Summary

Geração de Integração-livres induzidas células-tronco pluripotentes a partir de células mononucleares de sangue periférico humano Usando episs�ica Vectors

Published: January 01, 2017
doi:

Summary

This protocol describes a detailed method for efficient generation of integration-free iPSCs from human adult peripheral blood cells. With the use of four oriP/EBNA-based episomal vectors to express the reprogramming factors, KLF4, MYC, BCL-XL, or OCT4 and SOX2, thousands of iPSC colonies can be obtained from 1 mL of peripheral blood.

Abstract

Induzidas células-tronco pluripotentes (iPSCs) são uma grande promessa para a modelagem de doenças e terapias regenerativas. Nós anteriormente relatada a utilização de vectores epissomais (EV) para gerar iPSCs livre de integração a partir de células mononucleares do sangue periférico (SP MNCs). Os vectores epissómicos são utilizados plasmídeos de ADN incorporados com OriP e EBNA1 elementos do vírus de Epstein-Barr (EB), que permitem a replicação e a longo prazo retainment de plasmídeos em células de mamífero, respectivamente. Com uma maior optimização, milhares de colónias IPSC pode ser obtido a partir de 1 ml de sangue periférico. Dois factores essenciais para alcançar altas eficiências de reprogramação são: 1) o uso de um 2A "auto-clivagem" péptido de ligação OCT4 e SOX2, conseguindo-se assim a expressão equimolar dos dois factores; 2) o uso de dois vectores para expressar MYC e KLF4 individualmente. Aqui nós descrevemos um protocolo passo-a-passo para a geração de iP livre de integraçãoSCs de amostras de sangue periférico de adultos. As iPSCs gerados são livres de integração como plasmídeos episs�icas residuais são indetectáveis ​​após cinco passagens. Embora a eficiência reprogramação é comparável com a do vírus Sendai (VS) vectores, plasmídeos EV são consideravelmente mais económica do que os vectores comercialmente disponíveis SV. Este sistema EV reprogramação acessível tem potencial para aplicações clínicas em medicina regenerativa e fornece uma abordagem para a reprogramação direta de multinacionais PB para as células sem integração-tronco mesenquimais, células-tronco neurais, etc.

Introduction

Após expressão forçada de vários factores de transcrição (Ie OCT4, SOX2, MYC e KLF4), células somáticas podem ser reprogramadas para células-tronco pluripotentes induzidas (iPSCs), que detêm grande promessa para aplicações em medicina regenerativa e terapia de reposição celular 1-3. Até à data, diversos métodos foram desenvolvidos para aumentar a taxa de sucesso de reprogramação 4-7. vectores virais induzida por reprogramação é amplamente utilizado para a produção eficiente de iPSCs, pois a integração virai conduz a um alto nível, a expressão estável dos fatores de reprogramação. No entanto, a integração permanente do ADN do vector no genoma da célula pode induzir a mutagénese de inserção 5. Além disso, a inativação insuficiente de fatores de reprogramação pode perturbar iPSCs diferenciação 8. Como tal, a utilização de iPSCs sem integração dos factores de reprogramação é imperativo, especialmente para uso em aplicações de terapia celular.

<p class="jove_content"> Episs�ica Vetores (EVs) são amplamente utilizados na geração de iPSCs livre de integração. O EV mais usado é um plasmídeo que contém dois elementos, origem de replicação viral (oriP) e EB Nuclear Antigen 1 (EBNA 1), a partir do vírus de Epstein-Barr (EB) 9. O elemento oriP promove a replicação do plasmídeo em células de mamíferos, enquanto que o elemento EBNA1 amarras o DNA do plasmídeo que contém oriP ao ADN cromossómico que permite a compartimentação do epissoma durante a divisão da célula hospedeira. Em comparação com outras abordagens livre de integração, incluindo vírus Sendai (SV) e transfecção RNA, EVs possuem várias vantagens 5,6,10. Como DNA plasmídeo, EVs podem ser facilmente produzida e modificada em casa, tornando-os extremamente acessível. Além disso, a reprogramação com EV é um menor processo trabalhoso já que um único transfecção com EVs é suficiente para a geração de iPSC, enquanto vários transfections RNA são necessários para a reprogramação.

