Summary

Formação de carbonato de cálcio na presença de aditivos Biopoliméricos

Published: May 14, 2019
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Summary

Descrevemos um protocolo para a precipitação e caracterização de cristais de carbonato de cálcio que se formam na presença de biopolímeros.

Abstract

A biomineralização é a formação de minerais na presença de moléculas orgânicas, muitas vezes relacionadas com papéis funcionais e/ou estruturais em organismos vivos. É um processo complexo e, portanto, um sistema simples, in vitro, é necessário para compreender o efeito de moléculas isoladas no processo de biomineralização. Em muitos casos, a biomineralização é dirigida por biopolímeros na matriz extracelular. Para avaliar o efeito de biopolímeros isolados na morfologia e estrutura da calcita in vitro, utilizou-se o método de difusão de vapor para a precipitação de carbonato de cálcio, microscopia eletrônica de varredura e micro Raman para a caracterização, e absorvância ultravioleta-visível (UV/VIS) para medir a quantidade de um biopolímero nos cristais. Neste método, expõem-se os biopolímeros isolados, dissolvidos em solução de cloreto de cálcio, a amônia gasosa e dióxido de carbono que se originam da decomposição de carbonato de amônio sólido. Nas condições em que o produto de solubilidade do carbonato de cálcio é atingido, os precipitados de carbonato de cálcio e os cristais são formados. O carbonato de cálcio tem diferentes polimorfos que diferem em sua estabilidade termodinâmico: carbonato de cálcio amorfo, vaterita, aragonita e calcita. Na ausência de biopolímeros, em condições limpas, o carbonato de cálcio está principalmente presente na forma de calcita, que é o polimorfo mais termodinògica estável do carbonato de cálcio. Este método examina o efeito dos aditivos biopoliméricas na morfologia e na estrutura de cristais do carbonato de cálcio. Aqui, demonstramos o protocolo através do estudo de uma proteína bacteriana extracelular, TapA, sobre a formação de cristais de carbonato de cálcio. Especificamente, focamos no conjunto experimental, e métodos de caracterização, tais como microscopia óptica e eletrônica, bem como Espectroscopia Raman.

Introduction

A biomineralização é a formação de minerais na presença de moléculas orgânicas, muitas vezes relacionadas com papéis funcionais e/ou estruturais em organismos vivos. A biomineralização pode ser intracelular, como na formação de magnetita dentro de bactérias magnetotáticas1, ou extracelular, como na formação de carbonato de cálcio em picos de ouriço-do-mar2, de hidroxiapatita que está relacionada com colágeno em ossos3 e do esmalte que está associado com amelogenina nos dentes4. A biomineralização é um processo complexo que depende de muitos parâmetros no organismo vivo. Portanto, a fim de simplificar o sistema em estudo, é necessário avaliar o efeito de componentes separados no processo. Em muitos casos, a biomineralização é induzida pela presença de biopolímeros extracelulares. O objetivo do método aqui apresentado é o seguinte: (1) formar cristais de carbonato de cálcio na presença de biopolímeros isolados in vitro, utilizando um método de difusão de vapor. (2) estudar o efeito dos biopolímeros na morfologia e estrutura do carbonato de cálcio.

São utilizados três métodos principais para precipitar o carbonato de cálcio in vitro na presença de aditivos orgânicos5,6. O primeiro método, que vamos referir como o método de solução, é baseado na mistura de um sal solúvel de cálcio (por exemplo, CaCl2) com um sal solúvel de carbonato (por exemplo, carbonato de sódio). O processo de mistura pode ser realizado de várias maneiras: dentro de um reator com três células separadas por membranas porosas7. Aqui, cada uma das células exteriores contém um sal solúvel e a célula central contém uma solução com o aditivo a ser testado. O cálcio e o carbonato difuso do exterior à pilha média, tendo por resultado a precipitação do carbonato de cálcio menos solúvel quando as concentrações de cálcio e de carbonato excedem seu produto da solubilidade, KSP = [Ca2 +] [co3 2-]. Um método de mistura adicional é o procedimento de jato duplo8. Neste método, cada sal solúvel é injetado a partir de uma seringa separada para uma solução agitada contendo o aditivo, onde o carbonato de cálcio precipita. Aqui, a injeção e, portanto, a taxa de mistura é bem controlada, em contraste com o método anterior, onde a mistura é controlada pela difusão.

