Summary

Zebra balığı erken embriyo ve tümör hücresel elektrik aktivitesinin görselleştirme

Published: April 25, 2018
doi:

Summary

Burada, bir hücresel elektrik voltaj muhabir Zebra balığı çizgi embriyonik gelişim, hareket, görselleştirmek için oluşturma sürecini göstermek ve in vivobalık tümör hücreleri.

Abstract

Bioelectricity, endojen elektrik iyon kanalları tarafından aracılı sinyalleşme ve hücre zarı üzerinde bulunan pompalar oynar gibi telaşlı nöronal ve kas hücrelerinin süreçleri ve birçok diğer biyolojik süreçler, sinyal önemli roller embriyonik gelişimsel desenlendirme. Ancak, in vivo omurgalı embriyogenez elektrik etkinliğini izleme için bir ihtiyaç vardır. Genetik olarak kodlanmış floresan voltaj göstergelerinin (GEVIs) gelişmeler bu sorun için bir çözüm sağlamak mümkün kılmıştır. Burada, nasıl bir transgenik voltaj göstergesi Zebra balığı kurulan voltaj göstergesi, ASAP1 kullanarak oluşturulacağını açıklar (hız sensörü, Aksiyon potansiyelleri 1), örnek olarak. Tol2 kit ve her yerde birden bulunan Zebra balığı organizatörü, ubi, bu çalışmada seçildi. Biz aynı zamanda ağ geçidi siteye özgü klonlama, Tol2 transposon tabanlı Zebra balığı transgenesis ve normal epifluorescent mikroskoplar kullanarak aşamasındaki balık embriyo ve balık tümörleri için görüntüleme işlemi işlemleri açıklar. Bu balık satırını kullanarak, Zebra balığı embriyo ve balık larva hareketi sırasında hücresel elektrik voltaj değişiklikleri vardır bulundu. Ayrıca, birkaç Zebra balığı Malign periferik sinir kılıf tümörleri içinde çevresindeki normal dokuların hücreleri genellikle polarize tümör karşılaştırıldığında gözlendi.

Introduction

Bioelectricity endojen elektrik iyon kanalları ve hücre zarının1üzerinde bulunan pompalar aracılı sinyalleşme için ifade eder. Hücresel membran ve eşleşmiş Elektrik potansiyeli ve geçerli değişiklikleri, iyonik değişim süreçleri telaşlı nöronal ve kas hücrelerinin sinyal için gereklidir. Buna ek olarak, bioelectricity ve iyon degradeler çeşitli enerji depolama, biyosentezi ve metaboliti ulaşım da dahil olmak üzere diğer önemli Biyolojik işlevleri var. Biyoelektrik sinyal Ayrıca embriyonik Desen oluşumu, vücut eksenleri, hücre döngüsü ve hücre farklılaşması1gibi bir düzenleyici olarak keşfedilmiştir. Böylece, bu tür sinyal yanlış düzenlenmesi neden pek çok insan Konjenital hastalıklar anlamak için önemlidir. Yama kelepçe yaygın tek hücreleri kaydetmek için kullanılmıştır, aynı anda birden fazla hücreleri embriyonik gelişim içinde vivosırasında izleme için ideal hala uzak olsa da. Ayrıca, voltaj duyarlı küçük moleküller de vivo içinde uygulamalar nedeniyle onların özelliklerine, hassasiyetleri ve toksisite için ideal değildir.

Çeşitli oluşturulması genetik olarak bu sorunu aşmak için yeni bir mekanizma floresan voltaj göstergelerinin (GEVIs) Teklifler kodlanmış ve düz-se bile onlar aslında sinir izlemek için istenmeyen embriyonik gelişim, eğitim kolay uygulama sağlar 2,3hücreleri. Şu anda mevcut GEVIs biri hız sensörü aksiyon potansiyelleri 1’in (ASAP1)4. Voltaj duyarlı fosfataz ve dairesel yayın derlenemiyor yeşil flüoresan protein bir gerilim algılamalı etki alanının hücre dışı bir döngü oluşur. Bu nedenle, ASAP1 hücresel elektrik potansiyel değişiklikleri görselleştirme sağlar (Polarizasyon: parlak yeşil; depolarizasyon: koyu yeşil). ASAP1 2 ms açık ve kapalı Kinetik vardır ve subthreshold olası değişiklik4izleyebilirsiniz. Böylece, bu genetik aracı gerçek zamanlı biyo-elektrik canlı hücrelerde izleme etkinliğinin yeni düzeyi sağlar. Daha fazla bioelectricity embriyonik geliştirme ve birçok insan hastalıkları, kanser gibi rollerini anlamak hastalık tedavi ve korunma için kritik olan temel mekanizmaları, yeni ışık tutacak.