Dfibroblastos ermal têm sido utilizados em vários estudos de reprogramação. No entanto, a biópsia de pele não é apenas um processo invasivo e doloroso, mas também demorado para expansão de células a quantidades suficientes para a reprogramação. De maior preocupação, as células da pele de doadores adultos frequentemente ter sido exposto à radiação de luz UV de longo prazo, o que pode conduzir a mutações associadas a tumores, o que limita as aplicações de iPSCs derivadas a partir de fibroblastos da pele 11,12. Recentemente, foi relatado que as células de pele humanas normais acumulam mutações somáticas e múltiplos genes do cancro, incluindo a maioria dos principais motores de carcinomas de células escamosas cutâneas, estão sob forte seleção positiva 13.

Em contraste com os fibroblastos da pele, células do sangue periférico (PB) são uma fonte preferida de células de reprogramação porque 1) as células de sangue podem ser facilmente obtidas através de um processo minimamente invasiva, 2) as células do sangue periférico são a progénie de células estaminais hematopoiéticasresidem na medula óssea, assim, protegido contra a radiação prejudicial. células mononucleares do sangue periférico (PB MNCs) pode ser coletado em uma hora a partir da camada de revestimento de Buffy na sequência de uma centrifugação de gradiente simples usando Ficoll-Hypaque (1.077 g / mL). As EMNs PB obtidos são compostos de linfócitos, monócitos e algumas células progenitoras hematopoiéticas (HPCs) 14. Embora os linfócitos T humanos são um dos principais tipos de células em PB, as células T maduras contêm rearranjos do receptor de células T (TCR) e os genes não têm um genoma intacto limitando assim o seu potencial para aplicações 15,16. No entanto, o rejuvenescimento das células T através da geração iPSC pode ter aplicações potenciais em quimérico Antigen Receptor (CAR) terapia com células T 17-19. Em comparação, HPCs tem um genoma intacto e estão prontamente reprogramável. Apesar de apenas 0,01-0,1% das células em circulação periférica são HPCs, estas células podem ser expandidas ex vivo, em meio de eritróide que favorece a proliferação de erythrcélulas progenitoras oid 14.

Em nosso estudo anterior, foi utilizado o fator de BCL-XL além dos fatores de Yamanaka (OCT4, SOX2, MYC e KLF4), o que resultou em um aumento de 10x na PB reprogramação efficency 20. BCL-XL, também conhecido como BCL2L1, é um inibidor potente da morte celular, por inibição da activação de caspases 21,22. Mas, a BCL-XL também podem desempenhar um papel importante na manutenção da pluripotência 21,22. Recentemente, temos aperfeiçoado ainda mais nosso sistema EV reprogramação expressando separadamente MYC e KLF4 com dois vectores, o que leva a um aumento de aproximadamente 100 vezes na eficiência da reprogramação 23. Usando este método, a eficiência de reprogramação, definido pelo número de colónias a partir dividido pelo número de células na transfecção, é 0,2-0,5% de dadores saudáveis. Como se segue, descrevemos o procedimento experimental detalhado para gerar iPSCs livre de integração de PB.

Protocol

Todas as amostras PB humanos foram obtidos de doadores adultos anônimos sem informações de identificação disponível a partir de Tianjin Hemocentro com a aprovação do comitê de ética em pesquisa local. O plasmídeo Preparação 1. Endo-livre Use um kit Plasmid Maxi A purificação comercial para extrair os vectores epissomais de E. coli de acordo com o protocolo do fabricante. Para o passo final, tampão TE substituto com água estéril livre de endotoxinas para …

Representative Results

Usando este protocolo, podemos obter centenas de colónias a partir de 1 x 10 5 nucleofected PB multinacionais (Figuras 1A e 1B). A eficiência de reprogramação é de aproximadamente 0,2-0,5% e as colónias expressam marcadores de pluripotência (Figuras 1C e 1D). iPSCs gerados utilizando o protocolo descrito são livres de integração e tem a capacidade de formar teratoma compor as 3 camadas germinais <str…

Discussion

Aquisição de amostras de sangue de dadores saudáveis ​​ou doentes é conveniente e não invasivo, tornando-se uma fonte de células atraente para a investigação básica e clínica de terapia celular. Aqui nós descrevemos um protocolo para a geração altamente eficiente de iPSCs livre de integração a partir de amostras de sangue periférico. Esta abordagem reprodutível e acessível deve beneficiar o campo da IPSC.

