We describe a framework incorporating straightforward biochemical and computational analysis to guide the characterization and crystallization of large coiled-coil domains. This framework can be adapted for globular proteins or extended to incorporate a variety of high-throughput techniques.
Obtaining crystals for structure determination can be a difficult and time consuming proposition for any protein. Coiled-coil proteins and domains are found throughout nature, however, because of their physical properties and tendency to aggregate, they are traditionally viewed as being especially difficult to crystallize. Here, we utilize a variety of quick and simple techniques designed to identify a series of possible domain boundaries for a given coiled-coil protein, and then quickly characterize the behavior of these proteins in solution. With the addition of a strongly fluorescent tag (mRuby2), protein characterization is simple and straightforward. The target protein can be readily visualized under normal lighting and can be quantified with the use of an appropriate imager. The goal is to quickly identify candidates that can be removed from the crystallization pipeline because they are unlikely to succeed, affording more time for the best candidates and fewer funds expended on proteins that do not produce crystals. This process can be iterated to incorporate information gained from initial screening efforts, can be adapted for high-throughput expression and purification procedures, and is augmented by robotic screening for crystallization.
Strukturbestämning via röntgenkristallografi har gjort fundamentala bidrag till alla områden av modern biologi, tillhandahålla ett atom vy av makromolekylerna som stöder livet och hur de samverkar med varandra i en mängd olika sammanhang; tillåter oss att förstå de mekanismer som orsakar sjukdom och ger möjligheter att rationellt utforma läkemedel mot sjukdomen. Kristallografi har länge varit den dominerande experimentell teknik för att bestämma makromolekylära struktur, och står för närvarande för 89,3% av den strukturella databasen (www.rcsb.org). Denna teknik har många fördelar, inklusive möjligheten till mycket hög upplösning, förmågan att visualisera makromolekyler med ett brett intervall av storlekar, relativt lätt för datainsamling, och möjlighet att visualisera hur makromolekylen interagerar med lösningsmedel samt ligander.
Trots ett stort antal tekniska förbättringar i rekombinant proteinuttryck 1,2, purförgasning 3 och molekylärbiologi används för att generera dessa system 4, den enskilt största hindret i den kristallografiska processen fortfarande förmågan att växa diffraktion kvalitet kristaller. Detta har varit särskilt sant för proteiner som innehåller stora coiled-coil-domäner. Det har uppskattats att så mycket som 5% av alla aminosyror finns inom lindade-spolar 5,6, vilket gör detta ett mycket vanligt strukturellt drag 7, men dessa proteiner är ofta svårare att rena och kristallisera än globulära proteiner 8-10 . Detta förvärras ytterligare av det faktum att coiled-coil-domäner finns ofta inom ramen för ett större protein, därför korrekt förutsäga gränserna för dessa domäner är avgörande för att undvika införandet av ostrukturerad eller flexibel sekvens som ofta är skadlig för kristallisation.
Här presenterar vi en konceptuell ram som kombinerar webbaserad beräkningsanalyser med Experimental data från bänken, som hjälper användarna genom de inledande skedena av den kristallografiska processen inklusive: Hur man väljer proteinfragment (s) för strukturstudier, och hur man förbereder och karakterisera proteinprover före kristallisa försök. Vi fokuserar vår analys på två proteiner som innehåller stora ringlad-spiraldomäner, Shroom (SHRM) och Rho-kinas (Rock). Dessa proteiner valdes eftersom de båda innehåller coiled-coil-domäner och är kända för att bilda en biologiskt relevant komplex 11-16. Shroom och Rho-kinas (Rock) förutsägs innehålla ~ 200 och 680 rester av coiled-coil respektive många delar som har präglats strukturellt 17-20. Den metod som beskrivs här ger en strömlinjeformad arbetsflöde för att snabbt identifiera fragment av coiled-coil innehållande protein som kommer att vara mottaglig för kristallisation är emellertid den teknik som beskrivs kan lätt anpassas för de flesta protein eller proteinkomplex eller modifierad för att införliva hög genomströmning approaches som finns. Slutligen dessa metoder är i allmänhet billigt och kan utföras av användare på nästan alla erfarenheter nivåer.
Protokollet som beskrivs här är utformad för att hjälpa användaren att identifiera domängränser inom stora coiled-coil-proteiner för att underlätta deras kristallisering. Protokollet bygger på en helhets införlivande av en mängd data från beräknings förutsägelser och andra källor för att generera en rad potentiella domängränser. Dessa följs av en uppsättning biokemiska experiment som är snabb och billig, och som används för att ytterligare förfina dessa initiala hypoteser. Med hjälp av denna m…
The authors have nothing to disclose.
This work was supported by grant NIH R01 GM097204 (APV and JDH). Funding for JHM was supplied by an HHMI Undergraduate Research Summer Fellowship.
BL21(DE3) Rosetta | Emd Millipore | 70954-3 | |
BL21(DE3) Star | ThermoFisher Scientific | C601003 | |
BL21(DE3) Codon Plus | Agilent Technologies | 230245 | |
Lysozyme | Spectrum Chemical Mfg Corp | L3008-5GM | |
Ni-NTA resin | Life Technologies | 25216 | |
SubtilisinA | Spectrum Chemical Mfg Corp | S1211-10ML | |
24 well Cryschem Plate | Hampton research | HR3-160 | |
INTELLI-PLATE 96: | Art Robbins Instruments | 102-0001-03 | |
PEG 3350 | Hampton research | HR2-591 | |
PEG 8000 | Hampton research | HR2-515 | |
PEG 400 | Hampton research | HR2-603 | |
PEG 4000 | Hampton research | HR2-605 | |
pcDNA3.1-Clover-mRuby2 | Addgene | 49089 | |
Overnight Express Autoinduction System 1 | Emd Millipore | 71300 | |
Lysogeny Broth powder | ThermoFisher Scientific | 12795027 |