Ici, un protocole pour effectuer et analyser la liaison, la mobilité et l’assemblage de molécules uniques sur des membranes lipidiques artificielles encombrées à l’aide de la microscopie à fluorescence interne totale à molécule unique (smTIRF) est présenté.
Les membranes cellulaires sont des environnements très encombrés pour les réactions biomoléculaires et la signalisation. Pourtant, la plupart des expériences in vitro sondant l’interaction des protéines avec les lipides utilisent des membranes bicouches nues. De tels systèmes n’ont pas les complexités de l’encombrement par les protéines et les glycanes intégrés dans la membrane et excluent les effets de volume associés rencontrés sur les surfaces de la membrane cellulaire. En outre, la surface de verre chargée négativement sur laquelle les bicouches lipidiques sont formées empêche la libre diffusion des biomolécules transmembranaires. Ici, nous présentons une membrane polymère-lipide bien caractérisée comme imitateur pour les membranes lipidiques encombrées. Ce protocole utilise des lipides conjugués au polyéthylène glycol (PEG) comme approche généralisée pour incorporer des encombrements dans la bicouche lipidique supportée (SLB). Tout d’abord, une procédure de nettoyage des lames microscopiques et des lamelles de recouvrement pour effectuer des expériences sur une seule molécule est présentée. Ensuite, les méthodes de caractérisation des PEG-SLB et la réalisation d’expériences sur une seule molécule de liaison, de diffusion et d’assemblage de biomolécules à l’aide du suivi d’une seule molécule et du photoblanchiment sont discutées. Enfin, ce protocole montre comment surveiller l’assemblage nanoporeux de la toxine bactérienne formant des pores Cytolysine A (ClyA) sur des membranes lipidiques encombrées avec une analyse de photoblanchiment à molécule unique. Les codes MATLAB avec des exemples de jeux de données sont également inclus pour effectuer certaines des analyses courantes telles que le suivi des particules, l’extraction du comportement diffusif et le comptage des sous-unités.
Les membranes cellulaires sont des systèmes complexes et très encombrés1. L’encombrement moléculaire peut avoir un impact considérable sur la diffusion d’entités liées à la membrane comme les protéines et les lipides 2,3,4. De même, les réactions bimoléculaires sur les membranes lipidiques comme la dimérisation des récepteurs ou l’oligomérisation des complexes membranaires sont influencées par l’encombrement 5,6,7. La nature, la configuration et la concentration des crowders peuvent régir la liaison membranaire, la diffusivité et l’interaction protéine-protéine de plusieurs façons 8,9. Étant donné qu’il est difficile de contrôler l’encombrement des membranes cellulaires et d’interpréter son influence sur les biomolécules intégrées, les chercheurs ont tenté d’établir d’autres systèmes in vitro 10.
Une approche populaire pour les membranes artificielles encombrées consiste à doper les membranes bicouches avec des lipides greffés de polymère (tels que le polyéthylène glycol, PEG)11,12. Au cours de la visualisation de la dynamique des protéines et des lipides sur les bicouches lipidiques soutenues (SLB), ces polymères protègent en outre les composants intégrés à la membrane du substrat sous-jacent chargé négativement (tel que le verre) en soulevant efficacement la bicouche loin du support sous-jacent. En faisant varier la taille et la concentration du polymère, on peut contrôler l’étendue de l’encombrement moléculaire, ainsi que sa séparation du support solide sous-jacent13,14. C’est clairement un avantage par rapport aux bicouches lipidiques supportées sur des substrats solides sans coussins polymères15,16, où les biomolécules transmembranaires peuvent perdre leur activité17,18,19. Plus important encore, cela nous permet de récapituler l’environnement encombré de la membrane cellulaire in vitro, ce qui est essentiel pour de nombreux processus membranaires.
Les polymères greffés en surface sur membranes subissent également des modifications de leur configuration en fonction de leur densité de greffage12. À de faibles concentrations, ils restent dans une configuration enroulée enroulée, connue sous le nom de champignon, au-dessus de la surface de la membrane. Avec l’augmentation de la concentration, ils commencent à interagir et ont tendance à se dérouler et à s’étendre, donnant finalement une formation dense en forme de brosse sur la membrane21. Étant donné que la transition du champignon au régime en brosse est très hétérogène et se manifeste dans des conditions mal caractérisées du polymère, il est important d’utiliser des conditions bien caractérisées pour l’encombrement sur les membranes greffées en polymère. Par rapport à une étude récente20, nous identifions et rapportons des compositions membranaires encombrées qui maintiennent le transport diffusif et l’activité des biomolécules transmembranaires.
