Summary

Ett restriktionsenzym Based Kloning metod för att bedöma<em> In vitro</em> Replikering Kapacitet på HIV-1 subtyp C Gag-MJ4 Chimära virus

Published: August 31, 2014
doi:

Summary

HIV-1 pathogenesis is defined by both viral characteristics and host genetic factors. Here we describe a robust method that allows for reproducible measurements to assess the impact of the gag gene sequence variation on the in vitro replication capacity of the virus.

Abstract

The protective effect of many HLA class I alleles on HIV-1 pathogenesis and disease progression is, in part, attributed to their ability to target conserved portions of the HIV-1 genome that escape with difficulty. Sequence changes attributed to cellular immune pressure arise across the genome during infection, and if found within conserved regions of the genome such as Gag, can affect the ability of the virus to replicate in vitro. Transmission of HLA-linked polymorphisms in Gag to HLA-mismatched recipients has been associated with reduced set point viral loads. We hypothesized this may be due to a reduced replication capacity of the virus. Here we present a novel method for assessing the in vitro replication of HIV-1 as influenced by the gag gene isolated from acute time points from subtype C infected Zambians. This method uses restriction enzyme based cloning to insert the gag gene into a common subtype C HIV-1 proviral backbone, MJ4. This makes it more appropriate to the study of subtype C sequences than previous recombination based methods that have assessed the in vitro replication of chronically derived gag-pro sequences. Nevertheless, the protocol could be readily modified for studies of viruses from other subtypes. Moreover, this protocol details a robust and reproducible method for assessing the replication capacity of the Gag-MJ4 chimeric viruses on a CEM-based T cell line. This method was utilized for the study of Gag-MJ4 chimeric viruses derived from 149 subtype C acutely infected Zambians, and has allowed for the identification of residues in Gag that affect replication. More importantly, the implementation of this technique has facilitated a deeper understanding of how viral replication defines parameters of early HIV-1 pathogenesis such as set point viral load and longitudinal CD4+ T cell decline.

Introduction

Fastställande både värd och virus särdrag som påverkar HIV-1 patogenes och sjukdomsprogression är av största vikt för rationell vaccindesign. Det cellulära immunsvar är en viktig del av människans immunsvar mot hiv-1-infektion. Cytotoxiska T-lymfocyter (CTL) är nödvändiga för den inledande kontrollen av akut viremi och låt värd att upprätta ett stabilt tillstånd (börvärde) virusmängd 1,2. Experimentell utarmning av dessa effektorceller resulterar i förlust av viruskontroll 3,4. Trots detta fly mutationer uppstår inom virusgenomet som gräva CTL erkännande av virusinfekterade celler 5-9.

Vissa HLA-alleler har förknippats med lägre virusnivåer och långsammare sjukdomsprogression med B * 57, B * 27 och B * 81 10-15. En del av den skyddande fördelen av HLA klass I-alleler kan tillskrivas det faktum att de är inriktade funktionellt begränsade regioner av genomet, såsom Gagoch selektera för escape-mutationer som minskar förmågan hos viruset att replikera in vitro 16-21. Även flykt från det cellulära immunsystemet är fördelaktigt för viruset i samband med väljar HLA klass I allel, kan effekten av dessa mutationer har differential konsekvenser för värden vid överföring till en HLA-inkompatibla individ 22,23. Därför kommer förstå effekterna av överförda HLA-associerade utrymnings mutationer på virusreplikakapaciteten vara viktigt att öka våra kunskaper om tidiga HIV-1 patogenes.

Även om stora framsteg har gjorts för att identifiera och karakterisera fitness defekter enskilda flykt mutationer associerade med specifika HLA klass I alleler 24-29, naturligt förekommande HIV-1-isolat har unika och komplexa spår av HLA-associerade polymorfism, troligen härrör från HLA medierad immun tryck av olika immunogenetiska bakgrunder 30. I aprevious analys Goepfert et al. visade att en ansamling av HLA-associerade mutationer i de överförda Gag sekvenser härledda från 88 akut infekterade Zambians associerades med en minskning av börvärde virusmängd 31. Detta tyder på att överföring av skadliga utrymnings mutationer, särskilt i Gag, till HLA-inkompatibla mottagare ger en klinisk nytta, och kan bero på försvagade virusreplikation. Framåt är det absolut nödvändigt att studera hur komplicerade kombinationer av Gag polymorfism inom naturligt förekommande isolat arbetar tillsammans för att definiera egenskaperna hos den överförda virus såsom replikakapacitet, och hur tidigt replikering kan i sin tur påverka HIV-1 kliniska parametrar och sent skede patogenes.

