Hier presenteren we methodologie voor de klonale analyse van hematopoietische stamcellen precursoren tijdens lymfkliertest embryonale ontwikkeling. Wij combineren index sortering van afzonderlijke cellen uit de embryonale aorta-gonaden-mesonephros regio met endothelial co celkweek en transplantatie te karakteriseren de fenotypische eigenschappen en het engraftment potentieel van één hematopoietische precursoren.
De mogelijkheid te bestuderen van hematopoietische stamcellen (HSC) genesis tijdens de embryonale ontwikkeling heeft is beperkt door de zeldzaamheid van HSC precursoren in het vroege embryo en het ontbreken van tests waarmee functioneel het lange termijn potentieel van de multilineage engraftment van individuele putatief HSC precursoren. Hier beschrijven we een methodologie waarmee de isolatie en de karakterisering van functioneel gevalideerde HSC precursoren op het niveau van één cel. Ten eerste, wij gebruiken index Sorteren om de precieze fenotypische parameter van elke cel afzonderlijk gesorteerde winkel met behulp van een combinatie van fenotypische markers te verrijken voor HSC precursoren met extra markeringen voor experimentele analyse. Ten tweede, elke index-gesorteerd op cel is mede gekweekte met vasculaire niche stroma uit de aorta-gonaden-mesonephros (AVA) regio, die ondersteunt de rijping van niet-enten HSC voorlopers van functionele HSC met multilineage, op de lange termijn engraftment potentieel in transplantatie testen. Deze methode maakt een correlatie van fenotypische eigenschappen van klonen hemogenic precursoren met hun functionele engraftment potentieel of andere eigenschappen zoals transcriptionele profiel, het verstrekken van een middel voor de gedetailleerde analyse van de voorloper van de HSC ontwikkeling op het niveau van één cel.
Klonen studies is gebleken heterogeniteit in de lange termijn engraftment eigenschappen van volwassen HSCs, nieuwe inzicht bijbrengen in HSC subtypen en wijzigingen in de HSC gedrag tijdens veroudering1. Echter, soortgelijke studies van embryonale HSCs en hun uitgangsstoffen zijn uitdagender. Tijdens de vroege embryonale ontwikkeling, HSCs die ontstaan is uit een populatie van precursoren bekend als hemogenic endotheel in een voorbijgaande proces bedoeld als het endotheel hematopoietische overgang2. Het eerste HSC, gedefinieerd door hun vermogen om te leveren robuuste, op lange termijn multilineage engraftment na transplantatie in geconditioneerde volwassen geadresseerden, worden niet gedetecteerd totdat na embryonale dag 10.5 (E10.5) in het lymfkliertest embryo, met zeer lage frequentie3 . Tijdens hun ontwikkeling, moeten voorlopers van HSC (pre-HSC) die voortvloeien uit hemogenic endotheel rijping voorafgaand aan het verwerven van de eigenschappen van volwassen HSC die voorzien in efficiënte engraftment in4,5 van de tests van de transplantatie ondergaan , 6. de studie van zeldzame HSC oorsprong, een veelheid van hematopoietische progenitorcellen met erythroid, verduisterend myeloïde en lymfoïde potentieel al worden gedetecteerd vóór de opkomst van HSC van pre-HSC7,8. Pre-HSC onderscheiden van andere hematopoietische progenitorcellen vereist dus, methoden voor klonaal cellen isoleren en hen voorzien van voldoende voor hun rijping signalen naar HSC, om te ontdekken hun engraftment eigenschappen in het testen van de transplantatie.
Een aantal benaderingen zijn beschreven die voldoende zijn voor de detectie van pre-Help en ondersteuning door ex vivo of in vivo rijping naar HSC. Ex vivo methoden hebben afhankelijk van de cultuur van embryonale weefsels, zoals de AGM-regio, waar het eerste HSC in ontwikkeling9worden gedetecteerd. Voortbouwend op deze methoden, protocollen waarin de dissociatie opgenomen, hebben sorteren, en opnieuw aggregatie van AVA weefsels toegestaan de karakterisatie van gesorteerde populaties met HSC precursoren tijdens de ontwikkeling van E9.5 naar E11.5 in de para-aorta splanchnopleura (P-Sp) / AGM regio’s4,5,10; deze benaderingen zijn echter niet vatbaar voor high-throughput analyse van precursoren op het niveau van de eencellige vereist voor klonen analyse. Ook in vivo rijping door transplantatie in pasgeboren muizen, waar de communicatie wordt geacht te zijn meer geschikt voor de ondersteuning van eerdere fasen van HSC precursoren, ook heeft onderzoek van gesorteerde populaties van de dooierzak en AVA / P-Sp (P-Sp is de regio van de voorloper van de AVA) met kenmerken van pre-HSC, maar deze methoden ook niet te voorzien van een robuust platform voor single cell analysis11,12.