Zebra balığı gelişim biyolojisi ve insan hastalıkları kanser5,6dahil olmak üzere çalışmaya güçlü bir hayvan modeli kanıtlanmıştır. Onlar % 70 orthologous genler insanlarla paylaşmak ve onlar-si olmak benzer omurgalı Biyoloji7. Zebra balığı nispeten kolay bakım, yumurta, uysal genetik, kolay transgenesis ve saydam dış embriyonik geliştirme, hangi yapmak onları vivo içinde görüntüleme5,6için üstün bir sistemi büyük debriyaj boyutunu sağlar. Bir büyük satırların kaynağı olan mutant balık zaten mevcut ve tam sıralı genom, Zebra balığı bilimsel keşif nispeten sınırsız bir dizi sağlayacaktır.

Hücreleri vivo içinde gerçek zamanlı elektriksel aktivitesinin araştırmak için Zebra balığı modeli sistemi ve ASAP1 avantajlarından yararlanın. Bu yazıda nasıl flüoresan gerilim Biyoalgılayıcı ASAP1 Tol2 transposon transgenesis kullanarak Zebra balığı genom dahil tarif ve hücresel elektriksel aktivite sırasında embriyonik gelişim, Balık larva hareketi ve canlı tümör görselleştirmek .

Protocol

Zebra balığı AAALAC onaylı bir hayvan tesiste yer alan ve tüm deneylerin Purdue hayvan bakım ve kullanım Komitesi (PACUC) tarafından onaylanmış protokolleri göre yapılmıştır. 1. Tol2 Transposon plazmid yapı hazırlık Not: Tol2, medaka balıkta keşfedilmiştir bir transposon içinde Zebra balığı araştırma topluluk8,9yaygın olarak kullanılmıştır. Başarılı bir şekilde ağ geçidi s…

Representative Results

Bir başarılı yerleştirmeye, fazla enjekte % 50 balık embriyo yeşil floresan bir dereceye somatik hücreler görüntüler ve bunların çoğu Tol2 transposon tüketim tahlil (Şekil 2) tarafından olumlu olacaktır. 2-4 nesil (floresan balık % 50, beklenen Mendel oranı gelinceye) wildtype balıkla dışı geçtikten sonra transgenik balık hücre membran potansiyeli embriyonik gelişim sırasında izlemek için görüntüleme deneme için kullanılmı?…

Discussion

Her ne kadar cep ve doku düzeyinde elektrik faaliyetleri sırasında embriyonik geliştirme ve insan hastalık uzun zaman önce keşfedildi, vivo içinde dinamik elektrik değişiklikleri ve biyolojik rolleri hala büyük ölçüde bilinmeyen kalır. Büyük zorluklardan biri görselleştirmek ve elektrik değişiklikleri ölçmek etmektir. Yama kelepçe teknoloji bir mola-tek hücre izlemek için geçer ancak birçok hücrelerinin oluşan oldukları için uygulama omurgalı embriyolar için sınırlıdır. Ge?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu yayında bildirilen araştırma çalışmaları tarafından Ulusal Genel tıbbi Bilimler Enstitüsü Ulusal Sağlık Enstitüleri Ödülü numarası R35GM124913, Purdue Üniversitesi PI4D teşvik programı ve PVM iç rekabet altında desteklenen Temel araştırma fonları programı. İçeriği yalnızca yazarlar sorumludur ve mutlaka finansman ajanları resmi görüşlerini temsil etmiyor. Biz Koichi Kawakami Tol2 yapı, Michael Lin ASAP1 inşa etmek için teşekkür ederiz ve Leonard Zon ubi organizatörü için inşa Addgene.