Brockman et al. Visade först en länk mellan replikeringskapacitet gag-pro sekvenser isolerade under kronisk skede infektion och virus i både subtyp C och B-infektioner32-35. Den experimentella metod som presenteras i dessa studier, även lämplig för prövningen av replikeringskapacitet sekvenser härledda från kroniskt infekterade individer in vitro, har flera tekniska förbehåll och begränsningar som gör studerar HIV-1 replikationsförmåga in subtyp C akut infekterade individer svårt. Denna metod förlitar sig på rekombination av befolkningen baserade PCR-amplifierade sekvenserna in i subtyp B NL4-3 provirus, som blev framtagen ur delar från LAV, ett laboratorium anpassat virus lager 36. Virus generationen åstadkoms genom samtransfektion av en CEM-baserade T-cellinje 37 med PCR-amplikoner och digere delta- gag-pro NL4-3 DNA. Denna metod kräver utväxt av viruset under en period av veckor till månader, potentiellt skev arten av det utvunna viruset lager i förhållande till de virala kvasispecies in vivo och därför förändra mätningen av replikeringsförmåga in vitro. Denna metod Iär mer lämpligt för att studera kroniskt infekterade individer, där den väljer effektivt för virus med högsta replikationsförmåga, och där kloning många olika virusvarianter från ett stort antal kroniskt infekterade individer är ganska arbetskrävande och därför inte genomförbart. Men inom en akut infekterad individ, finns det i allmänhet 1-2 varianter närvarande, och därmed eliminerar risken för snedställning typen av återvunna viruset lager, genom in vitro selektionstryck, möjliggör en mer exakt bedömning av in vitro-replikationsförmåga. För det andra kräver den här metoden rekombination subtyp C gag-pro-sekvenser i en subtyp B härledd ryggraden, och skulle kunna införa ryggrad inkompatibilitet fördomar i analysen. På grund av dessa begränsningar, måste ett stort antal sekvenser analyseras för att övervinna eventuella fördomar införs.

Här beskriver vi en alternativ experimentell lämpach lämplig för att studera sekvenser härledda från subtyp C akut infekterade individer. Vi använder ett restriktionsenzym baserad kloningsstrategi för att införa gag-genen från akuta punkter HIV-1 subtyp C infekterade individer infektions time in subtyp C proviral ryggrad, MJ4. Användningen av MJ4 som en gemensam ryggrad på sig att klona gag-gener är avgörande för analysen av subtyp C härledda sekvenser. MJ4 kommer från ett primärt isolat 38, och därmed skulle vara mindre benägna att införa fördomar på grund av subtyp inkompatibilitet mellan ryggraden och gag-genen. Dessutom tillåter den strategi för att använda enzym baserad begränsning kloning för provirala konstruktioner som ska transfekteras direkt i 293T-celler, samt för indrivning av en klonal virus lager identisk med den klonade gag-sekvensen.

Metoden presenteras nedan är en hög genomströmning metod för bedömning replikeringskapacitet subtyp C härlett Gag-MJ4chimära virus. Transfektion in i 293T-celler är enkel och återvinning av virus tar bara tre dagar. In vitro replikering kapacitet analyseras på samma CEM-CCR5 baserade T-cellinje som skapats av Brockman et al. 37, men med hjälp av viktiga protokoll modifieringar som behövs för att framgångsrikt replikering av subtyp C MJ4 chimära virus. Användningen av en lämplig T-cellinje stället PBMC möjliggör ett stort antal subtyp C MJ4-chimär virus som skall testas med hög analys reproducerbarhet. Slutligen, med hjälp av en radiomärkt omvänt transkriptas assay för kvantifiering av virus i supernatanten är mer kostnadseffektivt än att använda kommersiellt tillgängliga p24 ELISA-kit. Det ger också en högre dynamiskt omfång, vilket var viktigt för att upptäcka både dåligt och mycket replikerande virus inom samma analys och för att upptäcka subtila skillnader i replikering mellan isolat.