O segundo método usado para cristalizar CaCO3 é o método Kitano9. Este método baseia-se no equilíbrio carbonato/carbonato de hidrogênio (2HCO3 (AQ) + CA2 +(AQ) Image 1 caco3 (s) + co2 (g) + H2O (l)). Aqui, o CO2 é borbulhado em uma solução contendo caco3 em uma forma sólida, deslocando o equilíbrio para a esquerda e, portanto, dissolvendo o carbonato de cálcio. O carbonato de cálcio não dissolvido é filtrado e os aditivos desejados são adicionados à solução rica em bicarbonato. O CO2 é então autorizado a evacir, deslocando assim a reacção à direita, formando carbonato de cálcio na presença dos aditivos.

O terceiro método de cristalização do carbonato de cálcio, que descreveremos aqui, é o método de difusão de vapor10. Nesta set-up, o aditivo orgânico, dissolvido em uma solução de cloreto de cálcio, é colocado em uma câmara fechada perto de carbonato de amônio em forma de pó. Quando o pó de carbonato de amônio se decompõe em dióxido de carbono e amônia, eles se difusas na solução contendo íons de cálcio (por exemplo, CaCl2), e o carbonato de cálcio é precipitado (ver Figura 1 para ilustração). Os cristais do carbonato de cálcio podem crescer pela precipitação lenta ou pela precipitação rápida. Para a precipitação lenta, uma solução que contenha o aditivo na solução de CAcl2 é coloc em um exsicador ao lado do pó do carbonato de amónio. Na precipitação rápida, descrita de comprimento no protocolo, tanto a solução aditiva quanto o carbonato de amônio são colocados mais próximos em uma placa de múltiplos poços. O método de precipitação lenta produzirá menos centros de nucleação e cristais maiores, e a precipitação rápida resultará em mais centros de nucleação e cristais menores.

Os métodos descritos acima diferem em sua complexidade técnica, no nível de controle e na taxa do processo de precipitação. O método de mistura requer uma set-up especial6 para o jato duplo e o sistema de três células. No método de mistura, a presença de outros íons contrários solúveis (por exemplo, na+, CL)6 é inevitável, enquanto que no método Kitano, o cálcio e (BI) carbonato são os únicos íons em solução e não envolve a presença de adicionais contra íons (por exemplo, na+, CL). Além disso, o método de mistura requer volumes relativamente grandes e, portanto, não é adequado para trabalhar com biopolímeros caros. A vantagem do jato dobro é que é possível controlar a taxa de injeção da solução e que é um processo rápido em comparação com outros métodos.

A vantagem do método de Kitano e o método de difusão de vapor é que a formação de carbonato de cálcio é controlada pela difusão de CO2 em/fora de uma solução CAcl2 , permitindo assim a sonda de nucleação mais lenta e processos de precipitação 11 anos de , 12. Além disso, a formação de carbonato de cálcio por difusão de co2 pode assemelhar-se a processosde calcificação in vivo13,14,15. Neste método, os cristais bem definidos e separados são formados16. Por último, o efeito de biopolímeros únicos ou múltiplos na formação de carbonato de cálcio pode ser testado. Isto permite um estudo sistemático do efeito de uma série de concentrações aditivas na formação de carbonato de cálcio, bem como um estudo de misturas de biopolímeros-todos realizados de forma controlada. Este método é adequado para uso com uma grande variedade de concentrações e volumes de aditivos. O volume mínimo utilizado é de aproximadamente 50 μL e, portanto, este método é vantajoso quando há uma quantidade limitada de biopolímeros disponíveis. O volume máximo depende da acessibilidade de uma placa de poço maior, ou do dessecador em que a placa ou taça contendo CaCl2 devem ser inseridos. O método descrito abaixo foi otimizado para trabalhar em uma placa 96-well com um biopolímero escolhido para ser a proteína TapA17.