Nós relatamos que existem dois factores críticos responsáveis …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by the Ministry of Science and Technology of China (2015CB964902, 2013CB966902 and 2012CB966601), the National Natural Science Foundation of China (81500148, 81570164 and 81421002), the Loma Linda University School of Medicine GCAT grant (2015), and Telemedicine and Advanced Technology Research Center (W81XWH-08-1-0697).

Materials

Hematopoietic Stem Cell Expansion Medium Sigma S0192 Store at 4 °C
Human stem cell factor (SCF) Peprotech 300-07 Store at -20 or -80°C
Interleukin-3 (IL-3) Peprotech AF-200-03 Store at -20 or -80°C
Eryrthropoietin (EPO) Peprotech 100-64 Store at -20 or -80°C
Insulin growth factor-1 (IGF-1) Peprotech 100-11 Store at -20 or -80°C
Dexamethasone Sigma D4902 Store at -20 or -80°C
1-thioglycerol (MTG) Sigma M6145 Store at -20 or -80°C
DMEM/F12 medium Gibco 112660-012 Store at 4 °C
L-glutamine (100x) Gibco 25030-081 Store at -20 °C
Penicillin/Streptomycin (100x) Gibco 15140-122 Store at -20 °C
Non-essential amino acids solution (100x) Gibco 11140-050 Store at 4 °C
Fibroblast growth factor 2 (FGF2) Peprotech 100-18B Store at -20 or -80°C
ITS (100x) Gibco 41400-045 Store at 4 °C
Ascorbic acid Sigma 49752 Store at -20 °C
DMEM (high glucose) medium Thermo SH30243.01B Store at 4 °C
FBS Hyclone SV30087.01 Store at -40 °C
Ficoll GE Healthcare, SIGMA 17-5442-02 Store at RT
Trehalose  Sigma T9531 Store at 4 °C
DMSO Sigma D2650 Store at RT, protect from light
Endofree Plasmid Maxi Kit(10) Qiagen 12362 Store at RT
IMDM Gibco 21056-023 Store at 4 °C
Human CD34+ Cell Nucleofection Kit Lonza VPA-1003 Store at RT, nucleofection buffer and supplement buffer should be stored at 4 °C
Sodium butyrate Sigma B5887 Store at -20 or -80°C
ROCK inhibitor Y27632 STEMGENT 04-0012-10 Store at -20 °C
Essential 8 basal medium (E8) Gibco A15169-01 Store at 4 °C, the supplement should be stored at -20 or -80°C
Matrigel BD 354277 Store at -20 or -80°C
2x EasyTaq PCR SuperMix(+dye) TransGen Biotech AS111 Store at -20 °C
Cell detachment solution STEMGENT 01-0006 Store at -20 °C, Accutase as a cell detachment solution to obtain a single cell suspension
DAPI Sigma D9542-1MG Store at 4 °C or -20 °C
Anti-nanog-AF488 BD 560791 Store at 4 °C, primary antibody used for Immunofluorescence, dilute 1/100 when use
Anti-OCT4 abcam ab19857 Store at 4 °C, primary antibody used for Immunofluorescence, dilute 1/100 when use
AF488 donkey anti-mouse IgG Invitrogen A21202 Store at 4 °C, secondary antibody used for Immunofluorescence,  dilute 1/500 when use
PE anti-human TRA-1-60-R Antibody Biolegend 330610 Store at 4 °C, antibody used for flow cytometry
eFluor 570-conjugated anti-SSEA4 eBioscience 41-8843 Store at 4 °C, antibody used for flow cytometry
Isotype antibody eBioscience 11-4011 Store at 4 °C, antibody used for flow cytometry
Alkaline Phosphatase Detection Kit SiDanSai 1102-100 Store at 4 °C
Genomic DNA Extraction Kit TIANGEN DP304-02 Store at RT
Trypan Blue solution Sigma T8154 Store at RT
Flow cytometry cell analyzer BD LSRII for flow cytometry analysis
Spinning disk confocal microscope (SDC) PerkinElmer UltraVIEW VOX for confocal imaging
Nucleofection device Lonza Nucleofector 2b for the nucleofection of PB MNC
ImageQuant LAS-4010 GE take photo of AP staining in bulk

