Summary

Die Erzeugung von Integration freien induzierte pluripotente Stammzellen aus menschlichen peripheren einkernigen Blutzellen Mit Episomale Vektoren

Published: January 01, 2017
doi:

Summary

This protocol describes a detailed method for efficient generation of integration-free iPSCs from human adult peripheral blood cells. With the use of four oriP/EBNA-based episomal vectors to express the reprogramming factors, KLF4, MYC, BCL-XL, or OCT4 and SOX2, thousands of iPSC colonies can be obtained from 1 mL of peripheral blood.

Abstract

Induzierte pluripotente Stammzellen (iPS-Zellen) sind äußerst viel versprechend für Krankheitsmodelle und regenerative Therapien. Wir zuvor berichtet die Verwendung von episomalen Vektoren (EV) Integration freien iPSCs aus peripheren mononukleären Blutzellen (MNCs PB) zu erzeugen. Die episomale Vektoren verwendet werden DNA – Plasmide integriert mit oriP und EBNA1 Elemente aus dem Epstein-Barr (EB) -Virus, die für die Replikation und Langzeit retainment von Plasmiden in Säugerzellen ermöglichen, respectively. Mit einer weiteren Optimierung kann Tausende von iPS Kolonien von 1 ml peripheren Blut gewonnen werden. Zwei kritische Faktoren zur Erzielung hoher Wirkungsgrade Neuprogrammierung sind: 1) die Verwendung eines 2A "Selbstspaltung" Peptid zu verknüpfen OCT4 und SOX2, wodurch äquimolare Expression der beiden Faktoren zu erreichen; 2) die Verwendung von zwei Vektoren auszudrücken MYC und KLF4 einzeln. Hier haben wir einen Schritt-für-Schritt-Protokoll zur Erzeugung von Integration freien iP beschreibenSCs aus adulten peripheren Blutproben. Die erzeugten iPS-Zellen sind Integration frei als Rest episomalen Plasmiden nach fünf Passagen nicht nachweisbar sind. Obwohl die Umprogrammierung Effizienz der von Sendai-Virus (SV) Vektoren vergleichbar ist, sind EV Plasmiden wesentlich wirtschaftlicher sind als die im Handel erhältlichen Vektoren SV. Dieses günstige EV Umprogrammierung System hält für klinische Anwendungen in der regenerativen Medizin Potenzial und bietet einen Ansatz für die direkte Umprogrammierung von PB MNU zur Integration freien mesenchymalen Stammzellen, neurale Stammzellen, usw.

Introduction

Nach forcierter Expression mehrerer Transkriptionsfaktoren (Dh OCT4, SOX2, MYC und KLF4) können somatischen Zellen zu induzierten pluripotenten Stammzellen (iPS – Zellen) umprogrammiert werden, die für Anwendungen ein großes Versprechen halten in der regenerativen Medizin und Zellersatztherapie 1-3. Bisher wurden verschiedene Methoden entwickelt , um die Erfolgsrate der Umprogrammierung 4-7 zu erhöhen. Virale Vektoren induzierte Reprogrammierung ist für eine effiziente Erzeugung von iPS-Zellen weit verbreitet, weil die virale Integration führt zu einem hohen Niveau, eine stabile Expression der Umprogrammierung Faktoren. Eine permanente Integration der Vektor – DNA in das Zellgenom induzieren Insertionsmutagenese 5. Darüber hinaus kann unzureichende Inaktivierung von Reprogrammierungsfaktoren iPSCs Differenzierung 8 stören. Als solches ist der Einsatz von iPS-Zellen ohne Integration von Reprogrammierungsfaktoren zwingend notwendig, vor allem für den Einsatz in der Zelltherapie-Anwendungen.

<p class="jove_content"> Episomale Vektoren (EVs) sind bei der Erzeugung von Integrationsfreien iPSCs weit verbreitet. Das am häufigsten verwendete EV ist ein Plasmid , zwei Elemente enthält, die Herkunft der viralen Replikation (oriP) und EB Nuclear Antigen 1 (EBNA1), von dem Epstein-Barr (EB) -Virus 9. Das oriP-Element fördert Plasmidreplikation in Säugetierzellen, während das EBNA1 Element den oriP-enthaltenden Plasmid-DNA in die chromosomale DNA anbindet, die für die Unterteilung des Episom während der Teilung der Wirtszelle ermöglicht. Im Vergleich zu anderen Integrationsfreien Ansätze, einschließlich Sendai – Virus (SV) und RNA – Transfektion besitzen EVs mehrere Vorteile 5,6,10. Als Plasmid-DNA kann EVs leicht im Haus hergestellt und modifiziert werden, so dass sie äußerst erschwinglich zu machen. Darüber hinaus mit EV Umprogrammierung ist eine weniger arbeitsintensiver Prozess, da eine einzelne Transfektion mit EVs für iPSC Generation ausreichend ist, während mehrere RNA-Transfektionen für die erfolgreiche Reprogrammierung notwendig sind.