Sammanfattningsvis har metoden presenteras här tillåtet förden fördjupade studie av replikeringskapacitet gag sekvenser härledda från HIV-1 subtyp C akut infekterade individer från Zambia, och som skrivet, skulle också kunna utvidgas till att studera andra subtyp C smittade befolkningar. En hög grad av variation i replikeringskapacitet mellan olika Gag isolat observerades. Dessutom kunde vi visa ett statistiskt samband mellan replikeringskapacitet på den utsända Gag och börvärde virusmängd och med CD4 + nedgång under en treårsperiod 39. Sådana resultat betona vikten av att studera hur överförd virus egenskaper, såsom replikering kapacitet, interagera med värdens immunsystem för att påverka patogenesen vid tidig infektion och kommer att vara integrerade för att utveckla effektiva vaccin interventioner samt behandling.

Protocol

1 Förstärkning av HIV-1 gag Gene från Infected, Frozen Plasma Utdrag viralt RNA från 140 l tinade HIV-1 infekterade plasma med hjälp av en extraktion kit. När så är möjligt, omedelbart vidare till cDNA-syntes efter RNA-extraktion som ofruset viralt RNA ger bäst förstärkningsresultat. Om möjligt, inrätta PCR Master Mix för första omgången DNA-förstärkningen och förvara vid 4 ° C före viralt RNA extraktion. Omvänd-transkribera cDNA från RNA och förs…

Representative Results

För att kunna utföra detta protokoll, vilket skapar en proviral plasmid som kan montera fullt fungerande, smitt Gag-MJ4 chimärer, måste stor försiktighet iakttas för att generera lämpliga PCR amplikoner. Fastställande av huruvida PCR har genererat lämplig storlek gag amplicon är avgörande. Produkter bör vara inom 100 baspar (bp) av ca 1.700 bp amplikon visas i Figur 1A. Den exakta längden av detta fragment kommer att variera beroende på gag-genen under studie. Därefter m…

Discussion

På grund av längden och tekniska karaktär detta protokoll, finns det flera steg som är kritiska för både den framgångsrika konstruktionen av chimära Gag-MJ4 plasmider samt för kvantifiering av virusreplikakapacitet. Även restriktionsenzymet baserade kloningsstrategi för införandet av främmande gag gener i MJ4 beskrivs i detta protokoll har många fördelar jämfört med tidigare använda rekombination baserade metoder, kan protokollet vara tekniskt utmanande om kritiska steg inte följs exakt.

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The investigators thank all the volunteers in Zambia who participated in this study and all the staff at the Zambia Emory HIV Research Project in Lusaka who made this study possible. The investigators would like to thank Jon Allen, Smita Chavan, and Mackenzie Hurlston for technical assistance and sample management. We would also like to thank Dr. Mark Brockman for his discussions and generous donation of the GXR25 cells.

This study was funded by R01 AI64060 and R37 AI51231 (EH) and the International AIDS Vaccine Initiative. This work was made possible in part by the generous support of the American people through the United States Agency for International Development (USAID). The contents are the responsibility of the study authors and do not necessarily reflect the views of USAID or the United States Government. This work also was supported, in part, by the Virology Core at the Emory Center for AIDS Research (Grant P30 AI050409). DC and JP were supported in part by Action Cycling Fellowships. This work was supported in part by the Yerkes National Primate Research Center base grant (2P51RR000165-51). This project was also funded in part by the National Center for Research Resources P51RR165 and is currently supported by the Office of Research Infrastructure Programs/OD P51OD11132.