Protocol

1. cristalização do carbonato de cálcio Preparação e otimização de controle Prepare peças de vidro limpas. Use o mesmo procedimento de limpeza para limpar os copos. Use uma pena do diamante para cortar partes de uma corrediça de vidro do microscópio de modo que caiam em um poço de uma placa 96-well.Nota: 5 mm x 5 mm peças devem caber em grande parte. Coloc as partes de vidro em um copo com água destilada tripla (TDW) de modo que a água cubra as cor…

Representative Results

Um esquema do conjunto experimental é mostrado na Figura 1. Resumidamente, o método de difusão é utilizado para formar cristais de carbonato de cálcio em placas de 96 poços e testar o efeito de biopolímeros na morfologia e estrutura dos cristais de carbonato de cálcio. Nesses experimentos, o carbonato de amônio é decomposto em amônia e CO2, que se difunde em soluções de carbonato de cálcio, resultando na formação de cristais de carbonato de cálcio (<strong class="…

Discussion

O método aqui descrito destina-se a formar cristais de carbonato de cálcio na presença de aditivos orgânicos e avaliar o efeito de biopolímeros orgânicos na morfologia e estrutura de cristais de carbonato de cálcio in vitro. O método é baseado na comparação dos cristais formados na presença dos aditivos orgânicos aos cristais de calcita formados no experimento de controle. Nós mostramos como usar o método de difusão para formar os cristais de carbonato de cálcio, como caracterizar sua morfologia usando m…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Os autores gostariam de agradecer ao Prof. lia Addadi, Prof. Jonathan Erez, e ao Dr. Yael Politi por discussões frutíferas. Esta pesquisa foi apoiada pela Fundação de ciência israelense (ISF), conceder 1150/14.

Materials

Acetic acid Gadot 64-19-7
Ammonium carbonate Sigma-Aldrich 506-87-6
Calcium chloride dihydrate Merck KGaA 10035-04-8
Ethanol Absolute Gadot 64-17-5
Micro-Raman Renishaw inVia Reflex spectrometer coupled with an upright Leica optical microscope
Microscope Nikon Eclipse 90i model
Nis elements Br software Nikon For microscope imaging
Scanning Electron Microscope ThermoFisher Scientific FEI Sirion microscope
Spectrophotometer JASCO V-670 model
Sputter coater Polaron SC7640 model

