Summary

Mus naive CD4<sup> +</sup> T Cell Isolasjon og<em> In vitro</em> Differensiering i T cell Subsets

Published: April 16, 2015
doi:

Summary

Naïve CD4+ T cells polarize to various subsets depending on the environment at the time of activation. The differentiation of naïve CD4+ T cells to various effector subsets can be achieved in vitro through the addition of T cell receptor stimuli and specific cytokine signals.

Abstract

Antigen inexperienced (naïve) CD4+ T cells undergo expansion and differentiation to effector subsets at the time of T cell receptor (TCR) recognition of cognate antigen presented on MHC class II. The cytokine signals present in the environment at the time of TCR activation are a major factor in determining the effector fate of a naïve CD4+ T cell. Although the cytokine environment during naïve T cell activation may be complex and involve both redundant and opposing signals in vivo, the addition of various cytokine combinations during naive CD4+ T cell activation in vitro can readily promote the establishment of effector T helper lineages with hallmark cytokine and transcription factor expression. Such differentiation experiments are commonly used as a first step for the evaluation of targets believed to promote or inhibit the development of certain CD4+ T helper subsets. The addition of mediators, such as signaling agonists, antagonists, or other cytokines, during the differentiation process can also be used to study the influence of a particular target on T cell differentiation. Here, we describe a basic protocol for the isolation of naïve T cells from mouse and the subsequent steps necessary for polarizing naïve cells to various T helper effector lineages in vitro.

Introduction

Konseptet med distinkte linjer eller undergrupper av CD4 + T helper (Th) celler har eksistert siden siste del av det 20. århundre en. Anerkjennelse av beslektet antigen i nærvær av ko-stimulerende signaler resulterer i flere runder med cellulær proliferasjon og den endelige differensiering til effektor Th-celler. Typen av Th-celle generert i løpet av denne prosessen er avhengig av cytokin miljø tilstede under aktiveringen 2. I begynnelsen var naive Th-celler tenkt å polar inn to distinkte linjene følgende T-celle reseptor (TCR) aktivisering, kostimulerende CD28 ligation, og cytokin signalering. Type 1-hjelperceller (Th 1) er kjennetegnet ved deres effektor produksjon av IFNy cytokin, så vel som deres krav for IL-12 signalisering i løpet av differensieringsprosessen 3,4. Til slutt ble det oppdaget at differensierte Th1-celler har en genetisk profil som er mest karakteristiske preget by uttrykk for T boksen familie transkripsjonsfaktor, Tbx21 (T-bet), som regnes som hoved regulator av Th1 genetisk program 5. Videre kan IL-12, så vel som IFNy fremmer T-bet ekspresjon 6,7. I immunrespons, Th1-celler er viktige for verten forsvar mot intracellulære patogener samt sterke arrangører av autoimmun betennelse. I motsetning til dette, type 2-hjelperceller (Th2) krever IL-4 for deres utvikling og deres effektor cytokiner, inkludert IL-4, IL-5 og IL-13, er viktig for å drive B-celle responser og er patogene i allergi 8, 9. I likhet med Th1-celler, ble Th2-celler funnet å uttrykke sin egen herre transkripsjonell regulator, betegnes GATA-3 10,11. Interessant, tilstedeværelse av polariserende cytokiner og generering av en bestemt Th avstamning er antagonistisk til utvikling av andre, 2,12, noe som tyder på at bare en bestemt Th undergruppe kan bli dominerende under en immungjenrespons.

Etter identifikasjon av Th1 og Th2-cellelinjer, har ytterligere arbeid vist enda mer unik undergrupper av T-hjelperceller, inkludert follikulær hjelper (TFH), IL-9-produserende (Th9), og IL-22-produksjon (Th22) (nylig anmeldt i 13). Ved anvendelse av in vitro differensiering eksperimenter, vil denne protokollen fokusere ytterligere bare på to Th undergrupper, betegnet regulatoriske T-celler (treg) og IL-17-produksjon av CD4 + T-celler (Th17). CD25 + regulatoriske T-celler kan skje naturlig (nTreg) i thymus; naive Th-celler kan også fremkalles (iTreg) til å bli regulatorisk i periferien (anmeldt i 14,15). Begge typer Tregs uttrykke et karakteristisk transkripsjonsfaktor betegnet gaffelhodeboks P3 (foxp3), som er avgjørende for deres effektor undertrykkingsmekanismer som omfatter oppløselige anti-inflammatorisk mediator produksjon, IL-2-forbruk, og celle-kontakt-avhengige mekanismer 14,15. Mangelen på Foxp3 uttrykk gir en alvorlig, multi-organ autoimmun lidelse kalt immunfeilregulering, polyendocrinopathy, enteropati, X-bundet syndrom (IPEX), demonstrere kritisk rolle denne Th undergruppe i å løse betennelse og regulere perifer toleranse for selv antigener 16. In vitro, naive CD4 + T-hjelperceller oppregulerer foxp3 og bli forpliktet til treg programmet ved stimulering med IL-2 og TGF-β 14,15. Det kan være moderat til stor plastisitet i CD4 + T-celle-cellelinjer, spesielt når man vurderer bare cytokinproduksjon (oversikt i 17,18). Men i forbindelse med in vitro differensiering protokoller, vi skal diskutere hver undergruppe som en unik avstamning.