Materials

Name of the Reagent Company Catalogue number Comments
PCR reagents
GOF: 5' ATTTGACTAGCGGAGGCTAGAA 3' IDT DNA Custom Oligo 25nmol, standard desalt
VifOR: 5' TTCTACGGAGACTCCATGACCC 3' IDT DNA Custom Oligo 25nmol, standard desalt
GagInnerF1:
5' AGGCTAGAAGGAGAGAGATG 3'
IDT DNA Custom Oligo 25nmol, standard desalt
BclIDegRev2:
5' AGTATTTGATCATAYTGYYTYACTTTR 3'
IDT DNA Custom Oligo 25nmol, standard desalt
MJ4For1b: 5' CGAAATCGGCAAAATCCC 3' IDT DNA Custom Oligo 25nmol, standard desalt
MJ4Rev: 5' CCCATCTCTCTCCTTCTAGC 3' IDT DNA Custom Oligo 25nmol, standard desalt
BclIRev: 5' TCTATAAGTATTTGATCATACTGTCTT 3' IDT DNA Custom Oligo 25nmol, standard desalt
GagF2: 5' GGGACATCAAGCAGCCAT 3' IDT DNA Custom Oligo 25nmol, standard desalt
For3: 5' CTAGGAAAAAGGGCTGTTGGAAATG 3' IDT DNA Custom Oligo 25nmol, standard desalt
GagR6: 5' CTGTATCATCTGCTCCTG 3' IDT DNA Custom Oligo 25nmol, standard desalt
Rev3: 5' GACAGGGCTATACATTCTTACTAT 3' IDT DNA Custom Oligo 25nmol, standard desalt
Rev1: 5' AATTTTTCCAGCTCCCTGCTTGCCCA 3' IDT DNA Custom Oligo 25nmol, standard desalt
CoolRack PCR 96 XT Biocision BCS-529
CoolRack M15 Biocision BCS-125
Nuclease free water Fisher SH30538FS Manufactured by Hyclone
QIAamp Viral RNA Mini Kit Qiagen 52906
Simport PCR 8 Strip Tubes, Blue (Flat Cap) Daigger EF3647BX
SuperScript III one-step RT-PCR system Life Technologies/Invitrogen 12574035
Phusion Hot-start II DNA polymerase Fisher F-549L 
PCR Nucleotide Mix Roche 4638956001
Agarose, high gel strength Fisher 50-213-128
TAE 10X Life Technologies/Invitrogen AM9869
Promega 1kb DNA ladder Fisher PRG5711 Manufactured by Promega
Sybr Safe DNA Gel Stain, 10000x Life Technologies/Invitrogen S33102
Wizard SV Gel and PCR Clean-Up System Promega A9282
Razor blades, single-edged Fisher 12-640 Manufactured by Surgical Design
Thermocycler, PTC-200 MJ Research
Microbiology & Cloning reagents
LB Agar, Miller Fisher BP1425-2
LB Broth, Lennox Fisher BP1427-2
Sterile 100mm x 15mm polystyrene petri dishes Fisher 08-757-12
Ampicillin sodium salt Sigma-Aldrich A9518-5G
Falcon 14ml Polypropylene round-bottom tubes BD Biosciences 352059
NgoMIV restriction endonuclease New England BioLabs R0564L
BclI restriction endonuclease New England BioLabs R0160L
HpaI restriction endonuclease New England BioLabs R0105L
T4 DNA Ligase, 5U/μL Roche 10799009001
JM109 competent cells, >10^8 cfu/μg  Promega L2001
PureYield plasmid miniprep system Promega  A1222
Safe Imager 2.0 Blue Light Transilluminator Invitrogen G6600
Microfuge 18 centrifuge Beckman Coulter 367160
Cell culture reagents
Amphyl cleaner/disinfectant Fisher 22-030-394
Fugene HD, 1 mL VWR PAE2311 Manufactured by Promega
Hexadimethrine bromide (Polybrene) Sigma-Aldrich H9268-5G
Costar Plates, 6-well, flat Fisher 07-200-83 Manufactured by Corning Life
