Summary

マウス初代ミクログリアと皮質ニューロンの作製と共培養

Published: July 26, 2024
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Summary

このプロトコルは、胚の日15-16でマウスの胚から単離された初代ニューロン細胞から確立されたミクログリア-ニューロン共培養と、出生後1-2日に新生児マウスの脳から生成された初代ミクログリアを説明しています。

Abstract

ミクログリアは、中枢神経系(CNS)の組織に常在するマクロファージであり、ニューロンの健康とCNSの恒常性をサポートする多くの機能を果たしています。彼らは、CNS疾患の活動性に関連する免疫細胞の主要な集団であり、多発性硬化症(MS)などの慢性神経変性疾患における神経損傷に寄与する可能性のある反応性表現型を採用しています。ミクログリアが健康および疾患中のニューロン機能と生存を制御する明確なメカニズムは、ミクログリア、ニューロン、およびその他のCNS環境因子との間の複雑な in vivo 相互作用を解決する上での課題のために、依然として限られています。したがって、ミクログリアとニューロンを共培養する in vitro アプローチは、ミクログリアとニューロンの相互作用を研究するための貴重なツールであり続けています。ここでは、マウスから初代ミクログリアとニューロンを作製し、共培養するためのプロトコールを紹介します。具体的には、ミクログリアは、出生後0〜2日の間に新生児マウス由来の脳ホモジネートから確立された混合グリア培養物から in vitro で9〜10日後に単離されました。ニューロン細胞は、胚の16-18日の間にマウス胚の脳皮質から単離された。 in vitroで4〜5日後、ニューロン細胞を96ウェルプレートに播種し、続いてミクログリアを添加して共培養を形成しました。このプロトコルでは、両方の細胞タイプが共培養を確立するために実験的成熟に達する必要があるため、慎重なタイミングが重要です。全体として、この共培養はミクログリアとニューロンの相互作用の研究に有用であり、免疫蛍光顕微鏡法、ライブイメージング、RNAおよびタンパク質アッセイなど、複数の読み出しを提供できます。

Introduction

ミクログリアは、中枢神経系(CNS)における免疫サーベイランスと恒常性を促進する組織常在性マクロファージです1,2,3。それらは、胚発生中に脳にコロニーを形成する卵黄嚢赤骨髄前駆細胞に由来し、4,5,6増殖とアポトーシス7を含む自己複製を通じて生物の寿命を通じて維持されます。定常状態では、休止中のミクログリアは形態を分岐させ、組織監視に従事しています8,9,10

ミクログリアは多数の細胞表面受容体を発現するため、中枢神経系の変化に迅速に反応し11,12、感染症や組織損傷の場合12,13,14、多発性硬化症(MS)などの神経変性疾患9,15の際に炎症反応を促進することができます16,17.ミクログリアはまた、さまざまな神経伝達物質や神経ペプチド18,19,20に対する受容体を発現しており、これはそれらがニューロン活動に応答し調節している可能性を示唆しています21,22。実際、ミクログリアとニューロンは、膜タンパク質によって媒介される直接的な相互作用や、可溶性因子や中間細胞を介した間接的な相互作用など、さまざまな形態の双方向コミュニケーション8,23で相互作用します23,24

例えば、ニューロンによって分泌される種々の神経伝達物質は、ミクログリアの神経保護活性または炎症活性を調節することができる25,26,27。さらに、ニューロンとミクログリアとの間の直接的な相互作用は、ミクログリアを恒常性状態に維持するのに役立ちます28。逆に、ミクログリアとニューロンとの直接的な相互作用は、ニューロン回路を形成し29、ニューロンシグナル伝達30,31,32に影響を与えることができる。これらの相互作用の破綻がニューロン30およびミクログリア反応性33,34の過興奮性を誘発するため、調節不全のミクログリア-ニューロン相互作用は神経疾患の寄与因子として関与している33,35実際、精神病23,26および神経変性疾患は、機能不全のミクログリア-ニューロン相互作用33を示すと説明されている。これらの観察結果は、中枢神経系におけるミクログリアとニューロンのコミュニケーションの重要性を強調していますが、これらの相互作用が健康や疾患におけるミクログリアとニューロンの機能をどのように制御するかについての具体的なメカニズムは比較的わかっていません。

