Summary

Évaluation de la régénération vasculaire dans le SNC Utilisation de la rétine de souris

Published: June 23, 2014
doi:

Summary

La rétine de rongeur a depuis longtemps été reconnue comme une fenêtre accessible au cerveau. Dans ce document technique que nous fournissons un protocole qui utilise le modèle de souris de la rétinopathie induite par l'oxygène d'étudier les mécanismes qui conduisent à l'échec de la régénération vasculaire dans le système nerveux central après lésion ischémique. Le système décrit peut également être mise à profit pour explorer des stratégies pour favoriser la repousse des vaisseaux sanguins fonctionnels au sein de la rétine et du système nerveux central.

Abstract

La rétine de rongeurs est peut-être le système de mammifère la plus accessible qui pour enquêter interaction neurovasculaire dans le système nerveux central (SNC). Il est de plus en plus reconnu que plusieurs maladies neurodégénératives telles que la maladie d'Alzheimer, la sclérose en plaques, sclérose en plaques et éléments présents latérale amyotrophique de compromis vasculaire. En outre, les causes les plus importantes de cécité chez les populations pédiatriques et en âge de travailler (rétinopathie du prématuré et de la rétinopathie diabétique, respectivement) sont caractérisées par une dégénérescence vasculaire et l'échec de la repousse vasculaire physiologique. Le but de ce document technique est de fournir un protocole détaillé pour étudier la régénération du SNC vasculaire dans la rétine. Le procédé peut être utilisé pour élucider les mécanismes moléculaires qui conduisent à une défaillance de la croissance vasculaire après une lésion ischémique. En outre, les modalités thérapeutiques potentiels pour accélérer et restaurer plexus vasculaires sains peuvent être explorées. Les résultats obtained en utilisant l'approche décrite peut fournir des pistes thérapeutiques pour les rétinopathies ischémiques telles que celle du diabète ou de prématurité et de bénéficier éventuellement d'autres troubles vasculaires du SNC.

Introduction

Tout au long de développement du système nerveux central, des nerfs, des cellules immunitaires et des vaisseaux sanguins établir des réseaux remarquablement couplés pour assurer une perfusion tissulaire suffisante et permettre la transmission de l'information sensorielle 5.1. La ventilation des résultats des systèmes vasculaires de l'oxygénation insuffisante des tissus et de l'offre de compromis métabolique et est de plus en plus reconnu comme un facteur important dans la pathogenèse des maladies neurodégénératives 6. Abandon vasculaire et la détérioration de l'unité neurovasculaire dans le cerveau, par exemple, est associé à la démence vasculaire, lésions vasculaires de la substance blanche du cerveau 7 et la maladie d'Alzheimer avec une sténose des artérioles et des petits vaisseaux 8. En outre, la fonction vasculaire altération de la barrière est pensé pour contribuer sclérose en plaques 9 et la sclérose latérale amyotrophique 10.