Nylig ble en undergruppe av Th17-celler som produserer IL-17 cytokin identifisert som et unikt avstamning med proinflammatoriske funksjoner som er særlig patogene under autoimmun inflammasjon 19-21. Th17 celler uttrykker en unik transkripsjonsfaktor, kalt retinoid relaterte foreldreløs reseptor gamma t (RORγt) som koordinerer Th17 genetisk program 22. TGFp er viktig for generering av Th17 avstamning gjennom induksjon av RORγt. Imidlertid er effekten av TGFp signale antas å bare indusere Th17 satsing på synergizing med IL-6 (anmeldt i 12). Videre studier har vist at en rekke andre signaler som positivt kan regulere Th17 engasjement, inkludert IL-1β, økt natrium og TLR signale 23-26. Andre rapporter har antydet at de patogene Th17-celler in vivo, er de som faktisk omgår TGFp signalering og i stedet stole på en kombinasjon av IL-1, IL-6 og IL-23 for 27 deres differensiering. Således kan Th17-celler være avledet fra en rekke forskjellige signalveier; for anvendelsen av denne protokollen, vanlig brukte (TGFp og IL-6) veien for Th17 avstamning engasjementvil bli presentert.

Differensieringen protokollen beskrevet under for alle effektor linjene er avhengig av fast antistoff som stimuli for TCR og CD28 gjennom hele løpet av eksperimentet. Men andre har vist at TCR aktivering med antigen-presenterende celler 28 eller tverrbinding anti-CD3 og anti-CD28-antistoffer med hamster-antistoff i 2 dager, 29 er også svært effektivt middel for å indusere dannelsen av forskjellige Th-undergrupper. Protokollen presenteres her bygger på tidligere rapporterte metoder for å isolere murine CD4 + T-celler fra sekundære lymfoide organer 30 og generere Th17 celler 31. En hovedforskjell er at denne protokollen er avhengig av bruk av en cellesorterer å isolere naive CD4 + T-celler fra lymfevev. Men mange bedrifter nå tilby raske separasjons kits som kan berike for naive CD4 + T-celler, som kan være i stand til å omgå kravet feller sortering, avhengig av forsøket. De fremgangsmåter og reagenser som er presentert i denne protokollen er det vi rutinemessig bruk, og finner for å være den mest effektive. Men husk at alternative reagenser og metoder finnes for mange av trinnene som presenteres nedenfor, og det er opp til den enkelte lab for å finne ut hva som fungerer best for deres formål.

Protocol

Alle eksperimentelle prosedyrer utføres ved hjelp av protokoller godkjent av kontoret of Environmental Health and Safety ved Rosalind Franklin medisinske og vitenskapelige universitet. C57BL / 6 mus (kjøpt fra NCI) som brukes for denne protokollen ble plassert under bestemte patogenfrie forhold, og alle dyreforsøk ble utført ved hjelp av protokoller godkjent av Institutional Animal Care og bruk Committee (IACUC) ved Rosalind Franklin medisinske og vitenskap. 1. Klargjøring av instrumenter…

Representative Results

Tidspunktet for analyse av differensiering kan variere avhengig av Th tilstand som testes, så vel som styrken av T-celle-reseptor-aktivering. Etter 2-3 dager med differensiering, kan cellene bli visualisert ved lysmikroskopi for å bestemme graden av T-celle-proliferasjon. Wells stiller omfattende spredning og klumper av celler vil mest sannsynlig være klar for analyse på dag 4. Differensierings forhold stole på tillegg av eksogene IL-2, som Th1 og Th2, vil trolig eksos media etter 4 dager i kultur. Å maksimere cyt…

Discussion

Mens milten inneholder naive Th-celler, er andelen av denne populasjonen i lymfeknuter mye høyere. Unnlatelse av å identifisere og fjerne lymfeknuter i denne protokollen vil resultere i et dårlig utbytte av naive celler. Dette kan være spesielt vanskelig i eldre mus eller hannmus som har mer fettvev. Som vist i figur 1, riktig fiksering og låsing av de animalske lemmer og huden vil tillate enklere visualisering av de tilgjengelige utvendige lymfeknuter. Når lymfeknuter og milt er behandlet, er cel…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å takke alle medlemmer av Reynolds lab ved Rosalind Franklin medisinske og vitenskapelige universitet, og Chen Dong lab ved University of Texas MD Anderson Cancer Center for optimalisering av denne protokollen. Dette arbeidet ble støttet av en bevilgning til JMR fra National Institutes of Health (K22AI104941).