Costar Plates, 24-well, flat Fisher 07-200-84 Manufactured by Corning Life
Costar Plates, 96-well, round Fisher 07-200-95 Manufactured by Corning Life
Flasks, Corning filter top/canted neck, 75 cm^2 Fisher 10-126-37
Flasks, Corning filter top/canted neck, 150 cm^2 Fisher 10-126-34 Manufactured by Corning Life
Conical Tubes, 50ml, blue cap Fisher 14-432-22 Manufactured by BD Biosciences
Conical Tubes, 15ml, blue cap Fisher 14-959-70C   Manufactured by BD Biosciences
Trypsin-EDTA Fisher MT25052CI Manufactured by Mediatech
RPMI, 500 ml Life Technologies/Invitrogen 11875-119
DMEM, 500 ml Life Technologies/Invitrogen 11965-118
Penicillin/Streptomycin/Glutamine, 100X Life Technologies/Invitrogen 10378-016
PBS with magnesium and calcium, 500ml Life Technologies/Invitrogen 14040-133
PBS without magnesium and calcium Life Technologies/Invitrogen 20012-050
Sarstedt tubes, assorted colors Sarstedt 72.694.996
Reservoir Trays for Multichannel, 55ml Fisher 13-681-501
DEAE-Dextran Fisher NC9691007
Corning 96 well clear V bottom tissue culture treated microplate Fisher 07-200-96 Manufactured by Corning Life
HEPES, 1M Buffer Solution Life Technologies/Invitrogen 15630-080
FBS, Defined, 500 ml Fisher SH30070 03
X-gal VWR PAV3941 Manufactured by Promega
Glutaraldehyde, Grade II, 25% in H2O Sigma-Aldrich G6257-100ML
1M Magnesium chloride solution Sigma-Aldrich M1028-100ML
Formaldehyde solution, for molecular biology, 36.5% Sigma-Aldrich F8775-500ML
Potassium hexacyanoferrate(II) trihydrate Sigma-Aldrich P9387-100G
Potassium hexacyanoferrate(III) Sigma-Aldrich P8131-100G
Allegra X15-R centrifuge Beckman Coulter 392932
TC10 automated cell counter Bio-Rad 1450001
VistaVision inverted microscope VWR
Reverse-Transcriptase Quantification Assay reagents
dTTP, [α-33P]- 3000Ci/mmol, 10mCi/ml, 1 mCi Perkin-Elmer NEG605H001MC
1M Tris-Cl, pH 8.0 Life Technologies/Invitrogen 15568025 Must be adjusted to pH 7.8 with KOH
2M potassium chloride (KCl) Life Technologies/Invitrogen AM9640G Adjust to 1M solution
0.5M EDTA Life Technologies/Invitrogen 15575-020
Nonidet P40 Roche 11333941103
Polyadenylic acid (Poly rA) potassium salt  Midland Reagent Co. P-3001
Oligo d(T) primer  Life Technologies/Invitrogen 18418-012
Dithiothreitol (DTT) Sigma-Aldrich 43815-1G
SR, Super Resolution Phosphor Screen, Small Perkin-Elmer 7001485
Corning Costar Thermowell 96 well plate model (M) Polycarbonate Fisher 07-200-245 Manufactured by Corning Life
Corning 96 Well Microplate Aluminum Sealing Tape, Nonsterile Fisher 07-200-684 Manufactured by Corning Life
DE-81 anion exchange paper Whatman 3658-915
Trisodium citrate dihydrate Sigma-Aldrich S1804-1KG
Sodium Chloride Fisher S671-3
Autoradiography cassette Fisher FB-CA-810
Cyclone storage phoshpor screen Packard