Un intérêt direct pour le modèle de la rétine décrite dans ce protocole, aveuglantedes maladies telles que la rétinopathie diabétique et la rétinopathie de la 11 prématurité 12, 13 sont caractérisés par une phase de dégénérescence vasculaire précoce. La contrainte ischémique qui a suivi sur la rétine neuro-vasculaire déclenche une deuxième phase de la néovascularisation excessive et pathologique qui provient probablement comme une réponse compensatoire de rétablir la oxygène et de l'énergie 14-16. Une stratégie intéressante pour surmonter le stress ischémique qui est au cœur de la progression de la maladie est de rétablir les réseaux vasculaires fonctionnelles en particulier dans les zones ischémiques du neuro-rétine (figures 2 et 3). Provoquer une réponse angiogénique contrôlée peut apparaître comme contre-intuitif pour une condition dans laquelle les traitements anti-angiogéniques tels que des anti-VEGF sont considérés comme des traitements adaptés. Pourtant, la preuve de la validité de cette approche est de montage. Par exemple, l'amélioration de la repousse vasculaire "physiologique-like" dans ischemrétinopathies ic a été élégamment démontré par l'introduction de précurseurs de cellules endothéliales 17, l'inhibition de Müller VEGF exprimés cellule-régulation négative induite par d'autres facteurs angiogéniques 18, l'injection de progéniteurs myéloïdes 19, l'inhibition de la NADPH oxydase induite par l'apoptose 20, ce qui augmente l'alimentation ω-3 gras polyinsaturé l'apport d'acide 21, le traitement avec un fragment carboxy-terminal de tryptophane 22 ARNt synthétase, et l'administration directe de VEGF ou le FGF-2, pour la protection des cellules gliales 23. De plus, nous avons démontré que la modulation de signaux de guidage neuronales classiques tels que Sémaphorines ou Nétrines dans les rétinopathies ischémiques vasculaire accélère la régénération des vaisseaux sains à l'intérieur de la rétine et réduit l'angiogenèse pathologique 24, 25 en conséquence. De pertinence clinique directe, plusieurs des études sur les animaux mentionnés ci-dessus fournissent des preuves que la promotion de re vasculairegénération pendant la phase ischémique précoce des rétinopathies peut réduire considérablement menaçant la vue néovascularisation pré-rétinienne 19, 23, 24, 26, probablement grâce à la réduction de la charge ischémique.

L'élaboration de stratégies thérapeutiques qui stimulent la régénération des vaisseaux fonctionnels demeure un défi important pour les biologistes vasculaires. Ici, nous décrivons un système expérimental qui utilise le modèle de souris de rétinopathie induite par l'oxygène (OIR) pour explorer des stratégies pour moduler la repousse vasculaire dans la rétine. Développé par Smith et al., En 1994 27, ce modèle sert de proxy pour les rétinopathies prolifératives humaines et consiste à exposer les petits P7 de souris à 75% d'O 2 jusqu'à P12, puis réintroduire les chiots à la salle ambiante O 2-tension (Figure 1). Ce paradigme imite vaguement un scénario où un enfant prématuré est ventiléavec O 2. L'exposition des souriceaux à hyperoxie provoque la dégénérescence des capillaires rétiniens et microvasculaire, et donne une zone de reproduction de vaso-oblitération (VO) généralement évalué à la sortie de O 2 à P12, même si la superficie maximale de VO est atteinte à 48 h (P9) après exposition à O 2 28. Chez la souris, les zones de VO avasculaires régénérer spontanément au cours de la semaine suivant la réintroduction de l'air ambiant et, éventuellement, des zones VO sont complètement re-vascularisées (figure 2). Réintroduction de l'air ambiant de souris soumises à OIR provoque également la néovascularisation pré-rétinienne (NV) (maximale à P17) qui est généralement évaluée afin de déterminer l'efficacité des paradigmes de traitement anti-angiogéniques. Dans sa forme la plus pure, le modèle de ROC est un outil hautement reproductible et quantifiable pour évaluer la dégénérescence vasculaire induite par l'oxygène et de déterminer l'étendue de la destruction néovascularisation pré-rétinienne 29-31.

<p class = "jove_content"> Divers paradigmes de traitement exploratoires qui modulent la régénération du SNC vasculaire peut être étudiée en utilisant le modèle de ROC y compris l'utilisation de composés pharmacologiques, thérapie génique, une délétion du gène et plus. La propension d'une approche donné pour influencer la repousse vasculaire est évaluée par étapes dans la fenêtre entre P12 (VO maximale après la sortie de l'hyperoxie) et P17 (de NV maximale). Évaluation des résultats du traitement sur ​​NV pathologique peut être rapidement et facilement déterminée en parallèle et a été décrite en détail par Stahl et ses collègues 30, 31. Ici, nous fournissons une procédure simple étape par étape pour étudier la modulation de revascularisation physiologique dans la rétine neurale par des composés pharmacologiques, thérapeutiques potentiels, vecteurs viraux ou d'étudier l'influence de gènes candidats chez des souris transgéniques ou knock-out.