Dermal Fibroblasten wurden in vielen Umprogrammierung Studien verwendet worden. Allerdings ist Hautbiopsie nicht nur eine invasive und schmerzhafter Prozess, sondern auch zeitaufwendig für Zellen zu ausreichenden Mengen für eine Neuprogrammierung zu erweitern. Von größerer Bedeutung, Hautzellen von erwachsenen Spendern haben oft zu langfristigen UV – Licht – Strahlung ausgesetzt worden, die zu Mutationen , die mit Tumoren führen kann, so dass die Anwendungen für aus Fibroblasten der Haut 11,12 abgeleitet iPSCs begrenzen. Kürzlich ist berichtet worden , dass normale menschliche Hautzellen und somatische Mutationen multiple Krebsgene ansammeln, einschließlich die meisten der Schlüsselfaktoren der kutanen squamösen Zellkarzinomen, sind unter starkem positiven Selektions 13.

Im Gegensatz zu Hautfibroblasten, peripherem Blut (PB) Zellen eine bevorzugte Quelle von Zellen für eine Neuprogrammierung sind, weil 1) Blutzellen, können leicht durch eine minimal-invasive Verfahren, 2) periphere Blutzellen sind die Nachkommen von hämatopoetischen Stammzellen erhalten werden,im Knochenmark mit Wohnsitz, also vor schädlicher Strahlung geschützt. Periphere mononukleäre Blutzellen (PB MNCs) können in einer Stunde aus der buffy coat-Schicht nach einem einfachen Gradientenzentrifugation gesammelt werden unter Verwendung von Ficoll-Hypaque (1,077 g / ml). Die erhaltenen PB MNU sind aus Lymphozyten bestehen, Monozyten und einigen hämatopoetischen Vorläuferzellen (HPC) 14. Obwohl menschliche T – Lymphozyten eine der Hauptzelltypen in PB sind, reifen T – Zellen enthalten Neuanordnungen der T – Zell – Rezeptor (TCR) Gene und fehlt somit eine intakte Genom ihr Potential für Anwendungen Begrenzungs 15,16. Kann die Verjüngung von T – Zellen über iPSC Generation haben jedoch potenzielle Anwendungen in chimären Antigenrezeptoren (CAR) T-Zell – Therapie 17-19. Im Vergleich dazu haben HPCs eine intakte Genom und sind leicht umprogrammierbar. Obwohl nur 0,01-0,1% der Zellen in den peripheren Kreislauf HPCs sind, können diese Zellen ex vivo in erythroiden Medium erweitert werden , die Proliferation von erythr begünstigtoid Vorläuferzellen 14.

In unserer früheren Studie haben wir den Faktor BCL-XL zusätzlich zu den Yamanaka Faktoren (OCT4, SOX2, MYC und KLF4), die in einem 10 – fach Anstieg der PB Umprogrammierung efficency 20 geführt. BCL-XL, die auch als BCL2L1 bekannt, ist ein potenter Inhibitor der Zelltod durch 21,22 Aktivierung von Caspasen hemmen. Aber BCL-XL kann auch eine wichtige Rolle spielen Pluripotenz 21,22 aufrechtzuerhalten. Vor kurzem haben wir unsere EV Umprogrammierung System mit zwei Vektoren durch separat exprimierenden MYC und KLF4 optimiert, was in Umprogrammierung Wirkungsgrad 23 auf eine etwa 100 – fache Steigerung führt. Unter Verwendung dieses Verfahrens wird die Umprogrammierung Effizienz, definiert durch Koloniezahl geteilt durch die Zellzahl bei der Transfektion ausgehend ist 0,2-0,5% von gesunden Spendern. Wie folgt beschreiben wir die detaillierte experimentelle Verfahren zur Erzeugung von Integration freien iPSCs von PB.

Protocol

Alle der menschlichen PB Proben wurden von anonymen erwachsenen Spendern ohne Identifikationsinformationen von Tianjin Blood Center mit Genehmigung der lokalen Forschungsethikkommission erhalten. 1. Endo-freie Plasmid-Präparation Verwenden Sie eine kommerzielle Plasmidaufreinigung Maxi Kit zu episomale Vektoren von E. coli – Extrakt nach dem Protokoll des Herstellers. Für den letzten Schritt Ersatz TE-Puffer mit Endotoxin-freiem sterilem Wasser, um das DNA-Pellet aufzul…

Representative Results

Unter Verwendung dieses Protokolls können wir Hunderte von Kolonien erhalten , von 1 x 10 5 nucleofected PB MNCs (1A und 1B). Die Umprogrammierung Wirkungsgrad beträgt etwa 0,2 bis 0,5% und die Kolonien exprimieren Pluripotenz Marker (1C und 1D). erzeugt iPSCs sind die beschriebenen Protokoll Integration frei und haben die Fähigkeit , teratoma die drei Keimblätter (Figuren 1E und 1…

Discussion

Der Erwerb von Blutproben von gesunden Spendern oder Patienten ist bequem und nicht-invasive, es eine attraktive Zellquelle für die Grundlagenforschung und klinische Zelltherapie zu machen. Hier haben wir ein Protokoll für die hocheffiziente Erzeugung von Integration freien iPSCs aus peripheren Blutproben beschrieben. Das reproduzierbare und kostengünstige Ansatz sollte das iPSC Bereich profitieren.