Materials

Complete RPMI: Warm in a 37 oC water bath before use
RPMI 1640 Media Life Technologies 11875119
10 % FBS Life Technologies 26140-079
1000X 2-mercaptoethanol Life Technologies 21985023
100X Pen/Strep Life Technologies 15140122
100X L-glutamine Life Technologies 25030081
120 micron nylon mesh Amazon CMN-0120-10YD Cut into 2 cm2 squares and autoclave
Alternative: 100 micron cell strainers Fisher 08-771-19 Alternative to cutting nylon mesh
autoMACS running buffer Miltenyi 130-091-221 Warm in a 37 oC water bath before use
autoMACS rinsing solution Miltenyi 130-091-222 Warm in a 37 oC water bath before use
CD4 beads Miltenyi 130-049-201
ACK lysis buffer Life Technologies A10492-01
Cytokines:
Human (h) IL-2 Peprotech 200-02
Recombinant mouse (rm) IL-4 Peprotech 214-14
rmIL-6 R & D Systems 406-ML-025
rmIL-12 Peprotech 210-12
hTGFb R & D Systems 240-B-010
Antibodies:
2C11 (anti-CD3) BioXcell BE0001-1
37.51 (anti-CD28) BioXcell BE0015-1
11B11 (anti-IL-4) BioXcell BE0045
XMG1.2 (anti-IFNg) BioXcell BE0055
anti-CD62L-FITC BioLegend 104406 Use at 1:100
anti-CD25-PE BioLegend 102008 Use at 1:400
anti-CD4-PerCP BioLegend 100434 Use at 1:1000
anti-CD44-APC BioLegend 103012 Use at 1:500
Phorbol  12-myristate 13 acetate (PMA) Sigma-Aldrich P-8139 Prepare a stock at 0.1 mg/ml in DMSO and freeze aliquots at -20 oC
Ionomycin Sigma-Aldrich I-0634 Prepare a stock at 0.5 mg/ml in DMSO and freeze aliquots at -20 oC
Brefeldin A eBioscience 00-4506-51 Use at 1:1000