Protocol

Déclaration éthique: Tout l'expérimentation animale est conforme aux directives de protection des animaux établies par l'Association pour la recherche en vision et en ophtalmologie (ARVO) Déclaration pour l'utilisation d'animaux dans ophtalmique et Vision Research et le Conseil canadien de protection des animaux. 1. Oxygène induit la rétinopathie (OIR) Enregistrer la date de naissance de souriceaux que P0. Enregistrer tous les poid…

Representative Results

Le modèle de ROC est largement utilisée pour étudier la dégénérescence vasculaire induite par l'oxygène et l'ischémie induite par la néovascularisation pathologique dans la rétine et a joué un rôle dans le développement de traitements anti-angiogéniques actuellement utilisés pour les maladies oculaires 27, 29, 30. Les résultats obtenus à l'aide de ce modèle peuvent être plus ou moins extrapolés à rétinopathies ischémiques telles que la rétinopathie diabétique proliférante…

Discussion

Quel est le moyen le plus efficace pour stimuler la croissance de nouveaux vaisseaux sains dans les tissus nerveux ischémique? Est-il thérapeutique valable pour intervenir et accélérer naturels repousse vasculaire? Dans les pathologies neuro-ischémiques telles que les rétinopathies ischémiques ou accident vasculaire cérébral, la dégénérescence vasculaire est associée à la fonction neuronale réduite 35-38. Par conséquent, pour contrer blessure précoce, rétablir la micro-circulation régionale…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

PS titulaire d'une chaire de recherche du Canada en biologie cellulaire de la rétine et de la bourse de nouveau chercheur Institut de recherche Alcon. Ce travail a été soutenu par des subventions des Instituts de recherche en santé du Canada (221 478), l'Association canadienne du diabète (OG-3-11-3329-PS), les sciences naturelles et en génie du Canada (418 637) et La Fondation lutte contre la cécité Canada. Appui a été fourni par le Réseau de Recherche en Santé de la Vision du Québec.

Materials

C57Bl/6 mice ((Other strains may be used; angiogenic response varies from one strain to the other)
CD1 nursing mothers Vendor of choice
Operating Scissors straight World Precision Instruments 14192
Dissecting Scissors straight World Precision Instruments 14393
Vannas Eye Scissors Harvard Apparatus 72-8483
Iris Forceps, curved, serrated World Precision Instruments 15915
Brushes 362R size 0 Dynasty
Dumont Forceps #3; straight World Precision Instruments 500338
Surgical Blade, size 10 Bard-Parker 371110
Rhodamine Griffonia (Bandeiraea) Simplicifolia Lectin I Vector Laboratories, Inc RL-1102
Microscope slides VWR 16004-368
Fluoromount G Electron Microscopy Sciences 17984-25
Zeiss Axio Observer Z1 Inverted Phase and Fluorescence Microscope Zeiss
Leica MZ9.5 Stereomicroscope Leica
Fluorescein isothicyanate-dextran, 70000 Sigma-Aldrich 46945

