Summary

Ganze Berge Vorbereitung des Adult Drosophila Bauchmark für Giant Fiber Injection Dye

Published: June 04, 2011
doi:

Summary

Ein<em> In vivo</em> Dissektion der erwachsenen<em> Drosophila</em> Bauchmark (VNC) ist bewiesen. Diese besondere Dissektion Methode verursacht kaum Schäden an den VNC ermöglicht die spätere Kennzeichnung des riesigen Faser Neuronen mit Fluoreszenzfarbstoff für hochauflösende Bildgebung.

Abstract

Zur Analyse der axonalen und dendritischen Morphologie von Neuronen, ist es wichtig, die genaue Kennzeichnung von neuronalen Strukturen zu erhalten. Vorbereitung gut markierten Proben mit wenig bis gar keine Gewebeschäden ermöglicht es uns, Zellmorphologie zu analysieren und einzelne Proben miteinander zu vergleichen, so die Möglichkeit, die Identifizierung von Mutanten Anomalien.

In der Sektion zeigte Methode des Nervensystems bleibt meist im Inneren des Erwachsenen fliegen. Durch eine dorsale Inzision, sind der Bauch und Brustkorb geöffnet und die meisten der inneren Organe entfernt werden. Nur die Rückenseite des Bauchmark (VNC) und der Hals-Binde (CVC) mit den großen Axone der riesigen Fasern (GF) 1 ausgesetzt sind, während das Gehirn mit dem GF Zellkörper und Dendriten bleibt 2 in der intakten Kopf . In dieser Vorbereitung die meisten Nerven des VNC sollte, um ihre Muskeln verbunden bleiben.

Nach der Präparation wird die intrazelluläre Befüllung der riesigen Glasfaser (GF) mit einem fluoreszierenden Farbstoff nachgewiesen. In der CVC die GF Axone sind an der dorsalen Oberfläche liegt und somit können leicht sichtbar unter dem Mikroskop mit Differential-Interferenz-Kontrast (DIC) Optik. Dies ermöglicht die Injektion des GF Axone mit Farbstoff an dieser Stelle auf die gesamte GF einschließlich der Axone und ihre Terminals in den VNC-Label. Diese Methode führt zu zuverlässigen und starken Färbung der GF so dass die Neuronen, um sofort nach dem Befüllen mit einer epifluoreszenten Mikroskop abgebildet werden. Alternativ kann die Fluoreszenz-Signal verstärkt mit Standard-Immunhistochemie Verfahren 3 geeignet für hohe Auflösung der konfokalen Mikroskopie werden.

Protocol

1. Präparation des Bauchmark Dissection und Farbstoff Füllung des GF kann bei Raumtemperatur durchgeführt werden. Für alle Dissektion Schritte kaltem (4 ° C) Kochsalzlösung verwendet zu verlangsamen Zellstoffwechsel und halten Sie die Neuronen länger am Leben sein. Anesthetize erwachsenen Fliegen (4 Tage oder älter) mit CO 2 oder Chill sie auf Eis, bis sie immobilisiert sind. Betäubende mit Eis erfordert mehr Zeit (bis zu 30 min) wird aber die Fliegen länger i…

Discussion

Das Nervensystem kann ohne es zu extrahieren aus dem Körper fliegen seziert werden. Dies hat zwei Vorteile, erstens, bewirkt, dass die Zergliederung wenig Schaden für das Nervensystem, und zweitens, die meisten Nerven angeschlossen bleiben, um die Muskeln und Sinnesorgane. Durchführen der Dissektion, wie beschrieben, bereitet die Proben für geradlinig Farbstoff-Kennzeichnung der GFS. Günstig, bleiben die Motoneuronen postsynaptischen der GF an die Muskeln. Axone, also unbeschädigt sind, halten die Neuronen länger…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Das beschriebene Projekt wurde von Grant Number R01HD050725 vom National Institute of Child Health and Human Development unterstützt, um TAG Der Inhalt ist ausschließlich in der Verantwortung der Autoren und stellen nicht notwendigerweise die offizielle Meinung des National Institute of Child Health and Human Development oder die National Institutes of Health. Wir danken Mitglieder der Godenschwege Labor sowie Barbara Schreader für ihren Input, um das Manuskript und Video.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Sylgard 184 Silicone Elastomer Kit Dow Corning    
Dissection Microscope AmScope SM-2TZ  
Vannas Scissors Superfine Academic Instruments VS1023  
Dumont Forceps Dumontstar 55 Fine Science Tools 11295-51  
Austerlitz Insect pins Fine Science Tools 26002-10 Ø 0.1mm
Borosilicate Glass Electrodes World Precision Instruments 1B100F-4  
Vertical Pipette Puller 700c David Kopf Instruments Model 700C  
Lucifer Yellow CH dilithium salt Sigma L0259 1% in H2O
Fixed Stage Upright Microscope & Camera Nikon FN-1 & DS-U2 Camera  
Plan Fluor 10X Air Objective Nikon CFI Plan Fluor 10X NA 0.3 WD 16mm  
Fluor 40X water dipping Objective Nikon CFI Fluor 40X W NA 0.80 WD 2.0mm  
3D hydraulic Micromanipulator Narishige International Model MW0-3  
Amplifier Getting Instruments, Inc. Model 5A  

Referências

  1. Power, M. E. The thoracico-abdominal nervous system of an adult insect Drosophila melanogaster. J. Comp. Neurol. 88, 347-409 (1948).
  2. Allen, M. J., Godenschwege, T. A., Tanouye, T. A., Phelan, P. Making an escape: development and function of the Drosophila giant fibre system. Semin. Cell Dev. Biol. 17, 31-41 (2006).
  3. Boerner, J., Duch, C. Average shape standard atlas for the adult Drosophila ventral nerve cord. J. Comp. Neurol. 518, 2437-2455 (2010).
  4. Gu, H., O’Dowd, D. K. Cholinergic synaptic transmission in adult Drosophila Kenyon cells in sity. J. Neurosci. 26, 265-272 (2006).
  5. Boerner, J., Godenschwege, T. A. Application for the Drosophila ventral nerve cord standard in neuronal circuit reconstruction and in-depth analysis of mutant morphology. J. Neurogent. 24, 158-1567 (2010).
  6. Godenschwege, T. A., Kristiansen, L. V., Uthaman, S. B., Hortsch, M., Murphey, R. K. A conderved role for Drosophila Neuroglian and human L1-CAM in central-synapse formation. Curr. Biol. 16, 12-23 (2006).
  7. Uthaman, S. B., Godenschwege, T. A., Murphey, R. K. A mechanism distinct from highwire for the Drosophila ubiquitin conjugase bendless in synaptic growth and maturation. J. Neurosci. 28, 8615-8623 (2008).
  8. Storkebaum, E. Dominant mutations in the tyrosyl-tRNA synthetase gene recapitulate in Drosophila features of human Charcot-Marie-Tooth neuropathy. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 106, 11782-11787 (2009).
  9. Allen, M. J., Godenschwege, T. A. Electrophysiological recordings from the Drosophila giant fiber system (GFS). Cold Spring Harb. Protoc. 2010, pdb.prot5453-pdb.prot5453 (2010).
  10. Augustin, H., Allen, M. J., Partridge, L. Electrophysiological Recordings from the Giant Fiber Pathway of D. melanogaster. J. Vis. Exp. , (2011).
check_url/pt/3080?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Boerner, J., Godenschwege, T. A. Whole Mount Preparation of the Adult Drosophila Ventral Nerve Cord for Giant Fiber Dye Injection. J. Vis. Exp. (52), e3080, doi:10.3791/3080 (2011).

View Video