotrophoblastic cell, a mononuclear chameleon. The international journal of biochemistry & cell biology. 37 (1), 1-16 (2005).
  28. Cole, L. A. Hyperglycosylated hCG, a review. Placenta. 31 (8), 653-664 (2010).
  29. Apps, R., et al. Human leucocyte antigen (HLA) expression of primary trophoblast cells and placental cell lines, determined using single antigen beads to characterize allotype specificities of anti-HLA antibodies. Immunology. 127 (1), 26-39 (2009).
check_url/pt/55268?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Wang, J., Anguera, M. C. In Vitro Differentiation of Human Pluripotent Stem Cells into Trophoblastic Cells. J. Vis. Exp. (121), e55268, doi:10.3791/55268 (2017).

View Video