Referências

  1. Carmeliet, P., Tessier-Lavigne, M. Common mechanisms of nerve and blood vessel wiring. Nature. 436, 193-200 (2005).
  2. Eichmann, A., Thomas, J. L. Molecular Parallels between Neural and Vascular Development. Cold Spring Harb Perspect Med. 3, (2012).
  3. Larrivee, B., Freitas, C., Suchting, S., Brunet, I., Eichmann, A. Guidance of vascular development: lessons from the nervous system. Circ Res. 104, 428-441 (2009).
  4. Stefater Iii, J. A., et al. Regulation of angiogenesis by a non-canonical Wnt-Flt1 pathway in myeloid cells. Nature. 474, 511-515 (2011).
  5. Checchin, D., Sennlaub, F., Levavasseur, E., Leduc, M., Chemtob, S. Potential role of microglia in retinal blood vessel formation. Invest Ophthalmol Vis Sci. 47, 3595-3602 (2006).
  6. Quaegebeur, A., Lange, C., Carmeliet, P. The neurovascular link in health and disease: molecular mechanisms and therapeutic implications. Neuron. 71, 406-424 (2011).
  7. Yamamoto, Y., Craggs, L., Baumann, M., Kalimo, H., Kalaria, R. N. Review: molecular genetics and pathology of hereditary small vessel diseases of the brain. Neuropathol Appl Neurobiol. 37, 94-113 (2011).
  8. Brun, A., Englund, E. A white matter disorder in dementia of the Alzheimer type: a pathoanatomical study. Ann Neurol. 19, 253-262 (1986).
  9. Prat, A., et al. Migration of multiple sclerosis lymphocytes through brain endothelium. Arch Neurol. 59, 391-397 (2002).
  10. Rule, R. R., Schuff, N., Miller, R. G., Weiner, M. W. Gray matter perfusion correlates with disease severity in ALS. Neurology. 74, 821-827 (2010).
  11. Antonetti, D. A., Klein, R., Gardner, T. W. Diabetic retinopathy. N Engl J Med. 366, 1227-1239 (2012).
  12. Hartnett, M. E., Penn, J. S. Mechanisms and management of retinopathy of prematurity. N Engl J Med. 367, 2515-2526 (2012).
  13. Sapieha, P., et al. Retinopathy of prematurity: understanding ischemic retinal vasculopathies at an extreme of life. J Clin Invest. 120, 3022-3032 (2010).
  14. Chen, J., Smith, L. Retinopathy of prematurity. Angiogenesis. 10, 133-140 (2007).
  15. Cheung, N. Diabetic retinopathy and systemic vascular complications. Progress in Retinal and Eye Research. 27, 161-176 (2008).
  16. Smith, L. E. Through the eyes of a child: understanding retinopathy through ROP the Friedenwald lecture. Invest Ophthalmol Vis Sci. 49, 5177-5182 (2008).
  17. Caballero, S., et al. Ischemic vascular damage can be repaired by healthy, but not diabetic, endothelial progenitor cells. Diabetes. 56, 960-967 (2007).
  18. Wang, H., et al. VEGF-mediated STAT3 activation inhibits retinal vascularization by down-regulating local erythropoietin expression. Am J Pathol. 180, 1243-1253 (2012).
  19. Ritter, M. R., et al. Myeloid progenitors differentiate into microglia and promote vascular repair in a model of ischemic retinopathy. J Clin Invest. 116, 3266-3276 (2006).
  20. Saito, Y., Geisen, P., Uppal, A., Hartnett, M. E. Inhibition of NAD(P)H oxidase reduces apoptosis and avascular retina in an animal model of retinopathy of prematurity. Mol Vis. 13, 840-853 (2007).
  21. Connor, K. M., et al. Increased dietary intake of omega-3-polyunsaturated fatty acids reduces pathological retinal angiogenesis. Nat Med. 13, 868-873 (2007).
  22. Banin, E., et al. T2-TrpRS inhibits preretinal neovascularization and enhances physiological vascular regrowth in OIR as assessed by a new method of quantification. Invest Ophthalmol Vis Sci. 47, 2125-2134 (2006).
  23. Dorrell, M. I., et al. Maintaining retinal astrocytes normalizes revascularization and prevents vascular pathology associated with oxygen-induced retinopathy. Glia. 58, 43-54 (2010).