Referências

  1. Takahashi, K., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell. 126, 663-676 (2006).
  2. Takahashi, K., et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131, 861-872 (2007).
  3. Trounson, A., McDonald, C. Stem Cell Therapies in Clinical Trials: Progress and Challenges. Cell Stem Cell. 17, 11-22 (2015).
  4. Hayes, M., Zavazava, N. Strategies to generate induced pluripotent stem cells. Methods Mol Biol. 1029, 77-92 (2013).
  5. Zhang, X. B. Cellular reprogramming of human peripheral blood cells. Genomics Proteomics Bioinformatics. 11, 264-274 (2013).
  6. Schlaeger, T. M., et al. A comparison of non-integrating reprogramming methods. Nat Biotechnol. 33, 58-63 (2015).
  7. Okita, K., et al. An efficient nonviral method to generate integration-free human-induced pluripotent stem cells from cord blood and peripheral blood cells. Stem Cells. 31, 458-466 (2013).
  8. Carey, B. W., et al. Reprogramming factor stoichiometry influences the epigenetic state and biological properties of induced pluripotent stem cells. Cell Stem Cell. 9, 588-598 (2011).
  9. Dorigo, O., et al. Development of a novel helper-dependent adenovirus-Epstein-Barr virus hybrid system for the stable transformation of mammalian cells. J Virol. 78, 6556-6566 (2004).
  10. Dowey, S. N., Huang, X., Chou, B. K., Ye, Z., Cheng, L. Generation of integration-free human induced pluripotent stem cells from postnatal blood mononuclear cells by plasmid vector expression. Nat Protoc. 7, 2013-2021 (2012).
  11. Harms, P. W., et al. Next generation sequencing of Cytokeratin 20-negative Merkel cell carcinoma reveals ultraviolet-signature mutations and recurrent TP53 and RB1 inactivation. Mod Pathol. 29, 240-248 (2016).
  12. Abyzov, A., et al. Somatic copy number mosaicism in human skin revealed by induced pluripotent stem cells. Nature. 492, 438-442 (2012).
  13. Martincorena, I., et al. Tumor evolution. High burden and pervasive positive selection of somatic mutations in normal human skin. Science. 348, 880-886 (2015).
  14. Su, R. J., Neises, A., Zhang, X. B. Generation of iPS Cells from Human Peripheral Blood Mononuclear Cells Using Episomal Vectors. Methods Mol Biol. 1357, 57-69 (2016).
  15. Seki, T., et al. Generation of induced pluripotent stem cells from human terminally differentiated circulating T cells. Cell Stem Cell. 7, 11-14 (2010).
  16. Loh, Y. H., et al. Reprogramming of T cells from human peripheral blood. Cell Stem Cell. 7, 15-19 (2010).
  17. Kishino, Y., Seki, T., Yuasa, S., Fujita, J., Fukuda, K. Generation of Induced Pluripotent Stem Cells from Human Peripheral T Cells Using Sendai Virus in Feeder-free Conditions. J Vis Exp. , (2015).
  18. Seki, T., Yuasa, S., Fukuda, K. Generation of induced pluripotent stem cells from a small amount of human peripheral blood using a combination of activated T cells and Sendai virus. Nat Protoc. 7, 718-728 (2012).
  19. Gill, S., June, C. H. Going viral: chimeric antigen receptor T-cell therapy for hematological malignancies. Immunological reviews. 263, 68-89 (2015).
  20. Su, R. J., et al. Efficient generation of integration-free ips cells from human adult peripheral blood using BCL-XL together with Yamanaka factors. PLoS One. 8, e64496 (2013).