Referências

  1. Borrow, P., Lewicki, H., Hahn, B. H., Shaw, G. M., Oldstone, M. B. Virus-specific CD8+ cytotoxic T-lymphocyte activity associated with control of viremia in primary human immunodeficiency virus type 1 infection. Journal of virology. 68, 6103-6110 (1994).
  2. Koup, R. A., et al. Temporal association of cellular immune responses with the initial control of viremia in primary human immunodeficiency virus type 1 syndrome. Journal of virology. 68, 4650-4655 (1994).
  3. Jin, X., et al. Dramatic rise in plasma viremia after CD8(+) T cell depletion in simian immunodeficiency virus-infected macaques. The Journal of experimental medicine. 189, 991-998 (1999).
  4. Schmitz, J. E., et al. Control of viremia in simian immunodeficiency virus infection by CD8+ lymphocytes. Science. 283, 857-860 (1999).
  5. Brumme, Z. L., et al. Marked epitope- and allele-specific differences in rates of mutation in human immunodeficiency type 1 (HIV-1) Gag, Pol, and Nef cytotoxic T-lymphocyte epitopes in acute/early HIV-1 infection. Journal of virology. 82, 9216-9227 (2008).
  6. Leslie, A. J., et al. HIV evolution: CTL escape mutation and reversion after transmission. Nature medicine. 10, 282-289 (2004).
  7. Phillips, R. E., et al. Human immunodeficiency virus genetic variation that can escape cytotoxic T cell recognition. Nature. 354, 453-459 (1991).
  8. Price, D. A., et al. Positive selection of HIV-1 cytotoxic T lymphocyte escape variants during primary infection. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 94, 1890-1895 (1997).
  9. Goulder, P. J., et al. Late escape from an immunodominant cytotoxic T-lymphocyte response associated with progression to AIDS. Nature. 3, 212-217 (1997).
  10. Tang, J., et al. Favorable and unfavorable HLA class I alleles and haplotypes in Zambians predominantly infected with clade C human immunodeficiency virus type 1. Journal of virology. 76, 8276-8284 (2002).
  11. Prentice, H. A., et al. HLA-B*57 versus HLA-B*81 in HIV-1 infection: slow and steady wins the race. Journal of virology. 87, 4043-4051 (2013).
  12. Migueles, S. A., et al. HLA B*5701 is highly associated with restriction of virus replication in a subgroup of HIV-infected long term nonprogressors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 97, 2709-2714 (2000).
  13. Leslie, A., et al. Additive contribution of HLA class I alleles in the immune control of HIV-1 infection. Journal of virology. 84, 9879-9888 (2010).
  14. Kaslow, R. A., et al. Influence of combinations of human major histocompatibility complex genes on the course of HIV-1 infection. Nature medicine. 2, 405-411 (1996).
  15. Altfeld, M., et al. Influence of HLA-B57 on clinical presentation and viral control during acute HIV-1 infection. AIDS. 17, 2581-2591 (2003).
  16. Kiepiela, P., et al. CD8+ T-cell responses to different HIV proteins have discordant associations with viral load. Nature medicine. 13, 46-53 (2007).
  17. Mothe, B., et al. Definition of the viral targets of protective HIV-1-specific T cell responses. Journal of translational medicine. 9, 208 (2011).
  18. Peyerl, F. W., Barouch, D. H., Letvin, N. L. Structural constraints on viral escape from HIV- and SIV-specific cytotoxic T-lymphocytes. Viral immunology. 17, 144-151 (2004).
  19. Rolland, M., et al. Broad and Gag-biased HIV-1 epitope repertoires are associated with lower viral loads. PloS one. 3, e1424 (2008).
  20. Wagner, R., et al. Molecular and functional analysis of a conserved CTL epitope in HIV-1 p24 recognized from a long-term nonprogressor: constraints on immune escape associated with targeting a sequence essential for viral replication. J Immunol. 162, 3727-3734 (1999).
  21. Wang, Y. E., et al. Protective HLA class I alleles that restrict acute-phase CD8+ T-cell responses are associated with viral escape mutations located in highly conserved regions of human immunodeficiency virus type 1. Journal of virology. 83, 1845-1855 (2009).
  22. Chopera, D. R., et al. Transmission of HIV-1 CTL escape variants provides HLA-mismatched recipients with a survival advantage. PLoS pathogens. 4, e1000033 (2008).
  23. Crawford, H., et al. Evolution of HLA-B*5703 HIV-1 escape mutations in HLA-B*5703-positive individuals and their transmission recipients. The Journal of experimental medicine. 206, 909-921 (2009).
  24. Boutwell, C. L., et al. Frequent and variable cytotoxic-T-lymphocyte escape-associated fitness costs in the human immunodeficiency virus type 1 subtype B Gag proteins. Journal of virology. 87, 3952-3965 (2013).
  25. Brockman, M. A., et al. Escape and compensation from early HLA-B57-mediated cytotoxic T-lymphocyte pressure on human immunodeficiency virus type 1 Gag alter capsid interactions with cyclophilin A. Journal of virology. 81, 12608-12618 (2007).