Materials

14mL cell culture tubes VWR 60818-725 E.Coli culture
Agarose electrophoresis tank Thermo Scientific Owl B2 DNA eletrophoresis
Agarose RA Amresco N605-500G For making the injection gels
Attb1-ASAP1-F primer IDT DNA GGGGACAAGTTTGTACAAAAAAGCAGGCTTCACCATGGAGACGACTGTGAGGTATGAACA ASAP1 coding region amplification for subcloning
Attb2-ASAP1-R primer IDT DNA GGGGACCACTTTGTACAAGAAAGCTGGGTCTTAGGTTACCACTTCAAGTTGTTTCTTCTGTGAAGCCA ASAP1 coding region amplification for subcloning
Bright field dissection scope Nikon SMZ 745 Dechorionation, microinjection, mounting
Color camera Zeiss AxioCam MRc Fish embryo image recording
Concave slide VWR 48336-001 For holding fish embryos during imaging process
Disposable transfer pipette 3.4 ml Thermo Scientific 13-711-9AM Fish embryos and water transfer
Endonuclease enzyme, Not I NEB R0189L For linearizing plasmid DNA
Epifuorescent compound scope Zeiss Axio Imager.A2 Fish embryo imaging
Epifuorescent stereo dissection scope Zeiss Stereo Discovery.V12 Fish embryo imaging
Fluorescent light source Lumen dynamics X-cite seris 120 Light source for fluorescence microscopes
Forceps #5 WPI 500342 Dechorionation and needle breaking
Gateway BP Clonase II Enzyme mix Thermo Scientific 11789020 Gateway BP recombination cloning
Gateway LR Clonase II Plus enzyme Thermo Scientific 12538120 Gateway LR recombination cloning
Gel DNA Recovery Kit Zymo Research D4002 DNA gel purification
Loading tip Eppendorf 930001007 For loading injection solution into capilary needles
Methylcellulose (1600cPs) Alfa Aesar 43146 Fish embryo mounting
Methylene blue Sigma-Aldrich M9140 Suppresses fungal outbreaks in Petri dishes
Microinjection mold Adaptive Science Tools TU-1 To prepare agaorse mold tray for holding fish embryos during injection
Microinjector WPI Pneumatic Picopump PV820 Microinjection injector
Micro-manipulator WPI Microinjector mm33 rechts Microinjection operation
Micropipette puller Sutter instrument P-1000 For preparing capillary needle
Mineral oil Amresco J217-500ml For calibrating injection volume
mMESSAGE mMACHINE SP6 Transcription Kit Thermo Scientific AM1340 mRNA in vitro transcription
Monocolor camera Zeiss AxioCam MRm Fish embryo image recording
Plasmid Miniprep Kit Zymo Research D4020 Prepare small amount of plasmid DNA
Plastic Petri dishes VWR 25384-088 For holding fish or fish embryos during imaging process
RNA Clean & Concentrator-5 Zymo Research R1015 mRNA cleaning after in vitro transcription
Spectrophotometer Thermo Scientific NanoDrop 2000 For measuring DNA and RNA concentrations
Stage Micrometer Am Scope MR100 Microinjection volume calibration
Thermocycler Bio-Rad T100 DNA amplification for gene cloning
Thin wall glass capillaries WPI TW100F-4 Raw glass for making cappilary needle
Tol2-exL1 primer IDT DNA GCACAACACCAGAAATGCCCTC Tol2 excise assay
Tol2-exR primer IDT DNA ACCCTCACTAAAGGGAACAAAAG Tol2 excise assay
TOP10 Chemically Competent E. coli Thermo Scientific C404006 Used for transformation during gene cloning
Tricaine mesylate Sigma-Aldrich A5040 For anesthetizing fish or fish embryos
UV trans-illuminator 302nm UVP M-20V DNA visualization
Water bath Thermo Scientific 2853 For transformation process of gene cloning