  21. Li, Y., et al. The p53-PUMA axis suppresses iPSC generation. Nat Commun. 4, 2174 (2013).
  22. Hardwick, J. M., Youle, R. J. SnapShot: BCL-2 proteins. Cell. 138, 404 (2009).
  23. Wen, W., et al. Enhanced Generation of Integration-free iPSCs from Human Adult Peripheral Blood Mononuclear Cells with an Optimal Combination of Episomal Vectors. Stem Cell Reports. 6, 873-884 (2016).
  24. Zhang, X. B., et al. Trehalose ameliorates the cryopreservation of cord blood in a preclinical system and increases the recovery of CFUs, long-term culture-initiating cells, and nonobese diabetic-SCID repopulating cells. Transfusion. 43, 265-272 (2003).
  25. Watanabe, K., et al. A ROCK inhibitor permits survival of dissociated human embryonic stem cells. Nat Biotechnol. 25, 681-686 (2007).
  26. Basu, S., Campbell, H. M., Dittel, B. N., Ray, A. Purification of specific cell population by fluorescence activated cell sorting (FACS). J Vis Exp. , (2010).
  27. Castiel, A., et al. Cell death associated with abnormal mitosis observed by confocal imaging in live cancer cells. J Vis Exp. , e50568 (2013).
  28. Peterson, S. E., et al. Teratoma generation in the testis capsule. J Vis Exp. , e3177 (2011).
  29. Ritner, C., Bernstein, H. S. Fate mapping of human embryonic stem cells by teratoma formation. J Vis Exp. , (2010).
  30. Wen, W., et al. Enhanced Generation of Integration-free iPSCs from Human Adult Peripheral Blood Mononuclear Cells with an Optimal Combination of Episomal Vectors. Stem Cell Reports. , (2016).
  31. Lo, C. A., et al. Quantification of Protein Levels in Single Living Cells. Cell Rep. 13, 2634-2644 (2015).
  32. Liu, S. P., et al. An improved method for generating integration-free human induced pluripotent stem cells. Zhongguo Shi Yan Xue Ye Xue Za Zhi. 22, 580-587 (2014).
  33. Luni, C., et al. High-efficiency cellular reprogramming with microfluidics. Nat Methods. 13, 446-452 (2016).
  34. Chou, B. K., et al. A facile method to establish human induced pluripotent stem cells from adult blood cells under feeder-free and xeno-free culture conditions: a clinically compliant approach. Stem Cells Transl Med. 4, 320-332 (2015).
  35. Nakagawa, M., et al. A novel efficient feeder-free culture system for the derivation of human induced pluripotent stem cells. Sci Rep. 4, 3594 (2014).
  36. Howden, S. E., et al. Simultaneous Reprogramming and Gene Correction of Patient Fibroblasts. Stem Cell Reports. 5, 1109-1118 (2015).
  37. Meng, X., et al. Rapid and efficient reprogramming of human fetal and adult blood CD34+ cells into mesenchymal stem cells with a single factor. Cell research. 23, 658-672 (2013).
  38. Liao, W., et al. Direct Conversion of Cord Blood CD34+ Cells Into Neural Stem Cells by OCT4. Stem cells translational medicine. 4, 755-763 (2015).
check_url/pt/55091?article_type=t

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Citar este artigo
Wen, W., Zhang, J., Chen, W., Arakaki, C., Li, X., Baylink, D., Botimer, G. D., Xu, J., Yuan, W., Cheng, T., Zhang, X. Generation of Integration-free Induced Pluripotent Stem Cells from Human Peripheral Blood Mononuclear Cells Using Episomal Vectors. J. Vis. Exp. (119), e55091, doi:10.3791/55091 (2017).

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