  26. Crawford, H., et al. Compensatory mutation partially restores fitness and delays reversion of escape mutation within the immunodominant HLA-B*5703-restricted Gag epitope in chronic human immunodeficiency virus type 1 infection. Journal of virology. 81, 8346-8351 (2007).
  27. Martinez-Picado, J., et al. Fitness cost of escape mutations in p24 Gag in association with control of human immunodeficiency virus type 1. Journal of virology. 80, 3617-3623 (2006).
  28. Schneidewind, A., et al. Escape from the dominant HLA-B27-restricted cytotoxic T-lymphocyte response in Gag is associated with a dramatic reduction in human immunodeficiency virus type 1 replication. Journal of virology. 81, 12382-12393 (2007).
  29. Wright, J. K., et al. Impact of HLA-B*81-associated mutations in HIV-1 Gag on viral replication capacity. Journal of virology. 86, 3193-3199 (2012).
  30. Kawashima, Y., et al. Adaptation of HIV-1 to human leukocyte antigen class I. Nature. 458, 641-645 (2009).
  31. Goepfert, P. A., et al. Transmission of HIV-1 Gag immune escape mutations is associated with reduced viral load in linked recipients. The Journal of experimental medicine. 205, 1009-1017 (2008).
  32. Brockman, M. A., et al. Early selection in Gag by protective HLA alleles contributes to reduced HIV-1 replication capacity that may be largely compensated for in chronic infection. Journal of virology. 84, 11937-11949 (2010).
  33. Huang, K. H., et al. Progression to AIDS in South Africa is associated with both reverting and compensatory viral mutations. PloS one. 6, e19018 (2011).
  34. Wright, J. K., et al. Gag-protease-mediated replication capacity in HIV-1 subtype C chronic infection: associations with HLA type and clinical parameters. Journal of virology. 84, 10820-10831 (2010).
  35. Wright, J. K., et al. Influence of Gag-protease-mediated replication capacity on disease progression in individuals recently infected with HIV-1 subtype. C. Journal of virology. 85, 3996-4006 (2011).
  36. Adachi, A., et al. Production of acquired immunodeficiency syndrome-associated retrovirus in human and nonhuman cells transfected with an infectious molecular clone. Journal of virology. 59, 284-291 (1986).
  37. Brockman, M. A., Tanzi, G. O., Walker, B. D., Allen, T. M. Use of a novel GFP reporter cell line to examine replication capacity of CXCR4- and CCR5-tropic HIV-1 by flow cytometry. Journal of virology. 131, 134-142 (2006).
  38. Ndung’u, T., Renjifo, B., Essex, M. Construction and analysis of an infectious human Immunodeficiency virus type 1 subtype C molecular clone. Journal of virology. 75, 4964-4972 (2001).
  39. Prince, J. L., et al. Role of transmitted Gag CTL polymorphisms in defining replicative capacity and early HIV-1 pathogenesis. PLoS pathogens. 8, e1003041 (2012).
  40. Ostrowski, M. A., Chun, T. W., Cheseboro, B., Stanley, S. K., Tremblay, M., et al. Detection assays for HIV proteins. Current protocols in immunology / edited by John E. Coligan … [et al.]. 12 (Unit 12 15), .
  41. Horton, R. M., Hunt, H. D., Ho, S. N., Pullen, J. K., Pease, L. R. Engineering hybrid genes without the use of restriction enzymes: gene splicing by overlap extension. Gene. 77, 61-68 (1989).
  42. Inoue, H., Nojima, H., Okayama, H. High efficiency transformation of Escherichia coli with plasmids. Gene. 96, 23-28 (1990).
  43. Bichara, M., Pinet, I., Schumacher, S., Fuchs, R. P. Mechanisms of dinucleotide repeat instability in Escherichia coli. Genética. 154, 533-542 (2000).
  44. Ackerson, B., Rey, O., Canon, J., Krogstad, P. Cells with high cyclophilin A content support replication of human immunodeficiency virus type 1 Gag mutants with decreased ability to incorporate cyclophilin A. Journal of virology. 72, 303-308 (1998).
  45. Dudley, D. M., et al. A novel yeast-based recombination method to clone and propagate diverse HIV-1 isolates. BioTechniques. 46, 458-467 (2009).
  46. Ganser-Pornillos, B. K., von Schwedler, U. K., Stray, K. M., Aiken, C., Sundquist, W. I. Assembly properties of the human immunodeficiency virus type 1 CA protein. Journal of virology. 78, 2545-2552 (2004).
  47. Forshey, B. M., von Schwedler, U., Sundquist, W. I., Aiken, C. Formation of a human immunodeficiency virus type 1 core of optimal stability is crucial for viral replication. Journal of virology. 76, 5667-5677 (2002).
  48. Gottlinger, H. G., Dorfman, T., Sodroski, J. G., Haseltine, W. A. Effect of mutations affecting the p6 gag protein on human immunodeficiency virus particle release. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 88, 3195-3199 (1991).
check_url/pt/51506?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Claiborne, D. T., Prince, J. L., Hunter, E. A Restriction Enzyme Based Cloning Method to Assess the In vitro Replication Capacity of HIV-1 Subtype C Gag-MJ4 Chimeric Viruses. J. Vis. Exp. (90), e51506, doi:10.3791/51506 (2014).

View Video