  24. Joyal, J. -. S., et al. Ischemic neurons prevent vascular regeneration of neural tissue by secreting semaphorin 3A. Blood. 117, 6024-6035 (2011).
  25. Binet, F., et al. Neuronal ER Stress Impedes Myeloid-Cell-Induced Vascular Regeneration through IRE1alpha Degradation of Netrin-1. Cell Metab. 17, 353-371 (2013).
  26. Fukushima, Y., et al. Sema3E-PlexinD1 signaling selectively suppresses disoriented angiogenesis in ischemic retinopathy in mice. J Clin Invest. 121, 1974-1985 (2011).
  27. Smith, L. E., et al. Oxygen-induced retinopathy in the mouse. Invest Ophthalmol Vis Sci. 35, 101-111 (1994).
  28. Lange, C., et al. Kinetics of retinal vaso-obliteration and neovascularisation in the oxygen-induced retinopathy (OIR) mouse model. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 247, 1205-1211 (2009).
  29. Connor, K. M., et al. Quantification of oxygen-induced retinopathy in the mouse: a model of vessel loss, vessel regrowth and pathological angiogenesis. Nature Protocols. 4, 1565-1573 (2009).
  30. Stahl, A., et al. The mouse retina as an angiogenesis model. Invest Ophthalmol Vis Sci. 51, 2813-2826 (2010).
  31. Stahl, A., et al. Computer-aided quantification of retinal neovascularization. Angiogenesis. 12, 297-301 (2009).
  32. Stahl, A., et al. Postnatal Weight Gain Modifies Severity and Functional Outcome of Oxygen-Induced Proliferative Retinopathy. Am J Pathol. 177, 2715-2723 (2010).
  33. Cerani, A., et al. Neuron-Derived Semaphorin 3A is an Early Inducer of Vascular Permeability in Diabetic Retinopathy via Neuropilin-1. Cell Metabolism. 18, 505-518 (2013).
  34. Sapieha, P. Eyeing central neurons in vascular growth and reparative angiogenesis. Blood. 120, 2182-2194 (2012).
  35. Dorfman, A., Dembinska, O., Chemtob, S., Lachapelle, P. Early manifestations of postnatal hyperoxia on the retinal structure and function of the neonatal rat. Invest Ophthalmol Vis Sci. 49, 458-466 (2008).
  36. Dorfman, A. L., Joly, S., Hardy, P., Chemtob, S., Lachapelle, P. The effect of oxygen and light on the structure and function of the neonatal rat retina. Doc Ophthalmol. 118, 37-54 (2009).
  37. Chopp, M., Zhang, Z. G., Jiang, Q. Neurogenesis, angiogenesis, and MRI indices of functional recovery from stroke. Stroke. 38, 827-831 (2007).
  38. Li, L., et al. Angiogenesis and improved cerebral blood flow in the ischemic boundary area detected by MRI after administration of sildenafil to rats with embolic stroke. Brain Res. 1132, 185-192 (2007).
  39. Robinson, R., Barathi, V. A., Chaurasia, S. S., Wong, T. Y., Kern, T. S. Update on animal models of diabetic retinopathy: from molecular approaches to mice and higher mammals. Dis Model Mech. 5, 444-456 (2012).
  40. Chia, R., Achilli, F., Festing, M. F., Fisher, E. M. The origins and uses of mouse outbred stocks. Nat Genet. 37, 1181-1186 (2005).
  41. Jenuth, J. P., Peterson, A. C., Shoubridge, E. A. Tissue-specific selection for different mtDNA genotypes in heteroplasmic mice. Nat Genet. 16, 93-95 (1997).
  42. Mattapallil, M. J., et al. The Rd8 mutation of the Crb1 gene is present in vendor lines of C57BL/6N mice and embryonic stem cells, and confounds ocular induced mutant phenotypes. Investigative ophthalmolog., & visual science. 53, 2921-2927 (2012).
check_url/pt/51351?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Miloudi, K., Dejda, A., Binet, F., Lapalme, E., Cerani, A., Sapieha, P. Assessment of Vascular Regeneration in the CNS Using the Mouse Retina. J. Vis. Exp. (88), e51351, doi:10.3791/51351 (2014).

View Video