Riferimenti

  1. Blakemore, R. Magnetotactic bacteria. Science. 190 (4212), 377-379 (1975).
  2. Politi, Y., Arad, T., Klein, E., Weiner, S., Addadi, L. Sea Urchin Spine Calcite Forms via a Transient Amorphous Calcium Carbonate Phase. Science. 306 (5699), 1161-1164 (2004).
  3. Nudelman, F., Lausch, A. J., Sommerdijk, N. A. J. M., Sone, E. D. In vitro models of collagen biomineralization. Journal of Structural Biology. 183 (2), 258-269 (2013).
  4. Sigel, A., Sigel, H., Sigel, R. K. . Biomineralization: from nature to application. 12, (2008).
  5. Nielsen, M. H., Lee, J. R. I., De Yoreo, J. J. . Methods in Enzymology. 532, 209-224 (2013).
  6. Page, M. G., Cölfen, H. Improved Control of CaCO3 Precipitation by Direct Carbon Dioxide Diffusion: Application in Mesocrystal Assembly. Crystal Growth & Design. 6 (8), 1915-1920 (2006).
  7. Wang, H., Huang, W., Han, Y. Diffusion-reaction compromise the polymorphs of precipitated calcium carbonate. Particuology. 11 (3), 301-308 (2013).
  8. Sedlák, M., Antonietti, M., Cölfen, H. Synthesis of a new class of double-hydrophilic block copolymers with calcium binding capacity as builders and for biomimetic structure control of minerals. Macromolecular Chemistry and Physics. 199 (2), 247-254 (1998).
  9. Kitano, Y., Park, K., Hood, D. W. Pure aragonite synthesis. Journal of Geophysical Research. 67 (12), 4873-4874 (1962).
  10. Politi, Y., Mahamid, J., Goldberg, H., Weiner, S., Addadi, L. Asprich mollusk shell protein: in vitro experiments aimed at elucidating function in CaCO3 crystallization. CrystEngComm. 9 (12), 1171-1177 (2007).
  11. Gehrke, N., Cölfen, H., Pinna, N., Antonietti, M., Nassif, N. Superstructures of Calcium Carbonate Crystals by Oriented Attachment. Crystal Growth & Design. 5 (4), 1317-1319 (2005).
  12. Rudloff, J., et al. Double-Hydrophilic Block Copolymers with Monophosphate Ester Moieties as Crystal Growth Modifiers of CaCO3. Macromolecular Chemistry and Physics. 203 (4), 627-635 (2002).
  13. Boquet, E., Boronat, A., Ramos-Cormenzana, A. Production of Calcite (Calcium Carbonate) Crystals by Soil Bacteria is a General Phenomenon. Nature. 246, 527 (1973).
  14. Cohen, A. L., McConnaughey, T. A. Geochemical Perspectives on Coral Mineralization. Reviews in Mineralogy and Geochemistry. 54 (1), 151-187 (2003).
  15. Erez, J. Vital effect on stable-isotope composition seen in foraminifera and coral skeletons. Nature. 273, 199 (1978).
  16. Azulay, D. N., et al. Biopolymers from a Bacterial Extracellular Matrix Affect the Morphology and Structure of Calcium Carbonate Crystals. Crystal Growth & Design. 18 (9), 5582-5591 (2018).
  17. Abbasi, R., et al. The Bacterial Extracellular Matrix Protein TapA Is a Two-Domain Partially Disordered Protein. ChemBioChem. , (2018).
  18. Gauldie, R. W., Sharma, S. K., Volk, E. Micro-raman spectral study of vaterite and aragonite otoliths of the coho salmon, Oncorhynchus kisutch. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Physiology. 118 (3), 753-757 (1997).
  19. Gasteiger, E., et al. . The Proteomics Protocols Handbook. , 571-607 (2005).
  20. Gunasekaran, S., Anbalagan, G., Pandi, S. Raman and infrared spectra of carbonates of calcite structure. Journal of Raman Spectroscopy. 37 (9), 892-899 (2006).
  21. Trushina, D. B., Bukreeva, T. V., Kovalchuk, M. V., Antipina, M. N. CaCO3 vaterite microparticles for biomedical and personal care applications. Materials Science and Engineering: C. 45, 644-658 (2014).
  22. Weiss, I. M., Tuross, N., Addadi, L., Weiner, S. Mollusc larval shell formation: amorphous calcium carbonate is a precursor phase for aragonite. Journal of Experimental Zoology. 293 (5), 478-491 (2002).
  23. Yamamoto, Y., Nishimura, T., Saito, T., Kato, T. CaCO3/chitin-whisker hybrids: formation of CaCO3 crystals in chitin-based liquid-crystalline suspension. Polymer Journal. 42, 583 (2010).
  24. Magnabosco, G., et al. Insights on the interaction of calcein with calcium carbonate and its implications in biomineralization studies. CrystEngComm. 20 (30), 4221-4224 (2018).

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Citazione di questo articolo
Azulay, D. N., Chai, L. Calcium Carbonate Formation in the Presence of Biopolymeric Additives. J. Vis. Exp. (147), e59638, doi:10.3791/59638 (2019).

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