Studies van Rafii et al. aangetoond dat Akt-geactiveerde endothelial cel (EG) stroma kan bieden een niche-substraat voor de ondersteuning van volwassen HSC zelf-vernieuwing in vitro13,14,15. We onlangs vastgesteld dat Akt-geactiveerde EG afgeleid van de AVA regio (AGM-EG) een niche geschikt in vitro voor de rijping van hemogenic precursoren biedt, zo vroeg als E9 in ontwikkeling, tot volwassene-enten HSC, evenals de latere geïsoleerd zelf-vernieuwing van de gegenereerde HSC16. Gezien het feit dat dit systeem maakt gebruik van een eenvoudige CO 2-dimensionale cultuur, is het gemakkelijk aanpasbaar voor klonen analyse van het potentieel van de HSC van individueel geïsoleerde hemogenic precursoren.
We hebben onlangs gemeld dat een benadering van het potentieel van de HSC van klonen hemogenic precursoren assay door het combineren van index sortering van individuele hemogenic precursoren van lymfkliertest embryo’s met AGM-EG mede cultuur en latere functionele analyse van transplantatie testen van17. Het sorteren van de index is een modus van fluorescentie-activated cell sorting (FACS) dat records (indexen) alle fenotypische parameters (d.w.z., voorwaartse scatter (FSC-A), naast scatter (WS-A), fluorescentie parameters) van elk afzonderlijk gesorteerde cel dat deze functies kunnen met terugwerkende kracht worden gecorreleerd aan latere functionaalanalyse na sorteren. FACS software registreert beide fenotypische informatie voor elke cel en de positie per putje van de 96-wells-plaat waarin het werd geplaatst. Deze techniek is eerder elegant gebruikt voor het identificeren van heterogeniteit in volwassen HSC, fenotypische parameters die verder verrijken voor de lange termijn enten subset van HSC, en fenotypische parameters van HSC correleren met transcriptionele bepalen eigenschappen op de single cell niveau18,19. Hier, bieden wij gedetailleerde methodologie van deze aanpak waarmee identificatie van unieke fenotypische parameters en bloedlijn bijdragen van pre-Help en ondersteuning tijdens de vroege stadia van embryonale ontwikkeling.
De studie van HSC genesis tijdens de embryonale ontwikkeling vereist kunnen detecteren HSC potentiële in hemogenic precursoren nog ontbreekt de bevoegdheid om te bieden op de lange termijn multilineage hematopoietische reconstitutie in getransplanteerde volwassen ontvangers. In dit protocol presenteren we een klonale assay van embryonale hemogenic precursoren door stromale co cultuur op vasculaire niche ECs van de AVA, die de rijping van precursoren naar HSC ondersteunt, met latere functionele analyse van transplantatie…
The authors have nothing to disclose.
We zouden graag bedanken Andrew Berger, Stacey Dozono en Brian Raden in het Fred Hutchinson Stroom Cytometry kern voor hulp met FACS. Dit werk werd gesteund door de nationale instituten van gezondheid NHLBI UO1-subsidie #HL100395, bijkomende Collaborative Grant #HL099997 en NIDDK verlenen #RC2DK114777. Brandon Hadland wordt ondersteund door de Alex’s limonade staan Foundation en Hyundai Hope op wielen Foundation.
AGM-EC culture media | |||
Materials for culture of endothelial cells | |||
TrypLE Express | Gibco | 12605-028 | Use to dissociate AGM-EC monolayers |
Gelatin 0.1% in water | StemCell Technologies | 7903 | Use to adhere AGM-EC monolayers to plastic |
96-well tissue culture plates | Corning | 3599 | Use to co-culture AGM-EC monolayers and index sorted clones |
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (PBS) | Gibco | 14190-144 | Use for dissection and FACS staining |
500 ml filter bottles | Fisher Scientific | 9741202 | Use to sterile filter Endothelial media |
AGM-EC culture media (500 mls) | |||
Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM) | Gibco | 12440-053 | 400 mls |
Hyclone Fetal Bovine Serum | Fisher Scientific | SH30088.03 | 100 mls |
Penicillin Streptomycin | Gibco | 15140-122 | 5 mls |
Heparin | Sigma | H3149 | 50 mg dissolved in 10 mls media |
L-glutamine (200 mM) | StemCell Technologies | 7100 | 5 mls |
Endothelial Mitogen (ECGS) | Alfa Aesar | J64516 (BT-203) | Add 10 mls media to dissolve and add |
Materials for AGM index sort | |||
Collagenase (0.25%) | StemCell Technologies | 7902 | Use for dissociation of embryonic tissues |
3ml syringe | BD Biosciences | 309657 | Use to sterile filter antibody solutions for FACS |