Dans ce protocole, nous discutons de la façon de générer des membranes lipidiques PEGylées et fournissons des recommandations pour les densités de PEG qui imitent l’encombrement dans deux régimes différents de configuration de polymère (à savoir, champignon et brosse). Le protocole décrit également la liaison à une seule molécule, le suivi des particules et l’acquisition et l’analyse de données de photoblanchiment pour les molécules intégrées dans ces membranes encombrées. Tout d’abord, nous décrivons les étapes de nettoyage en profondeur, l’assemblage de la chambre d’imagerie et la génération de PEG-SLB. Deuxièmement, nous fournissons des détails pour les expériences de liaison à une seule molécule, de suivi des particules et de photoblanchiment. Troisièmement, nous discutons i) de l’extraction des affinités de liaison relatives, ii) de la caractérisation de la diffusion moléculaire et iii) du comptage des sous-unités dans un assemblage protéique à partir de films de molécules uniques sur la membrane.
Bien que nous ayons caractérisé ce système avec l’imagerie à molécule unique, le protocole est utile pour tous les biophysiciens membranaires intéressés à comprendre l’effet de l’encombrement sur les réactions biomoléculaires sur les membranes lipidiques. Dans l’ensemble, nous présentons un pipeline robuste pour la fabrication de bicouches lipidiques encombrées et soutenues, ainsi que divers tests à molécule unique menés sur eux et les routines d’analyse correspondantes.
Ici, nous démontrons des expériences sur une seule molécule sur des bicouches lipidiques soutenues (SLB) qui manifestent un environnement encombré pour les biomolécules intégrées dans la membrane. L’environnement surpeuplé génère un effet de volume exclu, conduisant à l’amélioration des réactions biomoléculaires 1,2,39,40. Pour le système PEG-lipide, où le polymère occupe p…
The authors have nothing to disclose.
Les auteurs remercient le professeur Benjamin Schuler pour avoir partagé le plasmide d’expression de la protéine ClyA. Ce travail a été soutenu par Human Frontier Science Program (RGP0047-2020).
2.5 ml Syringes | HMD Healthcare | Dispo Van, 2.5 ml Tuberculin | Plastic syringe |
Acetone | Finar Chemicals | 10020LL025 | |
Acrylic Sheet | 2 mm thick | ||
Acrylic Sheet | BigiMall | 2 mm, Clear | |
Bath Sonicator | Branson | CPX-1800 | |
Calcium Chloride | |||
Chloroform | Sigma | 528730 | HPLC grade |
Cholesterol | Avanti | 700100 | |
Coplin Jar | Duran Wheaton Kimble | S6016 | 8 Slide Jar with Glass Cover |
Coverslips | VWR | 631-1574 | 24 mm X 50 mm |
Cy3-DNA Strand | IDT | GCTGCTATTGCGTCCGTTTGGTT GGTGTGGTTGG-Cy3 |
|
Cyanine Dye (Cy3) | Cytiva Life Sciences | PA23001 | |
DiI | Invitrogen | D3911 | Dil Stain (1,1'-Dioctadecyl-3,3,3',3'-Tetramethylindocarbocyanine Perchlorate ('DiI'; DiIC18(3))) |
DNA Connector Strand 1 | Sigma Aldrich | GCTGCTATTGCGTCCGTTTAGCT GGGGGAGTATTGCGGAGGAAGC T |
|
DNA Connector Strand 2 | Sigma Aldrich | CGGACGCAATAGCAGCTCACAG TCGGTCACAT |
|
DNA Tocopherol Strand | Biomers | Toco-CCCAATGTGACCGACTGTGA | |
DOPE-PEG2000 | Avanti | 880130 | 1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-[methoxy(polyethylene glycol)-2000] (ammonium salt) |
Double Sided Tape | 3M | LF93010LE | |
Drill Bits (Diamond Coated) | 0.5 – 1 mm | ||
Drilling Machine | Dremel | 220 | Workstation |
EMCCD | Andor | DU-897U-CS0-#BV | |
Fluorescence Beads | Invitrogen | F10720 | |
Glass Slides | Blue Star | Micro Slides, PIC-1 | |
Glass Vials | Sigma | 854190 | |
Hydrogen Peroxide | Lobachemie | 00182 | 30% Solution, AR Grade |
Labolene | Thermo-Fischer Scientific | Detergent | |
Laser 532 nm | Coherent | Sapphire | |
Laser Cutter | Universal Laser Systems | ILS12.75 | |
Lissamine Rhodamine DOPE | Avanti | 810150 | 1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-(lissamine rhodamine B sulfonyl) (ammonium salt) |
Methanol | Finar Chemicals | 30932LL025 | |
Microscope | Olympus | IX81 | |
Phosphate Buffer Saline (PBS) | 1X | ||
Plasma Cleaner | Harrick Plasma Inc | PDC-002 | |
POPC | Avanti | 850457 | 1-palmitoyl-2-oleoyl-glycero-3-phosphocholine |
Programmable Syringe Pump | New Era Pump Systems | NE1010 | High Pressure Syringe Pump |
PTFE Caps | Sigma | 27141 | |
PTFE Tubing | Cole-Parmer | WW-06417-21 | Masterflex, 0.022" ID x 0.042" OD |
Sulphuric Acid | SD Fine Chemicals | 98%, AR Grade | |
TIRF Objective | Olympus | UPLAPO100XOHR | |
Vacuum Desiccator | Tarsons | ||
Vortex Mixer | Tarsons |