Riferimenti

  1. Levin, M. Molecular bioelectricity: how endogenous voltage potentials control cell behavior and instruct pattern regulation in vivo. Molecular Biology of the Cell. 25 (24), 3835-3850 (2014).
  2. Storace, D., et al. Toward Better Genetically Encoded Sensors of Membrane Potential. Trends in Neuroscience. 39 (5), 277-289 (2016).
  3. Inagaki, S., Nagai, T. Current progress in genetically encoded voltage indicators for neural activity recording. Current Opinion in Chemical Biology. 33, 95-100 (2016).
  4. St-Pierre, F., et al. High-fidelity optical reporting of neuronal electrical activity with an ultrafast fluorescent voltage sensor. Nature Neuroscience. 17 (6), 884-889 (2014).
  5. Lieschke, G. J., Currie, P. D. Animal models of human disease: zebrafish swim into view. Nature Reviews Genetics. 8 (5), 353-367 (2007).
  6. Santoriello, C., Zon, L. I. Hooked! Modeling human disease in zebrafish. Journal of Clinical Investigation. 122 (7), 2337-2343 (2012).
  7. Howe, K., et al. The zebrafish reference genome sequence and its relationship to the human genome. Nature. , (2013).
  8. Kawakami, K., Shima, A., Kawakami, N. Identification of a functional transposase of the Tol2 element, an Ac-like element from the Japanese medaka fish, and its transposition in the zebrafish germ lineage. Proceedings of the National Academy of Science USA. 97 (21), 11403-11408 (2000).
  9. Urasaki, A., Asakawa, K., Kawakami, K. Efficient transposition of the Tol2 transposable element from a single-copy donor in zebrafish. Proceedings of the National Academy of Science USA. 105 (50), 19827-19832 (2008).
  10. Kwan, K. M., et al. The Tol2kit: a multisite gateway-based construction kit for Tol2 transposon transgenesis constructs. Developmental Dynamics. 236 (11), 3088-3099 (2007).
  11. Mosimann, C., et al. Ubiquitous transgene expression and Cre-based recombination driven by the ubiquitin promoter in zebrafish. Development. 138 (1), 169-177 (2011).
  12. Lorenz, T. C. Polymerase chain reaction: basic protocol plus troubleshooting and optimization strategies. Journal of Visualized Experiments. (63), e3998 (2012).
  13. Ordovas, J. M. Separation of small-size DNA fragments using agarose gel electrophoresis. Methods in Molecular Biology. 110, 35-42 (1998).
  14. Downey, N. Extraction of DNA from agarose gels. Methods Mol Biol. 235, 137-139 (2003).
  15. Desjardins, P., Conklin, D. NanoDrop microvolume quantitation of nucleic acids. Journal of Visualized Experiments. 45 (45), (2010).
  16. Green, M. R., Sambrook, J. . Molecular cloning : a laboratory manual. , (2012).
  17. Zhang, S., Cahalan, M. D. Purifying plasmid DNA from bacterial colonies using the QIAGEN Miniprep Kit. Journal of Visualized Experiments. (6), 247 (2007).
  18. Meeker, N. D., Hutchinson, S. A., Ho, L., Trede, N. S. Method for isolation of PCR-ready genomic DNA from zebrafish tissues. Biotechniques. 43 (5), (2007).
  19. Kawakami, K., Koga, A., Hori, H., Shima, A. Excision of the tol2 transposable element of the medaka fish, Oryzias latipes, in zebrafish, Danio rerio. Gene. 225 (1-2), 17-22 (1998).
  20. Westerfield, M. . The zebrafish book. A guide for the laboratory use of zebrafish (Danio rerio). , (2000).
  21. Amsterdam, A., et al. Many ribosomal protein genes are cancer genes in zebrafish. PLoS Biology. 2 (5), E139 (2004).
  22. Lai, K., et al. Many ribosomal protein mutations are associated with growth impairment and tumor predisposition in zebrafish. Developmental Dynamics. 238 (1), 76-85 (2009).
  23. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Developmental Dynamics. 203 (3), 253-310 (1995).
  24. Zhang, G., et al. Comparative oncogenomic analysis of copy number alterations in human and zebrafish tumors enables cancer driver discovery. PLoS Genetics. 9 (8), e1003734 (2013).
  25. Zhang, G., et al. Highly aneuploid zebrafish malignant peripheral nerve sheath tumors have genetic alterations similar to human cancers. Proceedings of the National Academy of Science USA. 107 (39), 16940-16945 (2010).
  26. Urrego, D., Tomczak, A. P., Zahed, F., Stuhmer, W., Pardo, L. A. Potassium channels in cell cycle and cell proliferation. Philosophical Transactions of the Royal Society of London Series B. 369 (1638), 20130094 (2014).
  27. Yang, H. H., et al. Subcellular Imaging of Voltage and Calcium Signals Reveals Neural Processing In Vivo. Cell. 166 (1), 245-257 (2016).
  28. Chamberland, S., et al. Fast two-photon imaging of subcellular voltage dynamics in neuronal tissue with genetically encoded indicators. Elife. 6, (2017).
  29. Hochbaum, D. R., et al. All-optical electrophysiology in mammalian neurons using engineered microbial rhodopsins. Nature Methods. 11 (8), 825-833 (2014).
  30. Sugiyama, M., et al. Illuminating cell-cycle progression in the developing zebrafish embryo. Proceedings of the National Academy of Science USA. 106 (49), 20812-20817 (2009).

Play Video

Citazione di questo articolo
Silic, M. R., Zhang, G. Visualization of Cellular Electrical Activity in Zebrafish Early Embryos and Tumors. J. Vis. Exp. (134), e57330, doi:10.3791/57330 (2018).

View Video