中枢神経系のような複雑な環境では、複数の環境要因がミクログリアとニューロンの相互作用に影響を与える可能性があり、 そのためにin vivoでの一過性の細胞相互作用を研究する能力が制限されます。ここでは、ミクログリアとニューロン間の直接的な細胞相互作用を研究するために使用できる 、in vitro ミクログリア-ニューロン共培養システムを紹介します。このプロトコルは、出生後0〜2日目と胚性マウス16〜18日目の間に、それぞれ新生児マウスの皮質からの初代ミクログリアとニューロンの生成を説明しています。その後、ニューロンとミクログリアを96ウェルプレートで共培養し、ダウンストリームのハイスループット実験を行います。私たちは以前にこのアプローチを使用して、ミクログリアの食作用が酸化ホスファチジルコリンを介した細胞死からニューロンを保護することを実証しました37、この方法が神経変性およびMSの文脈におけるミクログリアの役割を理解するのに役立つことを示唆しています。同様に、ミクログリア-ニューロン共培養は、ウイルス感染38 やニューロンの損傷および修復39などの他の状況におけるミクログリア-ニューロンクロストークの影響を調査するためにも有用であり得る。全体として、 in vitro ミクログリア-ニューロン共培養システムにより、研究者は操作可能で制御された環境でミクログリア-ニューロンの相互作用を研究することができ、 これはin vivo モデルを補完します

Protocol

この研究で使用されたすべての動物は、サスカチュワン大学の大学動物管理委員会(UACC)およびカナダ動物管理評議会(CCAC)の承認を得て飼育および取り扱われました。この研究では、妊娠中のCD1マウスの出生後0-2日目のCD1オスとメスのマウスと、妊娠したCD1マウスの胚16-18日目(E16-18)の胚を使用しました。試薬や使用した機器の詳細は、 資料表に記載され?…

Representative Results

ミクログリアの混合グリア培養の主要なステップを示すフローチャートを 図1Aに示します。全体として、1日目にはスパースな細胞と過剰な細胞破片が予想されます(図1B)。4日目までに、特に接着性アストロサイトの生成とともに、細胞数の増加が観察されるはずです(図1C)。アストロサイトの上には?…

Discussion

この記事では、マウスの初代ニューロンと初代ミクログリアを単離および培養するためのプロトコルについて説明し、その後、ミクログリアとニューロンの相互作用が細胞の健康と機能をどのように制御するかを研究するために使用できるミクログリア-ニューロン共培養を確立するために使用されます。この比較的単純でアクセス可能なアプローチは、CNSにおける?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

JPは、カナダ自然科学工学研究評議会およびサスカチュワン大学医学部からの資金援助を認めています。YDは、サスカチュワン大学医学部スタートアップファンド、カナダ自然科学工学研究評議会ディスカバリー助成金(RGPIN-2023-03659)、MS Canada Catalyst Grant(1019973)、Saskatchewan Health Research Foundation Establishment Grant(6368)、およびBrain Canada Foundation Future Leaders in Canadian Brain Research Grantからの資金援助を認めています。 図 1A図 2Aおよび図 3A は BioRender.com を使用して作成されました。

Materials

10 cm Petri dish  Fisher  07-202-011 Sterile
1x Versene Gibco 15040-066
B-27 Plus Neuronal Culture System  Gibco  A3653401
Dissection microscope VWR
DNase I Roche 11284932001
Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM) Gibco 11960-044
Fetal Bovine Serum  ThermoFisher Sci 12483-020
HBSS (10x) Gibco 14065-056
Hemacytometer Hausser Scientific 1475
HEPES  ThermoFisher Sci 15630080
Leibovitz’s L-15 Medium (1x) Fisher Scientific  21083027
Macrophage colony stimulating factor  Peprotech 315-02
Micro-Forceps RWD F11020-11 Autoclaved/Sterile
Non-essential amino acids Cytiva SH3023801
PBS (10x) ThermoFisher Sci AM9625
Penicillin Streptomycin Glutamine (100x) Gibco 103780-16
Poly-L-ornithine hydrobromide  Sigma P3655-100MG
Sodium pyruvate (100 mM) Gibco 11360-070
Spring scissors RWD S11008-42 Autoclaved/Sterile
Surgical blade Feather 08-916-5D Sterile
T-25 flasks Fisher 10-126-9
T-75 flasks  Fisher 13-680-65
Tissue forceps Codman 30-4218 Autoclaved/Sterile
Tissue scissors RWD S12052-10 Autoclaved/Sterile
Trypan Blue  Thermofisher Sci  15250-061
Trypsin (2.5%) ThermoFisher Sci 15090046
Widefield Immunofluorescence Microscope Zeiss

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Park, J., Yu, R., Dong, Y. Generating and Co-culturing Murine Primary Microglia and Cortical Neurons. J. Vis. Exp. (209), e67078, doi:10.3791/67078 (2024).

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