0.22 µM syringe-driven filter | Millipore | SLGP033RS | Use to sterile filter antibody solutions for FACS |
5 ml polystyrene tube with cell-strainer cap | Corning | 352235 | Use to remove cell clumps prior to FACS |
DAPI (prepared as 1 mg/ml stock in H2O) | Millipore | 268298 | Use to exclude dead cells from sort |
anti-mouse CD16/CD32 (FcR block) | BD Biosciences | 553141 | Use to block non-specific staining to Fc receptors |
Antibodies for AGM index sort | |||
Anti-mouse CD144 PE-Cyanine7 | eBioscience | 25-1441-82 | Staining |
Rat IgG1 kappa Isotype Control, PE-Cyanine7 | eBioscience | 25-4301-81 | Isotype control for CD144 PE-Cyanine7 |
Anti-mouse CD201 (EPCR) PerCP-eFluor710 | eBioscience | 46-2012-80 | Staining |
Rat IgG2b kappa Isotype Control, PerCP-eFlour710 | eBioscience | 46-4031-80 | Isotype control for CD201 PerCP-eFluor710 |
Anti-mouse CD41 PE | BD Biosciences | 558040 | Staining |
Rat IgG1 kappa Isotype Control, PE | BD Biosciences | 553925 | Isotype control for CD41 PE |
Anti-mouse CD45 FITC | eBioscience | 11-0451-85 | Staining |
Rat IgG2b kappa Isotype Control, FITC | eBioscience | 11-4031-81 | Isotype control for CD45 FITC |
AGM-serum free media (10mls) | |||
X-Vivo 20 | Lonza | 04-448Q | 10 mls |
recombinant murine stem cell factor (SCF) | Peprotech | 250-03 | 10 ml (100 mg/ml stock) Final concentration 100 ng/ml |
recombinant human FLT3 Ligand (FLT3L) | Peprotech | 300-19 | 10 ml (100 mg/ml stock) Final concentration 100 ng/ml |
recombinant human thrombopoietin (TPO) | Peprotech | 300-18 | 2 ml (100 mg/ml stock) Final concentration 20 ng/ml |
recombinant murine interleukin-3 (IL3) | Peprotech | 213-13 | 2 ml (100 mg/ml stock) Final concentration 20 ng/ml |
Materials for Staining co-cultured cells | |||
96 well plate, V-bottom | Corning | 3894 | Use for FACS analysis |
Antibodies for analysis of Index sorted clones co-cultured with endothelial cells | |||
Anti-mouse CD45 PerCP-Cyanine5.5 | eBioscience | 45-0451-82 | Staining |
Rat IgG2b kappa Isotype Control, PE-Cyanine5.5 | eBioscience | 35-4031-80 | Isotype control for CD45 PerCP-Cyanine5.5 |
Anti-mouse CD201 (EPCR) PE | eBioscience | 12-2012-82 | Staining |
Rat IgG2b kappa Isotype Control, PE | eBioscience | 12-4031-81 | Isotype control for CD201 PE |
Anti-mouse Ly-6A/E (Sca-1) APC | eBioscience | 17-5981-83 | Staining |
Rat IgG2a kappa Isotype Control, APC | eBioscience | 17-4321-81 | Isotype control for Ly-6A/E APC |
Anti-mouse F4/80 FITC | eBioscience | 11-4801-81 | Staining |
Rat IgG2a kappa Isotype Control, FITC | eBioscience | 11-4321-41 | Isotype control for F4/80 FITC |
Anti-mouse Ly-6G/C (Gr1) FITC | BD Biosciences | 553127 | Staining |
Rat IgG2b kappa Isotype Control, FITC | BD Biosciences | 556923 | Isotype control for Ly-6G/C and CD3 FITC |
Materials for tail vein injection for transplant | |||
1/2 ml insulin syringes with 29G 1/2" needles | BD Biosciences | 309306 | Use for tail vein injection for transplantation |
Antibodies for Peripheral Blood analysis following translant | |||
Anti-mouse Ly-6G/C (Gr1) PerCP | Biolegend | 108426 | Staining |
Rat IgG2b kappa Isotype Control, PerCP | Biolegend | 400629 | Isotype control for Ly-6G/C PerCP |
Anti-mouse F4/80 PE | eBioscience | 12-4801-82 | Staining |
Rat IgG2a kappa Isotype Control, PE | eBioscience | 12-4321-80 | Isotype control for F4/80 PE |
Anti-mouse CD3 FITC | BD Biosciences | 555274 | Staining |
Anti-mouse CD19 APC | BD Biosciences | 550992 | Staining |
Rat IgG2a kappa Isotype Control, APC | BD Biosciences | 553932 | Isotype control for CD19 APC |
Anti-mouse CD45.1 (A20) PE-Cyanine7 | eBioscience | 25-0453-82 | Staining |
Rat IgG2a kappa Isotype Control, PE-Cyanine7 | eBioscience | 25-4321-81 | Isotype control for CD45.1 PE-Cyanine7 |
Anti-mouse CD45.2 (104) APC-eFluor780 | eBioscience | 47-0454-82 | Staining |
Rat IgG2a kappa Isotype Control, APC-eFluor780 | eBioscience | 47-4321-80 | Isotype control for CD45.2 APC-eFluor780 |
Equipment | |||
BD FACSAria II with DIVA software | BD Biosciences | ||
BD FACSCanto II with plate reader | BD Biosciences | ||
Haemocytometer | Fisher Scientific | S17040 | For counting cells |
Multi-channel pipette | Fisher Scientific | 14-559-417 | For dispensing cells |
FACS analysis software | FlowJo/BD Biosciences | https://www.flowjo.com/solutions/flowjo |