Referências

  1. Mosmann, T. R., Cherwinski, H., Bond, M. W., Giedlin, M. A., Coffman, R. L. Two types of murine helper T cell clone. I. Definition according to profiles of lymphokine activities and secreted proteins. J Immunol. 136 (7), 2348-2357 (1986).
  2. Dong, C., Flavell, R. A. Cell fate decision: T-helper 1 and 2 subsets in immune responses. Arthritis Res. 2 (3), 179-188 (2000).
  3. Hsieh, C. S., et al. Development of TH1 CD4+ T cells through IL-12 produced by Listeria-induced macrophages. Science. 260 (5107), 547-549 (1993).
  4. Seder, R. A., Gazzinelli, R., Sher, A., Paul, W. E. Interleukin 12 acts directly on CD4+ T cells to enhance priming for interferon gamma production and diminishes interleukin 4 inhibition of such priming. Proc Natl Acad Sci U S A. 90 (21), 10188-10192 (1993).
  5. Szabo, S. J., et al. A novel transcription factor, T-bet, directs Th1 lineage commitment. Cell. 100 (6), 655-669 (2000).
  6. Afkarian, M., et al. T-bet is a STAT1-induced regulator of IL-12R expression in naive CD4. T cells. Nat Immunol. 3 (6), 549-557 (2002).
  7. Zhu, J., et al. The transcription factor T-bet is induced by multiple pathways and prevents an endogenous Th2 cell program during Th1 cell responses. Immunity. 37 (4), 660-673 (2012).
  8. Le Gros, G., Ben-Sasson, S. Z., Seder, R., Finkelman, F. D., Paul, W. E. Generation of interleukin 4 (IL-4)-producing cells in vivo and in vitro: IL-2 and IL-4 are required for in vitro generation of IL-4-producing cells. J Exp Med. 172 (3), 921-929 (1990).
  9. Swain, S. L., Weinberg, A. D., English, M., Huston, G. IL-4 directs the development of Th2-like helper effectors. J Immunol. 145 (11), 3796-3806 (1990).
  10. Zhang, D. H., Cohn, L., Ray, P., Bottomly, K., Ray, A. Transcription factor GATA-3 is differentially expressed in murine Th1 and Th2 cells and controls Th2-specific expression of the interleukin-5 gene. J Biol Chem. 272 (34), 21597-21603 (1997).
  11. Zheng, W., Flavell, R. A. The transcription factor GATA-3 is necessary and sufficient for Th2 cytokine gene expression in CD4 T cells. Cell. 89 (4), 587-596 (1997).
  12. Dong, C. TH17 cells in development: an updated view of their molecular identity and genetic programming. Nat Rev Immunol. 8 (5), 337-348 (2008).
  13. Jiang, S., Dong, C. A complex issue on CD4(+) T-cell subsets. Immunol Rev. 252 (1), 5-11 (2013).
  14. Rudensky, A. Y. Regulatory T cells and Foxp3. Immunol Rev. 241 (1), 260-268 (2011).
  15. Sakaguchi, S., Yamaguchi, T., Nomura, T., Ono, M. Regulatory T cells and immune tolerance. Cell. 133 (5), 775-787 (2008).
  16. Barzaghi, F., Passerini, L., Bacchetta, R. Immune dysregulation, polyendocrinopathy, enteropathy, x-linked syndrome: a paradigm of immunodeficiency with autoimmunity. Front Immunol. 3, 211 (2012).
  17. Shea, J. J., Paul, W. E. Mechanisms underlying lineage commitment and plasticity of helper CD4 T cells. Science. 327 (5969), 1098-1102 (2010).
  18. Zhou, L., Chong, M. M., Littman, D. R. Plasticity of CD4+ T cell lineage differentiation. Immunity. 30 (5), 646-655 (2009).
  19. Harrington, L. E., et al. Interleukin 17-producing CD4+ effector T cells develop via a lineage distinct from the T helper type 1 and 2 lineages. Nat Immunol. 6 (11), 1123-1132 (2005).
  20. Langrish, C. L., et al. IL-23 drives a pathogenic T cell population that induces autoimmune inflammation. J Exp Med. 201 (2), 233-240 (2005).
  21. Park, H., et al. A distinct lineage of CD4 T cells regulates tissue inflammation by producing interleukin 17. Nat Immunol. 6 (11), 1133-1141 (2005).
  22. Ivanov, I. I., et al. The orphan nuclear receptor RORgammat directs the differentiation program of proinflammatory IL-17+ T helper cells. Cell. 126 (6), 1121-1133 (2006).
  23. Chung, Y., et al. Critical regulation of early Th17 cell differentiation by interleukin-1 signaling. Immunity. 30 (4), 576-587 (2009).
  24. Reynolds, J. M., Martinez, G. J., Chung, Y., Dong, C. Toll-like receptor 4 signaling in T cells promotes autoimmune inflammation. Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (32), 13064-13069 (2012).
  25. Reynolds, J. M., et al. Toll-like receptor 2 signaling in CD4(+) T lymphocytes promotes T helper 17 responses and regulates the pathogenesis of autoimmune disease. Immunity. 32 (5), 692-702 (2010).
  26. Wu, C., et al. Induction of pathogenic TH17 cells by inducible salt-sensing kinase SGK1. Nature. 496 (7446), 513-517 (2013).
  27. Ghoreschi, K., et al. Generation of pathogenic T(H)17 cells in the absence of TGF-beta signalling. Nature. 467 (7318), 967-971 (2010).
  28. Veldhoen, M., Hocking, R. J., Atkins, C. J., Locksley, R. M., Stockinger, B. TGFbeta in the context of an inflammatory cytokine milieu supports de novo differentiation of IL-17-producing T cells. Immunity. 24 (2), 179-189 (2006).
  29. Avni, O., et al. T(H) cell differentiation is accompanied by dynamic changes in histone acetylation of cytokine genes. Nat Immunol. 3 (7), 643-651 (2002).
  30. Matheu, M. P., Cahalan, M. D. Isolation of CD4+ T cells from mouse lymph nodes using Miltenyi MACS purification. J Vis Exp. (9), (2007).
  31. Bedoya, S. K., Wilson, T. D., Collins, E. L., Lau, K., Larkin, J. Isolation and th17 differentiation of naive CD4 T lymphocytes. J Vis Exp. (79), e50765 (2013).

Play Video

Citar este artigo
Flaherty, S., Reynolds, J. M. Mouse Naïve CD4+ T Cell Isolation and In vitro Differentiation into T Cell Subsets. J. Vis. Exp. (98), e52739, doi:10.3791/52739 (2015).

View Video