Summary

성인 전체 마운트 준비 Drosophila 복부 신경 코드

Published: June 04, 2011
doi:

Summary

<em> 생체내에</em성인> 해부<em> Drosophila</em> 복부 신경 코드 (VNC)이 증명됩니다. 이 특별한 절개 방법은 고해상도 이미징을위한 형광 염료와 함께 거대한 섬유 뉴런의 후속 라벨을 허용 VNC 거의 손상을 초래합니다.

Abstract

뉴런의 axonal와 돌기 형태를 분석하기 위해서는의 연결 구조의 정확한 라벨을 얻기 위해 필수적입니다. 노 조직 손상이 거의 잘 레이블 샘플을 준비하는 것은 그러므로 돌연변이 변이의 식별을 허용, 우리는 세포 형태를 분석하고 서로에게 개별 샘플을 비교할 수 있습니다.

시연 절개 방법에서 신경 시스템은 성인 플라이 내부에 대부분 남아있다. 지느러미 절개를 통해 복부와 흉부 열리고 있으며, 대부분의 내부 장기가 제거됩니다. GF 셀 본문과 dendrites을 포함하고있는 두뇌 손상 머리에이 남아있는 동안 복부 신경 코드 (VNC)와 거대한 섬유 (GFS) 1의 큰 axons를 포함하는 자궁 결합 (CVC)의 단지 등의 측면이 노출 . 이 준비에서 VNC 대부분의 신경들은 근육에 연결되어 유지됩니다.

해부 다음, 형광 염료와 함께 거대한 섬유 (GF)의 세포내 작성이 증명됩니다. CVC에서는 GF의 axons는 등의 표면에 위치하고 있으며 따라서 차등 간섭 대비 (DIC) 광학 장치와 현미경으로 쉽게 시각하실 수 있습니다. 이것은이 사이트에서 염료와 GF의 axons의 주입은 VNC에서 axons과 단말기를 포함한 전체 GF 레이블을 수 있습니다. 이 방법은 신경이 epifluorescent 현미경으로 기입 후 즉시 군데 수 있도록 GFS의 안정적이고 강력한 얼룩을 초래합니다. 또는 형광 신호는 높은 해상도 공촛점 현미경에 적합한 표준 immunohistochemistry 절차 3을 사용 강화 수 있습니다.

Protocol

1. 복부 신경 코드의 해부 GF의 필링 해부와 염료는 실온에서 수행할 수 있습니다. 모든 해부는 추운 단계 (4 ° C) 호수가 세포 신진 대사를 느리게하고 더 이상 신경이 살아 유지하는 데 사용해야합니다. CO 2와 함께 성인 파리 (4 일간 이상)을 마취하거나 그들이 움직일 때까지 얼음에 그들을 진정. 얼음 Anesthetizing 것은 더 많은 시간을 (최대 30 분)이 필요합니다?…

Discussion

신경 계통은 플라이 본체에서 추출하지 않고 해부를하실 수 있습니다. 이 두 장점을 가지고 먼저, 해부 신경 시스템에 약간의 손상을 초래하고, 둘째, 대부분의 신경은 근육과 감각 기관에 붙어있어. 로 설명 절개를, 공연하는 것은 GFS의 정직 염료 라벨에 대한 샘플을 준비합니다. 편리, GFS에 postsynaptic motoneurons은 근육에 붙어있어. Axons 따라서, 더 이상 신경이 살아 유지 피해가 있습니다. 또한, 신?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

설명이 프로젝트는 내용이 전적으로 저자의 책임이며 반드시 아동 보건 인간 발달이나 국립 연구소의 공식 견해를 대변하지 않는 태그를 아동 보건 인간 발달의 국립 연구소에서 부여 번호 R01HD050725 지원했습니다 보건 국립 연구소. 우리는 원고와 동영상을 자신의 입력을위한 Godenschwege 실험실뿐만 아니라 바바라 Schreader의 회원 감사합니다.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Sylgard 184 Silicone Elastomer Kit Dow Corning    
Dissection Microscope AmScope SM-2TZ  
Vannas Scissors Superfine Academic Instruments VS1023  
Dumont Forceps Dumontstar 55 Fine Science Tools 11295-51  
Austerlitz Insect pins Fine Science Tools 26002-10 Ø 0.1mm
Borosilicate Glass Electrodes World Precision Instruments 1B100F-4  
Vertical Pipette Puller 700c David Kopf Instruments Model 700C  
Lucifer Yellow CH dilithium salt Sigma L0259 1% in H2O
Fixed Stage Upright Microscope & Camera Nikon FN-1 & DS-U2 Camera  
Plan Fluor 10X Air Objective Nikon CFI Plan Fluor 10X NA 0.3 WD 16mm  
Fluor 40X water dipping Objective Nikon CFI Fluor 40X W NA 0.80 WD 2.0mm  
3D hydraulic Micromanipulator Narishige International Model MW0-3  
Amplifier Getting Instruments, Inc. Model 5A  

Referências

  1. Power, M. E. The thoracico-abdominal nervous system of an adult insect Drosophila melanogaster. J. Comp. Neurol. 88, 347-409 (1948).
  2. Allen, M. J., Godenschwege, T. A., Tanouye, T. A., Phelan, P. Making an escape: development and function of the Drosophila giant fibre system. Semin. Cell Dev. Biol. 17, 31-41 (2006).
  3. Boerner, J., Duch, C. Average shape standard atlas for the adult Drosophila ventral nerve cord. J. Comp. Neurol. 518, 2437-2455 (2010).
  4. Gu, H., O’Dowd, D. K. Cholinergic synaptic transmission in adult Drosophila Kenyon cells in sity. J. Neurosci. 26, 265-272 (2006).
  5. Boerner, J., Godenschwege, T. A. Application for the Drosophila ventral nerve cord standard in neuronal circuit reconstruction and in-depth analysis of mutant morphology. J. Neurogent. 24, 158-1567 (2010).
  6. Godenschwege, T. A., Kristiansen, L. V., Uthaman, S. B., Hortsch, M., Murphey, R. K. A conderved role for Drosophila Neuroglian and human L1-CAM in central-synapse formation. Curr. Biol. 16, 12-23 (2006).
  7. Uthaman, S. B., Godenschwege, T. A., Murphey, R. K. A mechanism distinct from highwire for the Drosophila ubiquitin conjugase bendless in synaptic growth and maturation. J. Neurosci. 28, 8615-8623 (2008).
  8. Storkebaum, E. Dominant mutations in the tyrosyl-tRNA synthetase gene recapitulate in Drosophila features of human Charcot-Marie-Tooth neuropathy. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 106, 11782-11787 (2009).
  9. Allen, M. J., Godenschwege, T. A. Electrophysiological recordings from the Drosophila giant fiber system (GFS). Cold Spring Harb. Protoc. 2010, pdb.prot5453-pdb.prot5453 (2010).
  10. Augustin, H., Allen, M. J., Partridge, L. Electrophysiological Recordings from the Giant Fiber Pathway of D. melanogaster. J. Vis. Exp. , (2011).
check_url/pt/3080?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Boerner, J., Godenschwege, T. A. Whole Mount Preparation of the Adult Drosophila Ventral Nerve Cord for Giant Fiber Dye Injection. J. Vis. Exp. (52), e3080, doi:10.3791/3080 (2011).

View Video