Wir haben berichtet , dass es zwei kritische Faktoren , die für die hocheffiziente PB Ump…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by the Ministry of Science and Technology of China (2015CB964902, 2013CB966902 and 2012CB966601), the National Natural Science Foundation of China (81500148, 81570164 and 81421002), the Loma Linda University School of Medicine GCAT grant (2015), and Telemedicine and Advanced Technology Research Center (W81XWH-08-1-0697).

Materials

Hematopoietic Stem Cell Expansion Medium Sigma S0192 Store at 4 °C
Human stem cell factor (SCF) Peprotech 300-07 Store at -20 or -80°C
Interleukin-3 (IL-3) Peprotech AF-200-03 Store at -20 or -80°C
Eryrthropoietin (EPO) Peprotech 100-64 Store at -20 or -80°C
Insulin growth factor-1 (IGF-1) Peprotech 100-11 Store at -20 or -80°C
Dexamethasone Sigma D4902 Store at -20 or -80°C
1-thioglycerol (MTG) Sigma M6145 Store at -20 or -80°C
DMEM/F12 medium Gibco 112660-012 Store at 4 °C
L-glutamine (100x) Gibco 25030-081 Store at -20 °C
Penicillin/Streptomycin (100x) Gibco 15140-122 Store at -20 °C
Non-essential amino acids solution (100x) Gibco 11140-050 Store at 4 °C
Fibroblast growth factor 2 (FGF2) Peprotech 100-18B Store at -20 or -80°C
ITS (100x) Gibco 41400-045 Store at 4 °C
Ascorbic acid Sigma 49752 Store at -20 °C
DMEM (high glucose) medium Thermo SH30243.01B Store at 4 °C
FBS Hyclone SV30087.01 Store at -40 °C
Ficoll GE Healthcare, SIGMA 17-5442-02 Store at RT
Trehalose  Sigma T9531 Store at 4 °C
DMSO Sigma D2650 Store at RT, protect from light
Endofree Plasmid Maxi Kit(10) Qiagen 12362 Store at RT
IMDM Gibco 21056-023 Store at 4 °C
Human CD34+ Cell Nucleofection Kit Lonza VPA-1003 Store at RT, nucleofection buffer and supplement buffer should be stored at 4 °C
Sodium butyrate Sigma B5887 Store at -20 or -80°C
ROCK inhibitor Y27632 STEMGENT 04-0012-10 Store at -20 °C
Essential 8 basal medium (E8) Gibco A15169-01 Store at 4 °C, the supplement should be stored at -20 or -80°C
Matrigel BD 354277 Store at -20 or -80°C
2x EasyTaq PCR SuperMix(+dye) TransGen Biotech AS111 Store at -20 °C
Cell detachment solution STEMGENT 01-0006 Store at -20 °C, Accutase as a cell detachment solution to obtain a single cell suspension
DAPI Sigma D9542-1MG Store at 4 °C or -20 °C
Anti-nanog-AF488 BD 560791 Store at 4 °C, primary antibody used for Immunofluorescence, dilute 1/100 when use
Anti-OCT4 abcam ab19857 Store at 4 °C, primary antibody used for Immunofluorescence, dilute 1/100 when use
AF488 donkey anti-mouse IgG Invitrogen A21202 Store at 4 °C, secondary antibody used for Immunofluorescence,  dilute 1/500 when use
PE anti-human TRA-1-60-R Antibody Biolegend 330610 Store at 4 °C, antibody used for flow cytometry
eFluor 570-conjugated anti-SSEA4 eBioscience 41-8843 Store at 4 °C, antibody used for flow cytometry
Isotype antibody eBioscience 11-4011 Store at 4 °C, antibody used for flow cytometry
Alkaline Phosphatase Detection Kit SiDanSai 1102-100 Store at 4 °C
Genomic DNA Extraction Kit TIANGEN DP304-02 Store at RT
Trypan Blue solution Sigma T8154 Store at RT
Flow cytometry cell analyzer BD LSRII for flow cytometry analysis
Spinning disk confocal microscope (SDC) PerkinElmer UltraVIEW VOX for confocal imaging
Nucleofection device Lonza Nucleofector 2b for the nucleofection of PB MNC
ImageQuant LAS-4010 GE take photo of AP staining in bulk

Referências

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Citar este artigo
Wen, W., Zhang, J., Chen, W., Arakaki, C., Li, X., Baylink, D., Botimer, G. D., Xu, J., Yuan, W., Cheng, T., Zhang, X. Generation of Integration-free Induced Pluripotent Stem Cells from Human Peripheral Blood Mononuclear Cells Using Episomal Vectors. J. Vis. Exp. (119), e55091, doi:10.3791/55091 (2017).

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